Ингибитор гиббереллинов

Синтез фитогормонов связан с природными ингибиторами через узловые предшественники, каковыми являются шикимовая и мевалоновая кислоты. По крайней мере это стало известно для ауксинов и гиббереллинов. [c.91]

РЕГУЛЯТОРЫ РОСТА РАСТЕНИЙ, вызывают те или иные изменения в развитии растений, не приводя их к гибели. Различают стимуляторы роста, ингибиторы и ретарданты (последние тормозят рост в высоту, но не влияют на плодоношение). Природные Р. р. р. (гормоны растений) — ауксины, гиббереллины, цитокинины, абсцизовая к-та, эндогенный (образующийся внутри растений) этилен и др. Наиб, важные пром. Р. р. р. арил- и арилоксиалифатич. карбоновые к-ты и их производные четвертичные соли аммония и фосфония производные индола, пиридазина, пиримидина, пиразола. Широко примен. (для борьбы с полеганием злаков, ускорения илн замедления роста, цветения, кущения, созревания, образования побегов, продления или нарушения периода покоя и т. д.) хлормекват-хлорид, ГМК, этефон, моно-М,Ы-диметилгидразид янтарной к-ты (дами-нозид), гибберелловая к-та. В зависимости от дозы, сроков обработки, обрабатываемой с.-х. культуры многие Р. р. р. могут действовать и как гербициды, дефолианты, десиканты. [c.500]

Гормональная теория тропизмов и роста растений Холодного и Вента (1928) явилась началом того бурного развития, которое претерпело учение о фитогормонах в последние годы. Установление химической природы ростовых гормонов — ауксинов, открытие новых гормонов роста — гиббереллинов и цитокининов и выявление структуры этих соединений, обнаружение природных ингибиторов роста, наконец, установление физиологической роли этих активных соединений в процессах роста, тропизмов, морфогенеза, органообразования, цветения и старения — все это знаменательные вехи в развитии учения о фитогормонах. [c.5]

Взаимодействие фитогормонов и природных ингибиторов исследовалось раньше главным образом при протекании разных форм ростовых процессов. Однако такого рода взаимодействие может начаться и раньше в процессе биосинтеза природных стимуляторов и ингибиторов. Этап взаимодействия фитогормонов и ингибиторов на уровне их биосинтеза почти не попадал в сферу внимания физиологов, занимающихся ростом. Между тем ряд косвенных данных показывает, что связь между синтезом ауксинов и фенольных ингибиторов, гиббереллинов и абсцизовой кислоты существует. [c.50]

Тесты, основанные на делении клеток. Для обнаружения кининов, ауксинов, гиббереллинов и ингибиторов предложен ряд методов, основанных на изучении деления клеток. [c.19]

В последнее время появились новые вариации методов для определения абсцизовой кислоты. В них особое внимание уделяется основным принципам отделения абсцизовой кислоты от примесей — фенольных ингибиторов и гиббереллинов. [c.40]

При анализе результатов, полученных с помощью нескольких биотестов, часто приходится отмечать, что исследуемое вещество (например, ИУК) усиливает одни процессы роста у черенка фасоли, подавляет другие (прорастание семян некоторых культур, рост эпикотиля у черенков и т. д.) и вместе с тем не оказывает никакого влияния на третьи (рост гипокотиля в длину, увеличение площади листа и т. д.). Подобные же различия в действии на разные ростовые тесты можно наблюдать и в случае анализа природных ингибиторов, скажем, ингибиторов из ивы. Например, они подавляют процессы распускания почек и корнеобразования у весенних черенков ивы, но совершенно не тормозят процесс роста почек в осенний период. Таким образом, ростовые вещества не являются универсальными в своих функциях. Ауксины стимулируют некоторые формы ростовых процессов и не влияют на другие процессы, которые стимулируются иным гормоном, например гиббереллином. Поэтому, получив при анализе свойств ростового вещества данные о том, что оно не влияет на рост некоторых биотестов или не участвует в некоторых процессах, нельзя заключить, что это соединение вообще не несет регуляторной функции. [c.46]

Ингибиторы в дозах, близких к С50, как правило, не обнаруживали специфических различий при их действии на рост, активированный ИУК или гиббереллином. [c.48]

Участие природных ингибиторов в образовании гиббереллинов [c.89]

Тест на рост отрезков колеоптилей пшеницы используется как для определения ауксинов, так и для определения природных ингибиторов роста. К гиббереллинам и кининам он практически не чувствителен. Недостатками этого метода являются трудоемкость препарирования отрезков колеоптилей, утомительная процедура выталкивания первичного листика из колеоптильного цилиндра, длительный процесс выбора сорта пшеницы, пригодного для теста. При подборе сорта для такого биотеста обычно руководствуются следующими требованиями 1) семена сорта должны обладать хорошей всхожестью 2) за 48 час. выращивания проростки должны достигать 18—20 мм длины 3) нарезанные колеоптили за инкубационный период должны прирастать таким образом, чтобы результаты промеров их приростов можно было уложить в одновершинную кривую Гаусса, что позволит определить степень стандартности материала 4) отрезки должны обладать хорошей чувствительностью к ИУК, т. е. прирост отрезка колеоптиля в растворе ИУК должен превышать прирост контрольного отрезка на 250—300%. [c.18]

Для цитокининов не изучена приуроченность биосинтеза к определенной группе ингибиторов, как это установлено для ауксинов и гиббереллинов. Вопрос биосинтеза цитокининов и его регуляция нуждаются в специальном экспериментальном изучении. [c.91]

Являясь лишь одним из звеньев регуляторной системы, координирующей рост растений, фенольные ингибиторы меняются количественно в связи с изменением роста. Однако эти изменения не всегда коррелируют с интенсивностью ростовых процессов, поскольку они могут быть затемнены или даже нейтрализованы присутствием гормональных факторов типа ауксинов и гиббереллинов. [c.118]

Один и тот же ингибитор может проявлять одну и ту же форму антагонизма в отношении двух совершенно различных процессов, один из которых индуцируется гиббереллином, а другой ауксином. [c.194]

На основании этих представлений рост и покой растений можно рассматривать как систему, контролируемую соотношением отдельных групп стимуляторов и ингибиторов. Согласно данной схеме, каждая из форм ростового процесса управляется специфическим уровнем этих соединений, изменяющихся количественно. Группы стимуляторов и ингибиторов сменяют друг друга, что обеспечивает доминирование то одного, то другого фактора в регуляции разных форм роста. Так, распускание почек или прорастание семян регулируется соотношением фитогормонов (гиббереллины, ауксины) и ингибиторов, причем фитогормоны доминируют, а ингибиторы находятся в минимуме. Заложение и рост корня регулируются главным образом соотношением ауксинов и ингибиторов, причем доминируют в этом случае первые. Рост стебля контролируется другой парой гиббереллины — ингибиторы здесь, как и во время предыдущего процесса, ингибиторы играют роль координирующих факторов, уравновешивающих стимулирующее действие фитогормонов. [c.205]

С помощью таких метаболических вилок, от центров которых расходятся пути образования фитогормонов и ингибиторов, можно объяснить периоды стимуляции и торможения роста. Так, активный синтез ауксинов и гиббереллинов (т. е. функция одной из ветвей метаболических вилок) наблюдается в период усиления ростовых процессов, замедление же этого синтеза происходит в период вхождения растения в состояние покоя. Усиление образования фенольных соединений, и в том числе фенольных ингибиторов, а также абсцизовой кислоты (т. е. функция другой ветви метаболических вилок), отмечается в период приостановки ростовых процессов и в это время доминирует над процессами синтеза фитогормонов. [c.211]

Наиб, практич. значение имеют синтетические Р. среди них арил- и арилоксиалифатич. к-ты, ониевые соли, гетероциклич. соед., особенно азотсодержащие. Классифицируют синтетические - Р. по их соотношению с фитогормонами аналоги ауксинов и цитокининов, антиауксины и антагонисты цитокининов, ингибиторы транспорта ауксинов и биосинтеза гиббереллинов и в-ва, выделяющие этилен или способствующие его образованию в растениях. [c.218]

Это представление, развиваемое в наших исследованиях начиная с 1961 г., позволило охарактеризовать явление роста и покоя растений как результат взаимодействия фитогормонов и ингибиторов. При изучении свойств природных ингибиторов фенольной природы, подавляющих рост отрезков колеоптилей, прорастание семян и распускание почек (скополетин, кумарин, я-кумаровая кислота, салициловая кислота и др.), а также при исследовании свойств недавно открытых ингибиторов терпеноидной природы — абсцизовой кислоты и ксантоксина — удалось установить, что все эти соединения обладают общими свойствами способностью подавлять активность не какого-либо одного, а практически всех известных фитогормонов — ауксинов, гиббереллинов и цитокининов. [c.9]

Изучение эндогенных гормональных факторов у растений, различающихся по интенсивности роста, позволяет прийти к общему заключению о том, что явление высоко- или низкорослости растений определяется изменением не одного, а комплекса гормональных общерегуляторных факторов. У высокорослых растений фитогормоны присутствуют в тканях более продолжительное время, транспорт гиббереллинов из листьев идет скорее и наблюдается их активное сосредоточение в стеблях. Сами гиббереллины повышают в стеблях уровень эндогенных ауксинов, которые в особенно больших количествах накапливаются в стеблях в период цветения. У высокорослых растений низкомолекулярные фенольные ингибиторы появляются лишь в конце вегетации, значительно позже, чем у низкорослых растений, зато синтез КГК — соединения, связывающего ингибиторы в форме ацилированных флавоноидов, идет активнее у высокорослых растений, особенно в начале и в конце роста. Такое соотношение фитогормонов и ингибиторов в высокорослых растениях с преимущественным преобладанием ауксинов создает основу для продолжительного вегетативного роста. Несомненно, гормональная система находится в тесной связи с эндогенными трофическими факторами, что в комплексе может определять явление высоко- или низкорослости (Чумаковский, Кефели, 1968). [c.112]

Основным положительным свойством этого теста является быстрота ответной реакции. За 20 час. инкубации отрезок колеоптиля пшеницы сорта Московка с исходной длиной 4 мм прирастает в 2%-ном растворе сахарозы (контроль) до 8 мм, если же рост происходит в растворе ИУК (1 мг/л), то отрезок достигает длины 16—18 мм, иными словами прирост составляет 300% и более по сравнению с контролем. В растворе ингибитора — п-кумаровой кислоты (175 мг/ /л) — рост отрезка составляет 6 мм, т. е. 50% по сравнению с контролем. Таким образом, за короткий период времени обнаруживается физиологическая функция исследуемого соединения. Другое преимущество колеоптильного теста — его специфичность в отношении ауксинов. Как указывалось, этот тест почти не реагирует на гиббереллин и совсем не чувствителен к кинетину. Вместе с тем тест на отрезки колеоптилей не лишен и некоторых недостатков. Одним недостатком является ограниченность даваемой информации о росте, так как этот тест характеризует рост только растяжением. Другим недостатком является отсутствие специфичности в отношении ростовых веществ, выделенных из тканей разных растений. Действительно, колеоптили могут обладать и, по-видимому, обладают в значитель ной мере иным набором ферментов, нежели ткани растений-доноров, из которых выделены ростовые вещества. Это отличие в наборе ферментов, разрушающих и синтезирующих регуляторы роста, а также [c.44]

Вопрос о регулировании процесса биосинтеза гиббереллина в присутствии природных ингибиторов изучен в еще меньшей степени, чем биосинтез гиббереллинов (Thomas et al., 1965). [c.89]

Проведенные нами совместно с Г. . Муромцевым, В. Н. Агнисти-ковой и С. А. Саидовой опыты показали, что природный ингибитор роста флоридзин как в дозах, подавлявших нативный и активированный гиббереллином рост проростков гороха (250 мг/л), так и в более низкой концентрации (100 мг/л) или слабо стимулировал, или не влиял на синтез гиббереллинов в культуре гриба Fusarium. Аналогичные свойства проявляла абсцизовая кислота. Определение гиббереллинов проводилось колориметрически (Муромцев и др., 1966) и биометодом (Муромцев, Русанова, 1966) (табл. 10). [c.89]

Приведенные результаты позволяют сделать предварительный вывод, что фенольные ингибиторы роста не тормозят биосинтез фитогормонов потому, что их структура отличается от структуры гормонов, т. е. они не являются структурными антагонистами гормонов, каковым является, например, морфактии для гиббереллинов. [c.89]

Какая бы форма роста ни была активирована фитогормоном (рост стебля гиббереллином, рост корня ауксином, прорастание семян кинипом), природные ингибиторы способны выступать анта- [c.194]

Образование фитогормонов может ограничиваться на уровне превращения предшественников в неактивные стереоформы (L-триптофана в D-форму, г ис-формы коричной кислоты в транс и т. д.). Природные ингибиторы способны подавлять возникновение фитогормонов из предшественников, что было продемонстрировано на примере действия фенольных ингибиторов на синтез индольных ауксинов и отчасти абсцизовой кислоты в отношении гиббереллинов. [c.90]

Однако при рассмотрении особенностей каждого из этих этапов недостаточное внимание уделялось вопросам специфичности механизмов такого взаимодействия. А между тем вопрос о приуроченности, пригнанности каждого из фитогормонов к своему природному ингибитору является чрезвычайно важным. Рассмотрение процессов биосинтеза ауксинов и фенольных ингибиторов, с одной стороны, и гиббереллинов и абсцизовой кислоты — с другой, позволяет заключить, что на этом раннем уровне их образования наблюдаются определенная специфичность и приуроченность одной группы фитогормонов к соответствующей группе ингибиторов, которая, однако, на этапе функционирования утрачивается. [c.200]

Индольные ауксины и фенольные ингибиторы образуются из общего метаболического центра — шикимовой кислоты, в то время как гиббереллины и абсцизовая кислота — из мевалоновой кислоты. [c.91]

Функции природных ингибиторов и фитогормонов тесно взаимосвязаны. Хорошо изучено антиауксиновое действие фенольных ингибиторов и абсцизовой кислоты, направленное на торможение процессов растяжения клеток, опадение черешков листьев и выражающееся в задержке роста почек в культуре тканей. Однако в последние годы было установлено, что природные ингибиторы способны также снижать активность гиббереллинов, подавляя образование и активность гидролитических ферментов и угнетая рост стеблей. Антагонистическое действие природных ингибиторов обнаружено и в [c.100]

Ингибитор транспорта ауксинов — трийодбензойпая кислота — подавляет и передвижение гиббереллинов. [c.102]

Таким образом, ауксины, гиббереллины, кинины и природные ингибиторы проявляют регулирующее действие на ток пластических веществ и воды, усиливая или тормозя приток питательных веществ к той части растения, где они локализуются в плодах, семенах, клубнях (Mothes, 1964). [c.104]

Проверить это предположение можно было бы тремя способами 1) введением фитогормонов в весенние черенки, свободные от природных ингибиторов 2) выделением природных ингибиторов из осенних черенков и введением их в весенние черенки, т.е. попытаться временно имитировать осенние условия покоя 3) введением совместно природных ингибиторов с фитогормонами, чтобы воспроизвести эффект гашения стимуляторного действия ИУК и гиббереллина. [c.148]

На первом этапе изучения тормозящего действия ингибиторов были использованы не индивидуально выделенные соединения, а комплекс ингибиторов, условно обозначенный ИНГ. Эти соединения выделяли из одного осеннего черенка и вводили в один весенний черенок. Опыты, проведенные таким образом, суммированы в табл. 17. Оказалось, что весенние черенки с почками, вышедшими из состояния покоя, способны реагировать на фитогормоны. Под действием ИУК у них активируется образование корней, а под действием гибберелловой кислоты (ГК) усиливаются распускание почек и рост побегов. Комплекс природных ингибиторов затормозил нативные ростовые процессы на черенке. Если же ингибиторы вводили в весенний черенок совместно с ИУК или ГК, то ингибиторы подавляли как корнеобразующий стимул, вызываемый ауксином, так и процесс распускания почек, индуцируемый гиббереллином (Кефели, Турецкая, 1967). [c.148]

Синтетические ингибиторы действовали на ростовые процессы иначе, нежели природные ингибиторы. Морфактин легче всего подавлял процессы корнеобразования (50%-ное подавление наступало при действии 0,47 мг/л) и распускания почек (50%-ное подавление при 3 мг/л) и значительно слабее влиял на рост проростка и корня, а также на прорастание семян пшеницы. Для морфактина (хлорфлу-оренола) было свойственно активное нарушение функций точек роста. Апикальные меристемы корней и почек ивы как бы замирали. При этом наблюдался рост боковых корней (рис. 49). Морфактин даже в низкой концентрации (0,2 мг/л), уже почти не влиявшей на рост проростков гороха, нарушал их геотропическую ориентацию, чего не наблюдалось у контрольных и обработанных гиббереллином проростков. [c.191]

Изучение взаимодействия ИУК и ГК показало, что природные ингибиторы в пороговых концентрациях, не действующих на эндогенный рост, не способны полностью снять действие этих фитогормонов на ростовые процессы. Природные ингибиторы фенольной и терпеноидной природы способны подавлять ростовые процессы, активированные как ауксином, так и гиббереллином, т. е. они не обладают антигормональной специфичностью. [c.202]

Взаимодействие фитогормонов и природных ингибиторов может осуществляться на этапах синтеза, функционирования и разрушения этих соединений. На первом этапе — биосинтеза — это взаимодействие в основном носит специфический характер, связанный с тем, что пары ауксины — фенольные ингибиторы и гиббереллины — абсцизовая кислота образуются соответственно из общих метаболических предшественников — шикимовой и мевало-ноБой кислот. На втором этапе специфичность взаимодействия ингибиторов и фитогормонов исчезает ингибиторы тормозят любую форму роста, активированную фитогормонами. На третьем этапе — разрушения — специфичность взаимодействия частично возникает вновь и проявляется, например, в приуроченности фенолов к механизму окисления ауксинов. Однако кроме специфического типа взаимодействия существуют и общие пути инактивации фитогормонов и природных ингибиторов (гликозидирование, образование сложных комплексов и др.). [c.202]

Изучая действие широкого диапазона концентраций природных ингибиторов на рост чувствительных к фитогормонам биотестов и сопоставляя это действие с активностью ауксинов, гиббереллинов и цитокининов, оказалось, что в отличие от фитогормонов природные ингибиторы ни в одной из концентраций не были способны проявлять гормональные эффекты, т. е. резко стимулировать рост биотестов (Hemberg, 1961 Бокарев и др., 1966 Кефели, Турецкая [c.203]

Существование метаболических участков с разветвляющимися биосинтетическими ветвями тем более вероятно, что у противоположно действующих факторов (фитогормонов и ингибиторов) имеются общие метаболические предшественники. Для индольных ауксинов и фенольных ингибиторов — шикимовая и хоризмовая кислоты, а для гиббереллинов и абсцизовой кислоты — мевалоновая кислота и ее производные. [c.211]

При этом активируется рост листовых пластинок. Следовательно, природные ингибиторы кроме факторов вхождения растения в покой могут быть факторами коррелятивной регуляции эндогенного роста, балансирующими, уравновешивающими действие гормонов, предотвращая их гиперфункцию, которая могла бы выразиться в израстании побегов, в возникновении наростов и в прочих проявлениях неорганизованного роста. Такого рода нарушения в жизнедеятельности растения наблюдаются при проникновении в растение патогена, в частности некоторых микроорганизмов, которые способны синтезировать большое количество фитогормонов. Эти соединения почти не влияют на рост самих продуцентов, не подвергаются заметному окислению или связыванию, т. е. находятся в своего рода свободной форме, но, попадая в ткани высшего растения, они нарушают нормальный ход ростовых процессов и вызывают разнообразные формы патологических изменений. Характерно, что если в отношении тканей высших растений некоторые природные фенолы и абсцизовая кислота выступают как ингибиторы, подавляющие синтез гормонов и их функцию, то в отношении микроорганизмов эти соединения не проявляют заметного угнетающего действия. Так, на примере Taphrina и Fusarium нами было показано, что фенольные ингибиторы в достаточно высоких дозах не тормозят синтез ауксинов и гиббереллинов. [c.212]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология