Молекулярные сита крахмал

Электрофорез в крахмальном геле был первым электрофоретическим методом, в котором для улучшения разделения была использована среда, обладающая овойствами молекулярного сита. Крахмал — это нерастворимый в воде полисахарид. В нативном состоянии он связывает некоторое количество воды и набухает, но не способен превратиться в жидкость при повышении температуры. Путем частичного кислотного гидролиза крахмал может быть переведен в форму, представляющую собой жидкий золь при температурах выше и твердый гидрогель при комнатной температуре. Оказалось, что для электрофореза вполне подходит картофельный крахмал [1199], но можно использовать также и рисовый [1037]. [c.68]

Молекулярные сита [13]. Сита применяют для разделения частиц по величине и форме. При совпадении размеров ячеек сита (в данном случае пор сорбента) с размером молекул (порядка 0,3—1,5 нм) говорят о молекулярноситовом разделении. Свойством разделять частицы молекулярных размеров по. их величине обладают многие вещества, например крахмал, хелатные комплексные соединения. Молекулярными ситами в узком смысле слова называют вещества определенной пористости. Основой молекулярных сит могут служить, например, цеолиты, стекла и углерод (в виде продуктов пиролиза пластмасс). Величину пор молекулярных сит можно задавать в процессе их изготовления, т. е. можно получать большое разнообразие сит для различных целей. На процесс хроматографического разделения, наряду с ситовым действием, оказывают влияние и силы адсорбции (диполь-дипольное взаимодействие) в ряду алканы, алкены, алкины адсорбционная способность возрастает. [c.350]

Наряду с рассмотренными выше важнейшими адсорбентами, в хроматографии также применяются и другие, такие как окись кальция, окись магния, углекислый кальций, тальк, крахмал, а также природные адсорбенты глины, диатомит, фуллерова земля, кизельгур, отбеливающие земли и др. Однако значение этих адсорбентов значительно меньше, чем значение окиси алюминия, силикагелей, синтетических молекулярных сит и активированных углей. [c.27]

Некоторые методические сложности препятствуют широкому распространению электрофореза в крахмальном геле, несмотря на его весьма большую разрешающую способность. По сравнению с электрофорезом на бумаге электрофорез в крахмальном геле включает дополнительные операции, связанные с приготовлением и гидролизом крахмала, сборкой прибора, окрашиванием и количественным определением полученных фракций. Однако присущий крахмальному гелю эффект молекулярного сита увеличивает разрешающую способность данного метода по сравнению с электрофорезом на бумаге, и поэтому его используют для более тонкого анализа. [c.12]

Разработаны оптимальные условия и принципиальные технологические схемы сорбции амилазы из культуральной жидкости силикагелем в динамических и статических условиях. Приведен механизм сорбции ферментов ионитами. Показано, что сорбция может протекать за счет поверхностно-молекулярного взаимодействия без ионного обмена, а также за счет сил Ван-дер-Ваальса в сочетании с ионообменным процессом и путем так называемой сорбции высаливанием (силикагель, крахмал). Возможна также сорбция ферментов способом гель-фильтрации с одновременным взаимодействием с матрицей молекулярного сита (сефадекс А-50). [c.116]

В качестве сорбента в ТСХ применяют силикагели, оксид алюминия, крахмал, целлюлозу и некоторые другие вещества с высокой адсорбционной способностью. Для характеристики сорбционной активности оксида алюминия часто используется шкала Брокмана, составленная по Rj стандартного набора красителей. Эффективно применяются в ТСХ в качестве сорбентов жидкие иониты и другие вещества, обладающие ионообменными свойствами и свойствами молекулярных сит (например, сефадексы). [c.344]

Крахмал, но в нем хорошо разделяются веш,ества, молекулярные веса которых лежат в пределах от 100 до 1000. Крахмал, разбухший при нагревании в воде примерно в 3 раза по сравнению с первоначальным размером частиц, становится проницаемым для более крупных молекул, таких, как инсулин, миоглобин и гемоглобин. Аминокислоты движутся через колонку, наполненную крахмалом, примерно в такой же последовательности, как при разделении на слабом катионообменнике однако этот ионообменный эффект можно устранить, используя для элюирования растворы соответствующей ионной силы. Партридж [17] обратил внимание на то, что сами ионообменные смолы обладают свойствами молекулярных сит, что повышает избирательность разделения. [c.219]

В этом методе используются одновременно и разделение по заряду, и эффект молекулярного сита. В качестве сита применяют крахмал и агарозу, [c.36]

Лучшего разделения, в частности, белков и нуклеиновых кислот можно достигнуть, если в качестве носителя использовать гели крахмала, полиакриламида, агарозы и агарозы — акриламида. Причины этого не совсем ясны, однако такой эффект, очевидно,, связан с пониженной диффузией в сетке геля и разделяющим действием гель-проникающей хроматографии (эффект молекулярного сита ). [c.228]

Дьюэлом [43]. Именно этот автор синтезировал в 1954 г. первый незаряженный гель (сшитый галакто-маннан) и применил его для обессоливания коллоидов [48]. Годом позже Линдквист и Шторгардс [49] изучили свойства гранул крахмала как молекулярного сита. В 1956 г. Лэйт и Рутвен [50] показали, что крахмал вполне пригоден для разделения нейтральных веществ с молекулярным весом от 100 до 1000. Ионообменные свойства крахмала, которые довольно заметно проявляются при работе с ионогенными веществами, удавалось в значительной мере подавить добавлением поваренной соли. На гранулах крахмала, набухшего в теплой воде, оказалось возможным разделить белки и полисахариды с молекулярными весами вплоть до 150 000. Авторы уже тогда дали этому явлению следующее объяснение, которое остается справедливым до настоящего времени [c.24]

Хроматография гаироко применяется для разделения и очистки полинуклеотидов. Методы, разработанные для определения РНК и ДНК, будут рассмотрены в следующих главах подробное описание этих методов можно найти в соответствующих обзорах [32, 33]. При разработке методов хроматографирования были испытаны колонки из фосфата кальция [34—36], метилированного альбумина [37, 38], полиметакрилата магния (амберлит ШС-50) [39, 53] и като-2 (катионный крахмал) [54] наилучшие результаты были получены при использовании замещенных производных целлюлозы, например эктеола-целлюлозы (целлюлоза, обработанная апихлоргидрином и триэтаноламином) [19, 23, 31, 40—42] или ДЭАЭ-целлюлозы (диэтиламиноэтилцеллюлоза) [43, 44]. При использовании таких колонок наиболее эффективное разделение олигонуклеотидов, содержащих от двух до семи нуклеотидов, достигается путем градиентной элюции мочевиной. С успехом применяются также колонки с сефадексом, обладающим свойством молекулярного сита [45]. Для очистки информационной РНК употребляют колонки из ДНК [46, 47, 48, 49] (стр. 234). [c.34]

Спустя два года Линдквист и Сторгардс [185] опубликовали данные по фракционированию аминокислот и пептидов на колонках с крахмальным гелем и объяснили полученные результаты на основе эффекта молекулярных сит. В том же 1955 г. Лейт и Рутвен [167, 186] провели фракционирование смесей различных белков и меньших по размеру молекул на колонках с крахмальным гелем. Они первыми осуществили фракционирование образцов, молекулярные веса которых изменялись в широких пределах, и объяснили полученные данные на основании ограниченной проницаемости фракционируемых молекул в гели в зависимости от размеров этих молекул. Эти авторы далее показали, что область молекулярных весов фракционируемых молекул можно было значительно расширить путем набухания гранул крахмала и увеличения размеров пор в этих гранулах.. На содержащих набухший крахмал колонках Лейт и Рутвен [167] определили молекулярные веса инсулина (6000) и миоглобина (35 ООО). На таких же колонках этим авторам [c.114]

Разделить смесь соединений в соответствии с молекулярными размерами последних можно методами дробного диализа [8], ультрафильтрации и ультрацентрифугирования. Некоторые из этих методов требуют много времени и малопроизводительны, для других необходимо специальное дорогостоящее оборудование. Относительно просто осуществить такое разделение при помощи молекулярых сит [24]. Молекулярными ситами называют определенные типы природных и синтетических цеолитов (алюмосиликатов), кристаллическая структура которых не меняется в процессе их дегидратации. В результате дегидратации в структуре кристаллов образуются микроканалы и микропоры определенных размеров. Через эти поры могут проходить только низкомолекулярные соединения, а для высокомолекулярных соединений они недоступны, таким образом и происходит разделение в соответствии с молекулярными размерами. Среди водорастворимых веществ свойства молекулярных сит наблюдаются у гранулированного крахмала [29, 32]. [c.339]

Синге и Тизелиус [15] впервые наблюдали эффект молекулярного сита в гелях при фракционировании продуктов гидролиза амилозы в агар-агаровом геле. Для детального исследования механизма молекулярного сита Лейт и Ратвен [16] использовали зерна крахмала. Они нашли, что белки не проникают в обычный гидратированный [c.218]

Успехи гель-хроиатографви тесно связаны с использованием геля Нолучаемого при сополимеризации декстрана и эпихлоргидрина товарное название — сефадекс ). Позднее было показано, что в ка стве неподвижной фазы при гель-хроматографии можно применять пористые гели на основе сшитого полистирола, молекулярных сит, ионообменных смол, агара, крахмала и др. Наиболее перспективным является сефадекс. Он выпускается в нескольких модификациях, различающихся размером пор и степенью набухания. [c.121]

Наряду с ионообменной хроматографией для разделения белков широко применяют зонный электрофорез, основанный на различной подвижности заряженных белковых молекул в поле постоянного тока. Обычно деление происходит при прохождепии тока через буферный раствор, содержащий смесь белков, причем используется как электрофорез в растворе так и электрофорез на носителях. Для быстрого предварительного анализа белковой смеси удобен бумажный электрофорез В препаративных целях используют электрофорез в блоке В качестве носителя в этом случае можно применять крахмал, стеклянный и целлюлозный порошки, поливинилхлорид. Наибольшей разрешающей способностью для белков обладает электрофорез в геле По-видимому, здесь играет роль не только заряд частиц, но и их величина, т. е. гель действует и как опорная среда, и как молекулярное сито. Наряду с крахмальным используют агар-агаровый и полиакриламидный гели. [c.20]

Самый простой способ обеспечения стабильности электрофоретических зон заключается в том, что в среду для электрофореза вводят вещества, образующие капиллярную структуру. Ан-тиконвекционные свойства такой системы весьма высоки, если площадь поперечного сечения капилляров достаточно мала, так как в канале круглого сечения скорость потока снижается пропорционально четвертой степени радиуса. В качестве поддерживающей среды чаще всего используются фильтровальная бумага, пленки из ацетата целлюлозы, колонки или блоки целлюлозного порошка, гранулированный крахмал или гранулы поливиниловых полимеров, а также агаровый, агарозный, крахмальный или полиакриламидный гели. Зональный электрофорез в поддерживающей среде имеет ряд важных преимуществ. При его проведении можно использовать какой-либо простой и сравнительно недорогой прибор и анализировать одновременно несколько различных препаратов. Процедуры визуализации зон и выделения фракций осуществляются довольно легко. Вещества, обладающие биологической активностью, можно выявить непосредственно на электрофореграммах. Метод легко приспособить как для крупномасштабного разделения веществ, так и для микроразделения. Удается достигнуть очень высокой разрешающей силы, особенно в среде, характеризующейся одновременно антикон векционными свойствами и эффектом молекулярного сита. [c.34]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология