Флуоресценция определение

В приборе используются светофильтры из стекла УФС-1, УФС-2, УФС-3, которые не пропускают видимую часть спектра. Прибор снабжен фотоэлектронным умножителем ФЭУ-20. Пучок света флуоресценции определенной интенсивности, возникаюш,ий в кювете с раствором, проходит через вторичный интерференционный светофильтр и попадает на катод фотоэлектронного умножителя. Эти вторичные узко полосные светофильтры выделяют часть спектра, характерную для исследуемого вещества. Напряжение, возникающее в фотоумножителе, усиливается резонансным усилителем и после детектирования [c.483]

Интенсивность света, испускаемого флуоресцирующим раствором, при определенных условиях находится в простой зависимости от концентрации растворенного вещества и, следовательно, может быть использована для анализа. Трудно, однако, измерить абсолютную интенсивность флуоресценции, и обычно измерения проводят по отношению к разведениям правильно выбранного стандартного образца. Общая схема флуоресцентной спектроскопии состоит в возбуждении флуоресценции излучением при длине волны максимума поглощения и в измерении или сравнении интенсивности флуоресцирующего света с флуоресценцией определенного стандартного раствора. Флуоресцирующий свет должен быть тщательно отделен от рассеянного света, падающего на вещество. [c.52]

В случае фотоэлектрической регистрации интенсивности флуоресценции определение свинца в соляной кислоте проводят следующим образом. Соляную кислоту охлаждают в смеси спирта с сухим льдом и переливают в платиновую чашку 2, помещенную в стакан 1, наполненный сухим льдом (рис. 6). Кислоту облучают сверху ртутно-кварцевой лампой 5 через монохроматор 4 ртутной линией 272 ммк. Зеленую флуоресценцию хлоридных комплексов свинца регистрируют фотоумножителем ФЭУ-29, перед которым поставлен вторичный, светофильтр ЗС-2. [c.78]

Тушение флуоресценции определенного количества уранилового иона вызывается количествами различных анионов, относящимися между собой приблизительно как эквивалентные их веса. Это позволяет обнаруживать ничтожно малые количества перечисленных ионов. Указывают, что этим путем можно обнаруживать соляную кислоту в хлороформе в количествах меньших, чем этого требует фармакопея. [c.180]

При проверке на отсутствие веществ, гасящих флуоресценцию, определенное количество стандартного раствора наносят на фильтры и обрабатывают таким же образом, как и пробу. Интенсивность свечения полученного при этом перла не должна отличаться от интенсивности стандартного перла, содержащего такую же концентрацию урана. [c.335]

Образование комплекса усиливает флуоресценцию. Определению мешает лишь пятикратное по отнощению к фториду количество фосфата, очень мало влияют вольфрамат-, ацетат-, тартрат-ионы. В 50-кратном по отношению к фториду соотношении молибдат занижает, а сульфат завышает результаты анализа. Катионы оказывают на реакцию чрезвычайно малое влияние 5-кратные количества алюминия, марганца и серебра слегка влияют на реакцию, а 50-кратные количества мышьяка (V), сурьмы (III), бериллия и кобальта занижают результаты анализа. Ошибка определения фторида в концентрациях, соответствующих средней части градуировочного графика, составляет 3%. [c.361]

Определение рекомендуется проводить при pH 10,0—11,0 или, что проще, в аммиачном растворе [5 мл разбавленного раствора аммиака (1 1) на 100 мл анализируемого раствора]. В качестве титранта применен 0,05 М раствор комплексона 1П. Индикатор вводят в виде смеси с хлоридом калия в соотношении 1 100. При добавлении флуорексона к анализируемому раствору меди наблюдается гашение флуоресценции флуорексона. При титровании этого раствора комплексоном П1 в точке эквивалентности появляется желто-зеленая флуоресценция. Определению меди мешают Со " , Са , Mg . Средняя ошибка при определении [c.243]

Количество сульфатов и хлоридов в испытуемом и стандартном растворах должно быть примерно одинаковым, так как они уменьшают интенсивность флуоресценции. Определению мешают Ре , А " , Р , поэтому их необходимо отделять. [c.329]

Рибофлавин также можно определить флуориметрически [12]. Интенсивность флуоресценции в большой степени зависит от точного соблюдения условий эксперимента, а также от природы и количества присутствующих примесей. Для того чтобы примеси оказывали одинаковое влияние на стандартные и анализируемые растворы, используют метод стандартных добавок. При этом измеряется суммарная флуоресценция определенного количества стандарта и неизвестного количества определяемого компонента. Рибофлавин легко окисляется, превращаясь в нефлуоресцирующее вещество, которое количественно восстанавливается снова в рибофлавин, что используется в данной методике. [c.160]

Повидимому, этот механизм связан с описанным в работе [19] особенно сильным тушением флуоресценции определенными тушителями. См. работу [15]. [c.230]

ЛИТЬ, измеряя относительную флуоресценцию. Определение заключается в основном в приготовлении контрольного растворителя и набора стандартных растворов, построении стандартной кривой и сравнении с неизвестными образцами. Поскольку чувствительность этого метода выше, вероятность влияния артефактов на результаты измерения больше, чем при абсорбционной фотометрии. [c.180]

Существуют три основных методических подхода для решения этой задачи. Первый способ — избирательное окрашивание нейронов, выделяющих определенный нейромедиатор, может осуществляться с помощью преобразования естественного медиатора в его флуоресцирующее производное. В этом случае флуоресценция определенных групп клеток поможет выявить специфические связи в структурах мозга. Второй экспериментальный подход связан с введением молекул медиатора, предварительно меченного радиоактивным изотопом. Нейронные окончания, содержащие исследуемый медиатор, способны избирательно захватывать метку. Затем их легко выявить методом авторадиографии. Третий способ обнаружения специфических связей в нервной системе состоит в использовании высоко специфичной способности узнавать либо антигенные детерминанты медиатора, либо определенные ферментные белки, участвующие в метаболизме нейромедиаторов, либо нейрорецептор-ные компоненты на мембране клетки. Последние считаются наиболее убедительным свидетельством в пользу существования конкретных нейрохимических взаимодействий межцу клетками и зонами мозга. Обычно для иммунохимической идентификации используют флуоресцентный краситель или изотоп, который маркирует антитела. В последние годы широко распространились методы, использующие антитела, меченные частицами тяжелых металлов, например коллоидного золота, железа и др. [c.224]

Измерение квантового выхода флуоресценции. Определение абсолютных квантовых выходов флуоресценции представляет собой трудную задачу. Оно требует измерения поглощенных и испускаемых квантов во всей области частот с поправками на рассеянный свет, повторное поглощение и на эффекты преломления. На практике часто используют растворы веществ с известным квантовым выходом флуоресценции и определяют квантовые выходы флуоресценции исследуемых соединений по отношению к известным соединениям. Необходимо работать с очень разбавленными растворами, когда избыточным поглощением возбуждающего света и самопо- [c.68]

Известны следующие модификации методов определения БП, основанных на использовании квазилинейчатых спектров флуоресценции определение БП методом добавок с установкой прибора по фону, создаваемому люминесцпрующими примесями, присутствующими в исследуемом экстракте определение БП методом внутреннего стандарта анализ комбинированным методом. [c.293]

Н,Н -диметилформамида мешает определению магния, вследствие гашения или изменения цвета флуоресценции. Определению магния мешают также Са2+, Се , А13+, 2г(1У), Со2+, Ag+, 5Ьз+, ТЬ(1У), Сс12+ и АзЗ+ в количествах 1 мкг в 5 мл диметилформамида. Присутствие воды в растворах совершенно недопустимо, ибо даже содержание в растворе 5% воды снижает интенсивность флуоресценции в 2 раза. [c.245]

Определению 0,001 мкг Жg в Б мл раствора не мешает ни один катион, находящийся в растворе в количестве 0,01 мкг. Присутствие ионов Ре2+, РеЗ+, Сц2+, Сг2+, N 2+, 8е042-, 5ц2+, Рг + и Мп04 в количестве 0,1 мкг в Б мл диметилформамида мешает определению магния вследствие гашения или изменения цвета флуоресценции. Определению магния мешает также Са +, Се +, А1 +, (IV), Со2+, А +, 5Ь +, ТЬ (IV), Сс1 + и Аз + в количествах 1,0 мкг в 5 мл К,К -диметилформа-мида. [c.496]

In vitro интенсивность флуоресценции обычно пропорциональна интенсивности освещения. Это объясняется тем, что и флуоресценция, и тушащие процессы, которые конкурируют с ней (т. е. диссипация энергии и фотохимические реакции), представляют собой обычно процессы первого порядка, мономолекулярные в отношении концентрации возбужденных молекул пигмента. Иначе говоря, каждая возбужденная молекула имеет определенную вероятность излучать энергию в виде флуоресценции, определенную вероятность дезактивироваться путем диссипации энергии и определенную вероятность участвовать в фотохимической реакции. Все эти вероятности независимы от концентрации возбужденных молекул и, следовательно, от скорости их образования и от интенсивности падающего света. При этих условиях скорость фотохимических реакций также должна быть пропорциональна интенсивности света. Таким образом, и квантовый выход флуоресценции, <р (= onst F//, где F — интенсивность света флуоресценции), и квантовый выход фотохимической реакции, (= = onst. Р/7, где Р — скорость фотохимической реакции), обычно не зависят от интенсивности падающего света, /. [c.480]

Среда Цвет флуоресценции определения, Мешаю1цие элементы [c.170]

Так, при помощи бензоина можно определять цинк при его содержании 2,5 мкг ъ Ъ мл раствора. При определении цинка с бензоином по Ч. Уайту к 10 мл исследуемого раствора последовательно приливают по 1 мл а) щелочного раствора силиката натрия (0,6 мл 35%-ного раствора силиката в 100 мл 2,5 н. раствора едкого натра)—для создания необходимого значения pH и вязкости раствора б) 4%-ного раствора дитионита натрйя (N328204)—для удаления кислорода из раствора в) 0,3%-ного раствора бензоина в этиловом спирте г) раствора нитрата магния, содержащего 2 г магния на 1 л Н2О,—для создания в растворе взвеси гидроокиси магния, на которой, по мнению Уайта, адсорбируется комплекс цинка с бензоином состава 2п(СдНдС0—СНОНСеНз). В присутствии цинка через 1—2 мин в ультрафиолетовом свете разгорается зеленая флуоресценция. Определению цинка мешают сурьма, бор и бериллий. [c.265]

Строго говоря, в процессе резонансной ф.ауоресценцин подразумевается, что нижним уровнем перехода является основной уровень. Хотя этот процесс чаще всего встречается в атомной флуоресценции, определение, приведенное выше, является более общим, чем это, и включает переходы, у которых нижним состоянием не является основное состояние. [c.192]

Как отмечалось вьппе, характерной особенностью неионогенных ПАВ типа игепал СО бЗО ипи тритон Х-100 является наличие в молекулах этих ПАВ феноксильной группы с характерными спектрами УФ-поглощения и флуоресценции. Был опубликован ряд р бот по исследованию феноксильных групп дифильных молекул такого типа [21—32]. Оказалось, чго как спектры У погпощения, гак и флуоресценция определенным образом зависят от концентрации. [c.318]

Для указанных целей рекомендован всего один реактив-бензоин /166/. Он образует с кремнием соединение, которое под действием ультрафиолетовых вучей дает зеленую флуоресценцию. Определение проводят в присутствии гидроксиламина. Метод практического применения не нашел. [c.14]

Показана возможность определения до 40 мкг 30 но гашению ярко-зеленой флуоресценции моринового комплекса тория в присутствии сульфат-ионов. Флуоресценция стабилизируется через 20 мин и сохраняется в течение нескольких часов. Увеличение температуры снижает флуоресценцию. Определению не мешает присутствие до 1 мг Na+, К+, NH , Со , РЬ +, СГ, N0 , Вг , Г, СОГ, СЮз, IO4, S N- и до 0,1 мг ЗЮГ, Bi +, Ва"+, UOf, La= +. Мешают F", РОГ, W0 , MoOf, АзОГ, ЗеОГ, VO3, Fe +, АР+, ZrO и цитраты [417]. [c.38]