Буферные ряды фосфатный

Получив раствор с неизвестным значением pH, прежде всего следует решить, какую из трех смесей необходимо выбрать в качестве эталона. Для этого по индикаторной бумажке нужно определить приблизительное значение pH исследуемого раствора. Если, например, оказывается, что pH исследуемого раствора около 3, то для более точного определения pH готовят буферный ряд из цитратной буферной смеси. Если же pH исследуемого раствора около 7, то готовят эталоны из фосфатной смеси. [c.23]

Однако следует учитывать, что при разбавлении буфера уменьшается ионная сила, а потому при разбавлении, например, фосфатного буфера он делается более щелочным. При многих исследованиях ферментов следует иметь в виду, что ионная сила в буферном ряду с изменяющимся pH должна быть известна или должна быть постоянной. У одноосновных буферных кислот, таких как уксусная кислота, это практически достигается тем, что концентрация соли остается постоянной и изменяется только концентрация кислоты. [c.200]

Для приготовления эталонных растворов в пять стаканов емкостью 50 мл вносят по 5 мл фосфатного буферного раствора, стандартный раствор кобальта, соответственно 1-му или 2-му ряду (см. стр. 162) в зависимости от содержания кобальта прибавляют 2 мл раствора реагента и в остальном соблюдают условия, указанные на стр. 161. [c.163]

Для проведения работы с рядом разведений во все пробирки налить по 2 мл фосфатно-цитратной буферной смеси с pH 6,8 (смесь № 24 см. работу 14) и после этого по 1 мл 1%-ного раствора растворимого крахмала, приготовленного на 0,2%-ном растворе хлористого натрия. Все пробирки поставить в термостат при,температуре 37° С на 10, 20 или 30 лшн. По истечении этого времени вынуть пробирки из термостата, быстро наполнить ледяной водой и погрузить в сосуд с холодной водой. Прибавить затем во все пробирки по 2—3 капли 0,2 н. раствора йода Б йодистом калии и отметить пробирку с наименьшей концентрацией слюны, в которой не появляется синее или сине-фиолетовое окрашивание. [c.69]

Те или иные микроорганизмы растут и развиваются на питательных средах, имеющих определенные pH. Чтобы изготовить среду для того или иного микроорганизма с определенным, наиболее благоприятным для его развития pH, используют также различные буферы. О биологическом значении pH и буферных систем будет сказано подробнее в дальнейшем. Сейчас иеобходимо отметить, что в практике используются, кроме ацетатного буфера, еще ряд различных буферов. Рассматривать их все нет надобности, а потому мы остановимся только на одном из них — фосфатном буфере, получившем широкое применение. [c.176]

По мнению ряда исследователей, буферное действие крови обусловлено главным образом содержащимся в ней белком — гемоглобином что же касается минеральных буферов крови — карбонатного и фосфатного, то им приписывают второстепенную роль. [c.224]

Величина pH может иметь большое значение так, например, окисление полифенолов и ряда других соединений, как правило, лучше всего проводят в растворе, содержащем ацетатные, фосфатные, карбонатные, боратные и другие буферные смеси. Это делается для того, чтобы нейтрализовать образующуюся HI и предотвратить восстановление ее хинона или других продуктов реакции. [c.286]

Таким образом, в поддержании в организме кислотно-щелочного равновесия участвуют несколько буферных систем, как-то оксигемоглобиновый, белковый, карбонатный и фосфатный, а также ряд органов — легкие, почки, кожа, печень, одной из функций которой является нейтрализация кислых продуктов обмена, и кишечник. [c.100]

Ряд веществ, применяющихся в качестве стабилизаторов, таких, как гидрохинон, пирокатехин, -феиилендиамин, на фоне 1 М H2SO4 образуют хорошо выраженные анодные волны высота которых пропорциональна концентрации указанных соединений в растворе. Благодаря легкости их окисления для количественного определения может быть использовано амперометрическое титрование с помощью Се(804)2 (титрант) в 1 М H2SO4. Триметилгидрохинон на фоне ацетатного или фосфатного буферного раствора образует полярографическую волну с E /2 на 200 мВ более отрицательным, чем Ец2 гидрохинона (Тихомирова и сотр.). [c.174]

Уксусная кислота, являющаяся слабым электролитом, даже при малом разбавлении водой не создает такой концентрации активных водородных ио нов, какая свойственна сильной соляной кислоте. Особенно это свойство уксусной кислоты проявляется в присутствии соли этой же кислоты, в данном случае ацетата натрия СНзСООНа. Смеси слабых кислот с их солями, образованными сильным основанием, а также смеси слабых оснований с их солями, образованными сильной кислотой, называют буферными. Буферные смеси используют как эталоны при тарировании и проверке рН-метров. Наибольшее распространение получили ацетатные буферные смеси (смесь уксусной кислоты с ацетатом натрия), баратные, фосфатные и ряд других. [c.9]

На результаты разделения решающее влияние оказывают состав и форма градиента. Как правило, на ОЕАЕ-замещенной целлюлозе или декстране гомологичные олигонуклеотиды разделяются в соответствии с длиной цепи (рис. 37.14), с учетом того, что способность преобладающего основания увеличивать элюирующий объем возрастает в ряду С, U, А, G (рис. 37.15). В буферных растворах с нейтральным значением pH (5,4—8,0) в присутствии 7 М мочевины даже в простом линейном градиенте олигонуклеотиды разделяются строго в соответствии с зарядом молекулы, т. е. в соответствии с числом фосфатных групп или со степенью полимеризации (рис. 37.16) 98, 38]. Дальнейшее разделение одинаково заряженных фрагментов осуществляется в тех же условиях, но в отсутствие мочевины. Можно также вести элюирование в присутствии мочевины при низких [c.55]

Первая попытка получения чистого ненпциллина[1] включила хроматографический процесс на окиси алюминия в качество элемента сложного метода, состоящего из многократных экстракций, адсорбции на угле и других операций. Хроматографическая очистка пенициллина в эфирном растворе приводила к образованию ряда окрашенных зон, в одной из которых содержался пенициллин. После извлечения участка сорбента с пенициллином из колонки проводилась десорбция фосфатным буферным раствором pH 7. Удельная активность пенициллина после хроматографической очистки на окиси алюминия значительно повышается [2]. [c.156]

Прежде всего была иоследювана флуоресценция растворов салицилалазина пр разных значениях pH. Был приготовлен 0,01 % -ный раствор салицилалазина в ацетоне и ряд фталатных, фосфатных буферных растворов и буферных растворов из смесей буры и едкого натра в интервале pH от 2,0 до 12,0. [c.26]

М. Фосфатные буферы могут мешать дальнейшей хроматографии на бумаге. В литературе онисан ряд нодходяш,их органических буферных растворов [6], но автор их но опробовал. [c.52]

Вскоре после проведения этого исследования Консден, Гордон и Мартин [372] применили к пептидам свой знаменитый метод хроматографии а бумаге. Выбор подвижной фазы, очевидно, диктуется природой пептидов, подлежащих разделению, вследствие чего необходимы предварительные пробы однако некоторые съедения а выборе подвижной фазы в настоящее время можно найти в литературе [340, 349, 373 и пр.]. Положение пептидов на бумаге следует определять, не вызывая слишком сильного их разрушения. Для этой цели можно прибегнуть к флуоресценции [374] можно также использовать весьма разбавленный (0,02%-ный) раствор нингидрина или концентрированный его раствор, который наносится в отдельных точках специальной щеточкой [375а]. Крупные пептиды обнаруживаются с трудом, но их редко анализируют на бумаге. С помощью специальных цветных реакций (табл. 7) оказывается возможным установить расположение некоторых пептидов на хроматограмме [3756]. Двумерное хроматографирование на бумаге обладает действительно поразительной разрешающей способностью, которую целесообразно использовать для конечного разделения групп , полученных при предварительном фракционировании с помощью ионофореза, ионного обмена или адсорбции. Некоторые исследователи, располагающие очень малыми количествами дорогостоящего соединения, удовлетворены тем, что они могут провести хроматограмму на бумаге, используя для этого количество пептида, не превышающее примерно 1 мг. Другие исследователи сожалеют, что опасность перегрузки бумаги не позволяет им воспользоваться большими количествами, так как последующее разделение пятен и окончательная идентификация пятен, являющихся, повидимому, чистыми, представляет собой довольно деликатную операцию. Эти исследователи, однако, могут обратиться к двум другим методам либо к применению толстой бумаги [376] или хроматопилии [377а], либо к использованию колонок. Для фракционирования пептидов на бумаге можно применять ряд растворителей, в числе которых должны быть упомянуты фенол или крезол с аммиаком, колли-дин, пиридин -f- коллидин, фенол с буферным раствором, бутиловый спирт -f- уксусная (или муравьиная) кислота и фосфатные буферные растворы. [c.155]

Между экспериментальными данными советских авторов и некоторых иностранных исследователей, например Боудена, Боудена и Райдила, Хиклинга и Сольта, существовал ряд расхождений. В качестве примера можно привести основанное на данных Ф. Боудена [14] почти общепринятое в иностранной литературе и имевшее существенное влияние на развитие теории водородного перенапряжения утверждение о независимости перенапряжения в буферных растворах от величины pH. Утверждение это противоречит теории замедленного разряда, согласно которой величина перенапряжения должна увеличиваться приблизительно на 58 мв при увеличении pH на единицу. Нужно отметить, что по ряду чисто экспериментальных причин точнае измерения перенапряжения в буферных растворах представляют особые трудности, которые однако удалось преодолеть [16]. На рис. 1 представлена зависимость неренапряжения от значения pH в фосфатных растворах (кривая 1) и в смесях НС1 с КС1 (кривая 2). Как видно, в полном согласии с теорией, зависимость эта выражается прямой с угловым гюэффиционтом около 0,054 в, чем доказывается ошибочность указанно1 о утверждения Боудена. [c.24]

Например, необходимо определить концентрацию стрептомицина, содержащегося в культуральной жидкости S. griseus. Делают ряд разведений культуральной жидкости, освобожденной от мицелия, а параллельно таким же способом делают разведение стандартного раствора стрептомицина, содержащего, например, 10 мкг/мл. Испытуемую жидкость и стандартный раствор антибиотика необходимо разводить в бульоне с фосфатным буферным раствором при pH 7,8-8,0. Пример расчета приведен в табл. 35. [c.168]

Если нет специальных требований, суспензию для окрашивания и анализа приготавливают на сбалансированном буферном солевом растворе (например, на фосфатно-солевом буфере Дальбекко без кальция и магния, на растворе версена или растворе Хэнкса). При изучении внутриклеточных компонентов используют фиксированные клетки или проводят обработку клеток детергентом, чаще всего 0.05—0.2 %-ным (в зависимости от типа клеток) раствором Тритона Х-100. В качестве фиксатора в большинстве случаев используют 70—80 %-ный этанол. Фиксируют, приливая к суспензии охлажденный 95 %-ный этанол. Перед окрашиванием клетки отмывают от фиксатора. В ряде случаев (например, при проведении цитометрии ДНК, РНК, белка) допускается отмытые от среды [c.142]

По неизвестным причинам одноцепочечные молекулы ДНК в некоторых буферных системах разделяются не только по размерам, но и по ряду других параметров. Например, две полинуклеотидные цепи, полученные при денатурации ДНК некоторых фагов В, oli, разделяются в 0,6%-ной агарозе с использованием грас-фосфатного буфера. [c.233]

Гидроксилапатит обладает преимуществами перед первыми двумя формами фосфата кальция — он устойчив в широкой области pH и обладает хорошей стабильностью. Существует несколько методов приготовления гидроксилапатита. Тизелиус с сотр. [803] в 1956 г. после ряда проведенных работ [799, 800, 801] опубликовали метод получения гидроксилапатита, пригодного для хроматографии белков. Метод заключается в одновременном сливании 0,5 М водных растворов СаСЬ и NaiHP04 (по 2 л каждого раствора) с одинаковой скоростью (120 капель в минуту) в сосуд при постоянном помешивании Выпавший осадок брушита промывают 4 раза дистиллированной водой (по 4 л) с декантацией. Затем осадок суспендируют в 4 л воды и кипятят со 100 мл 40%-ного (по весу) раствора NaOH в течение одного часа. Затем осадок вновь промывают А раза водой с декантацией, добавляют 0,01 М фосфатный натриевый буфер нри pH 6,8 и полученную смесь нагревают до начала кипения. После декантации жидкости еще ра добавляют буфер и раствор кипятят 5 минут. Затем осадок кипятят со свежим 0,01 М буферным раствором 15 минут и дважды но 15 минут с 0,01 М фосфатным буфером. Наконец, гидроксилапатит тщательно размешивают в 0,001 М фосфатном буфере, pH 6,8. В этом методе весьма существенна операция кипячения осадка СаНР04 с раствором щелочи, так как при этом происходит гидролиз двухзамещен-ного фосфата кальция в гидроксилапатит. [c.97]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология