Хиноны, хроматография

В одной из ранних работ [1] предполагалось, что при окислении фенола озоном образуется хинон, и это мнение до настоящего времени никем не оспаривалось. В настоящей работе приведены результаты исследования механизма и кинетики реакции некоторых фенолов с озоном, выполненные с привлечением спектральных методов и тонкослойной хроматографии, которые раньше не использовались для исследования указанной реакции. [c.298]

Тем не менее электрохимические [2, 13, 14] методы нашли свое место в анализе тяжелых металлов, относящихся к наиболее опасным загрязнителям окружающей среды, а также (в качестве альтернативного метода) при идентификации некоторых токсичных летучих органических соединений (ЛОС) — альдегиды, амины, анилины, нафтолы, хиноны и др. — в дополнение к газовой хроматографии. На применении электрохимических методов, в частности полярографии, основаны некоторые стандартные методики определения тяжелых металлов в воздухе рабочей зоны промышленных предприятий (свинец, сурьма, медь, цинк, кадмий, олово и др.). утвержденные на федеральном уровне в России и США, а также стандартные методики для атмосферного воздуха и почвы, используемые в России [6, 8, 10—12]. [c.308]

Применение бумажной хроматографии. Методом БХ разделяют органические кислородсодержащие соединения спирты, сахара, альдегиды и кетоны, органические кислоты, фенолы, флавоноиды, кумарины, стероиды и терпеноиды, хиноны, антрахи-ноны, полициклические соединения, пигменты из растений и т. п. [c.356]

Довольно широкое применение нашла хроматография на полиамиде в работах по выделению и идентификации природных хинонов, которые представлены антрахинонами и их восстановленными формами — антронами и антранолами [177, 363,459, 517]. Антрахиноны являются основными действующими веществами в таких лекарственных растениях слабительного действия, как ревень, крушина, алоэ, кассия, щавель, марена и др. [c.79]

В будущем для анализа и очистки соединений этого типа ожидается широкое использование высокоскоростной жидкостной хроматографии на современных сорбентах, так как их нельзя разделять с помощью газовой хроматографии из-за низкой термической устойчивости некоторых хинонов. [c.48]

Хиноны могут быть выделены из большинства содержащих их природных веществ путем экстракции нейтральными или щелочными экстрагентами с последующим разделением экстрактов с помощью колоночной хроматографии. Фракции, растворимые в щелочи, могут быть далее разделены на колонке, наполненной [c.54]

Хроматография на бумаге антибиотиков—хинонов [152, 312] [c.139]

Хроматография на бумаге антибиотиков — хинонов [787] [c.140]

Щелочные растворы лейкоформ кубовых красителей непригодны для бумажной хроматографии. Причина этого кроется в быстром окислении лейкопроизводных с образованием нерастворимых хинонов, а также в связывании щелочи целлюлозой, в результате чего наблюдается постепенное понижение pH по мере продвижения фронта. Однако при замене гидроокиси натрия на [c.116]

Этот адсорбент был предложен для хроматографии лишь недавно [65] н до сих пор еще не применяется в широком масштабе. Окись железа представляет собой адсорбент очень большой емкости, который можно легко приготовить и активировать или дезактивировать. Она с успехом была использована для отделения антрацена от тетрацена, разделения смесей изомерных диоксиантрахинонов и смесей тетраокси- и гексаоксиантра-хинонов. [c.345]

В этом направлении большой интерес представляют работы Зи, Блемера, Рийндерса, Ван Кревелена [273, 274], использовавших в качестве флюидов пентап, диэтиловый эфир, изопропанол при давлении 30—50 атм и температуре 250° С вместо газа-носителя низкого давления. В основе метода флюидной хроматографии лежит принцип смещения адсорбционного равновесия, которое определяется двумя факторами молекулярным взаимодействием в плотной газовой фазе и модифицированием поверхности адсорбента молекулами адсорбированного газа-носителя — флюида. Метод позволяет при температуре 200—250° С разделять производные алкилбензолов с числом атомов углерода 36 (температура кипения выше 500° С) за короткое время одновременно улучшается симметрия пиков. В работе [273] приведены примеры разделения антиоксидантов, алкалоидов, хинонов и эпоксисмол (рис, 52, 53). [c.155]

Полиамиды применяются для жидкостной хроматографии липофильных I гидрофильных веществ флавонов, халконов, хинонов, лактонов, ароматически нитросоединений, изомерных нитроанилинов, дубильных веществ, фенолов, орга нических кислот, амидов, аминов, ДНФ- и данзил-производных аминокислот сахаров, гликозидов, сульфокислот и сульфонамидов, азотистых оснований нуклеозидов и нуклеотидов, стероидов, витаминов, пестицидов, красителей антиокислителей, лекарственных жаропонижающих веществ. В хроматографи ческой практике полиамиды используются с 1955—1956 г. [c.186]

В другой статье [3] эти исследователи показали, что в качестве восстановителей можно использовать как полимеры только одного винилгидрохинона, так и его сополимеры с метилстиролом или со стиролом, сшитые дивинилбензолом при этом полимер окисляется и способен в дальнейшем играть роль окислителя. Эти процессы качественно продемонстрированы на дисках из фильтровальной бумаги, пропитанных поливинилгидро-хиноном, на которые затем наносили различные реактивы, используя технику радиальной хроматографии. Этими реактивами были водный раствор хлорного железа (около 0,05 н.) и свежеприготовленный феррицианид в фосфатном буфере с pH = 6,6. Обратимость продессов была показана на различных бумажных дисках следующим образом. На бумагу наносили небольшую каплю раствора иода в иодистом калии ири pH 6,4 или 7,0, в результате чего получали черновато-коричневое пятно. По мере введения чистого буфера пятно расширялось и окраска его исчезала, так как иод восстанавливался полимером. Если в этот момент снять с прибора верхнюю пластину и произвести пробу на свободный иод, то его не окажется, поскольку он полностью восстанавливается в поди д. [c.90]

Раздел, посвященный хинонам, включает жидкостную хроматографию простых хинонов, антрахинонов, убихинонов и пласто-хинонов. Применительно к ним жидкостная хроматография используется главным образом для очистки и препаративного получения синтетических соединений или для выделения активных компонентов из природных веществ. [c.48]

Жидко-жидкостную хроматографию использовали для отделения ряда примесей, присутствующих в образце 3-формилри-фампина. Оптимальный коэффициент распределения подбирали, варьируя полярность носителя. Наилучщей системой оказалась смесь зипакс—полиамид в системе н-гексан—этанол (3 1). Эти условия обеспечивают возможность чувствительного детектирования отделяемых примесей (хинона, рифампина и Х32), а также надежное определение главного компонента смеси, сильнополярного относительно высокомолекулярного 3-формилрифам-пина [74]. [c.223]

Порошки полиамидов используют в хроматографической практике с 1955— 1956 гг. Полиамиды применяют для жидкостной адсорбционной хроматографии липофильных и гидрофильных веществ — фенолов, фенолгликозидов, флаво-ноидов (флавонов, халконов, катехинов и др.), кетонов, хинонов, лактонов, полиспиртов, углеводов, органических кислот, сульфокислот и сульфонамидов, тиаминов, ароматических нитросОединений, ДНФ- и дансил-производных аминокислот, азотистых гетероциклических соединений (индолов, хинолинов, алкалоидов, нуклеиновых оснований, нуклеозидов и нуклеотидов, желчных пигментов), стероидов и желчных кислот, каротиноидов, витаминов, антибиотиков, пестицидов. [c.47]

Работу проводили на хроматографе марки Цвет-5300 , [2] с пла-менно- ионязационным детектором и стеклянными колонками 2 мХЗ мм. Высокие (более 300°С) значения температур кинения сужали возможности выбора неподвижной фазы, сводя их к термостойким кремний-органнческим жидкостям и каучукам. Ранее предлагавшиеся [3] для разделения смеси хинонов (III, а) и (ГП, б) жидкости НПС-50 и НПС-100 использовались на пределе максимально допустимой рабочей температуры н оказались непригодными для проведения серийных анализов в заводских условиях из-за быстрого уноса вследствие протекания процессов термодеструюцин. Паилучшие результаты были получены при использовании в качестве неподвижной фазы кремний-органической жидкости марки ПФМС-6 [4], нанесенной в количестве 7 мае. % на хроматон-супер, М. На стадии подбора условий разделения [c.55]

Аминопроизводные антрахинона составляют одну из важнейших и наиболее обширных групп промежуточных продуктов и красителей ряда антрахинока, хроматографии их посвящено значительное число работ. Кастильони предложил разделять 1- и 2-аминоантра-хиноны методом восходящей или нисходящей хроматографии на бумаге в системе бензол — уксусная кислота (1 3) или бензол, насыщенный соляной кислотой. Франц описал поведение 1- и 2-аминоантра-хинонов в семи хроматографических системах, из которых наилучшее разделение обеспечивает система. -бутанол — этанол — КН40Н (3 I 1). Этим методом можно также разделить 1-амино-и 1,5-диаминоантрахиноны и отделить их от смеси 2-амино-, 1,2-,. [c.123]

Хроматография. Адсорбционная хроматография широко применяется для разделения и идентификации пространственно-затрудненных фенолов, их функциональных производных, циклогексадиенонов, хинонов и других продуктов превращения подобных фенолов. Кроме метода хроматографии на колонках значительное распространение нашел метод хроматографии в тонком слое адсорбента (окись алюминия, силикагель) Система растворителей для хроматографии пространственно-затрудненных фенолов обычна подбирается экспериментально в каждом отдельном случае. Наиболее распространены следующие смеси бензол — метанол, бензол—гексан, октан—эфир, диэтиловый эфир диэтиленгликоля—пет-ролейный эфир. Фенольные соединения проявляют парами иода. В табл. 45 приведены значения Rf некоторых алкилфенолов 5- в системе растворителей бензол—метанол (9 1, объемн.). [c.311]

С целью установления характера хроматографии хино-нов Эндрес [361] получил изотерму сорбции и-бензохинона на обычном и ацетилированном полиамиде. Как видно из рис. 6, при увеличении концентрации г-бензохинона наступает насы-ш,ение, соответствующее 11,5—12,0 мкмолям хинона/г полиамида. Число свободных аминогрупп в исследуемом полиамиде равняется 24,6 мкмоля, что свидетельствует о связывании хинона с двумя аминогруппами. На основании этого Эндрес [359, 361, 363] считает, что хинон образует необратимое соединение с полиамидом за счет 1,4-присоединения к концевым аминогруппам полиамида. Это хорошо подтверждают результаты, полученные при изучении хроматографического процесса хи-нонов на ацетилированном полиамиде 361, 404]. Если концевые аминные группы полиамида будут блокированы ацетиль- [c.28]

Систематические исследования в области хроматографии хинонов на полиамиде провел Эндрес с сотр. [359, 361—363, 404]. [c.78]

Например, с введением нуклеофильных гидроксильных групп и увеличением их числа начинает проявляться сорбция за счет образования водородных связей с амиднымп группировками полиамидной цепи. С увеличением углеводородной доли в молекуле хинонов становится возможным использовать для их разделения распределительную хроматографию. [c.85]

Имеется несколько теорий, посредством которых пытаются объяснить механизм хроматографического разделения на полиамидах. Авторы одной из таких теорий считают, что основную роль в данном случае играет образование водородных связей между протонодонорньши группами хроматографируемого вещества и карбонильным кислородом амидных групп в полиамидной цепи. При этом избирательное элюирование адсорбированных веществ происходит в результате разрыва водородных связей вследствие конкурирующего влияния элюентов [23, 24, 34]. Эту концепцию можно в первую очередь применить к хроматографии соединений, содержащих протонодонорные группы, например гидроксильные, аминные и иминные, сульфоновые, карбоксильные, пероксикарбоксильные и группы, содержащие пятивалентный фосфор. В число веществ, хорошо разделяемых на полиамидах, входят соединения с электрофильными функциональными группами, например хиноны, нитросоединения, нитрилы и альдегиды. По отношению к этим соединениям амид- [c.171]

Хроматографии на полиамиде посвящено много хороших обзорных статей, приведем хотя бы две последние [75, 82]. Полиамид чаще всего применяется при разделении фенольных соединений — простых промежуточных продуктов синтеза или природных соединений, например лигнанов и различных продуктов деструкции лигнина, затем флавоноидов, многоатомных спиртов, кислот, аминокислот, пептидов, азотсодержащих гетероциклических соединений, некоторых алкалоидов, стероидов, желчных кислот, антибиотиков, синтетических красителей, инсектицидов и гербицидов, кумаринов, соединений иридия и т. д. Для хроматографии хинонов и их производных, а также ароматических соединений, нитро- и полинитросоединений используют ацетилированные полиамиды. [c.175]

Препаративную хроматографию па бумаге часто применяют на начальных этапах работы, когда препарат имеется в небольших количествах, а другие методы фракционирования еще не разработаны или не дают хороших результатов. В частности, этот метод использовали при изучении антибиотиков, выделенных из растений [307—310], некоторых антибиотиков из грибов — ци-клопенина [311], хинонов [312], п-аминобензилпеницнллина [313] и других антибиотических препаратов [13, 185, 226, 314]. Препаративная хроматография на бумаге очень удобна при очистке радиоактивных антибиотиков [271, 315—317] и окрашенных веществ этот метод применяли при фракционировании антибиотиков-пигментов [126, 305, 306, 318—324], актиномицинов [325, 326]. [c.35]

Восстановление полициклических хиноновых красителей до родственных углеводородов — один из наиболее широко применяющихся методов. Образующиеся углеводороды или их гетероциклические аналоги могут быть идентифицированы с помощью бумажной, тонкослойной и газожидкостной хроматографии, ИК-и масс-спектроскопии и т. п. С целью восстановления карбонильные соединения подвергают перегонке с цинковой пылью [5] (см. также раздел 1.2.) или обрабатывают расплав хинона цинковой пылью, хлоридом цинка и поваренной солью при 310 °С [57]. В числе других реагентов можно назвать циклогексоксид алюминия в циклогексаноле [58], никель Ренея [59], боргидрид натрия и эфират трифторида бора [60]. [c.308]

Основное направление реакхщи — образование феноксильного радикала, присоединение к нему оксирадикала, по-видимому, еще в клетке и последующая изомеризация продукта присоединения (7.4 с) с раскрытием цикла. Небольшая часть феноксильных радикалов, очевидно, выходит из клетки , что приводит к образованию дифенохинона (7.1 с), который обнаруживается в виде побочного продукта (2—5%) методом тонкослойной хроматографии, либо после присоединения молекулы кислорода превращается в хинон (7.2 с). [c.229]

Смотреть страницы где упоминается термин Хиноны, хроматография: [c.158] [c.38] [c.305] [c.305] [c.72] [c.481] [c.483] [c.375] [c.264] [c.192] [c.56] [c.7] [c.100] [c.59] [c.199] [c.81] [c.208] [c.100] [c.123] [c.117] [c.412]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология