Липидов связывание

Данные органы являются объектом первоочередного воздействия токсических веществ. Другие же ткани имеют значительно меньшее кровоснабжение и в них ксенобиотики поступают медленнее. Однако мышцы или жировые ткани составляют большой процент от массы тела, поэтому экзогенные вещества постепенно в них накапливаются, т е. создается депо, поддерживающее концентрацию вещества в крови на определенном уровне сравнительно длительный период времени. Следует отметить, что в тканях чужеродное вещество может распределяться равномерно в соответствии с его растворимостью в липидах, связыванием с белками, кровоснабжением органов и тканей и т д. Многие ксенобиотики присоединяются к специфическим рецепторам, существующим в организме для взаимодействия с эндогенными веществами (гормоны, нейромедиаторы и др.). [c.510]

Специфич. взаимод. между отдельными белками приводят к тому, что в М. б. образуются белковые ассоциаты, или ансамбли, к-рые по составу и св-вам отличаются от окружающих участков мембраны и часто окружены липидами определенного типа. Иногда липопротеиновые участки М. б., содержащие характерный набор белков и липидов, удается выделить при фрагментации мембран. Образование ассоциатов белков может происходить также в результате их специфич. связывания на пов-сти М. б. с нек-рыми водорастворимыми белками (напр., с антителами, лектинами) или при фазовом переходе липидов в мембране (обычно белки скапливаются там, где липиды продолжают оставаться в жидкокристаллич. состоянии). [c.30]

Термином липиды называют очень большую и крайне разнородную группу веществ. В основе отнесения этих веществ к единой категории лежит их высокая растворимость в неполярных растворителях или близость к соединениям, которые обладают таким свойством. Большинство липидов не является высокополимерными соединениями и состоит всего из нескольких связанных одна с другой молекул. Некоторые из этих строительных блоков представляют собой линейные цепи ряда карбоновых кислот, образующихся в ходе сложных реакций полимеризации, Полученные в результате молекулы, например молекулы жирных кислот, имеют по большей части гидрофобный характер, однако обычно содержат как минимум одну полярную группу, которая может служить местом связывания с другими компонентами. Довольно часто присутствуют ионные группы (фосфат, —ЫНз) или полярные углеводные компоненты. Липиды, содержащие как полярные, так и неполярные группы, обычно встречаются в мембранах и на других поверхностях раздела между водной средой и гидрофобными областями внутри клеток. [c.146]

Очевидно, мембрана и Са -насос образуют функциональную единицу, где мембрана служит барьером, препятствующим возврату накопленного кальция. Кроме того, мембрана является двумерным растворителем белка как показано в опытах по связыванию липида с очищенным белком, поверхность транспортирующей Са АТРазы имеет большее сродство к неполярной среде, чем к воде. [c.267]

Для изучения возможного связывания и влияния ГНР на конформационное состояние липидов мембран клеток в работе изучали взаимодействие ряда ГНР с липосомами, моделирующие мембраны, не содержащие в липидном бислое белков. [c.561]

Добавление возрастающих концентраций пропиленгликоля приводило к монотонному увеличению интенсивности узкой компоненты спектра ЭПР и уменьщению щирокой компоненты спектра, т.е. к вытеснению зонда из липидов мембраны молекулами пропиленгликоля вследствие связывания их с липидами липосом. При концентрации пропиленгликоля, равной 25%, практически весь спиновый зонд вытесняется молекулами пропиленгликоля в воду и наблюдался узкий сигнал ЭПР зонда 2 в воде. [c.561]

Эти данные коррелируют со сродством этих веществ к липидам биомембран и свидетельствуют о том, что дегидратация внутриклеточной воды клетки начинается со связывания вспомогательного вещества с поверхностью мембраны. Из рисунка также следует вывод о том, что по способности диффундировать через мембрану изученные вещества располагаются в ряду ПЭО-600 < ПЭО-ЗОО < глицерин < пропиленгликоль. Т. е. осмотическая активность растворителей обратно пропорциональна коэффициенту диффузии растворителя через биомембрану. [c.569]

Механизмы модуляции биодоступности ЛВ для ГНР и других ФВВ заключаются в эффективном связывании их с белками и липидами мембран различных клеток с последующим вытеснением ЛВ из мембран по конкурентному механизму, изменении текучести липидов и [c.572]

Сродство флавоноидов 1-5 коррелировало с их гидрофобностью. Была вычислена константа связывания К<.з для веществ 1-4 с САЧ и расстояние между Тгр 214 остатком и первым участком связывания 1-5. Прослежено конкурентное связывание 1-2 с олеатом и веществ 1 и 3 с веществом 5 [19]. Таким образом, различные флавоноиды способны связываться как с липидами биологических мембран, так и с белками. [c.577]

Изучали спектры ЭПР спинового зонда 5, находящегося в липидном слое мембран эритроцитов в присутствии различных флавоноидов. Введение этих соединений во взвесь эритроцитов в концентрации 10 > М не приводило к заметным изменениям в спектрах ЭПР спинового зонда 5, т.е. изучаемые флавоноиды не влияли на текучесть липидов мембран эритроцитов и если связывались с эритроцитами, то связывание происходило с поверхностными белками мембраны эритроцитов. [c.577]

Так как фосфолипиды содержат фосфатные группы, с помощью ЯМР Р можно наблюдать фосфорсодержащие липосомы. Выше температуры фазового перехода при благоприятных условиях в искусственных мембранных везикулах можно наблюдать сигналы от различных фосфолипидов (рис.3.47). В малых везикулах удается различить линии, соответствующие фосфолипидам, находящимся на внутренней и внешней сторонах мембраны (химические сдвиги отличаются на несколько Гц), Для более надежного отнесения соответствующих резонансных линий фосфолипидов на внутреннюю или внешнюю поверхность мембраны, необходимо добавить парамагнитное вещество, для которого проницаемость мембраны невелика, и в основном будет наблюдаться связывание этого вещества с фосфолипидом, находящимся на одной из сторон поверхности. Резонансные линии липидов, связанных с парамагнитным веществом, в этом случае сильно уширяются и практически не наблюдаются в спектре. Спектры ЯМР Р липосом также являются подтверждением сделанного ранее вывода о том, что увеличение напряженности магнитного поля далеко не всегда обеспечивает более высокое разрешение, так как для ядер фосфора вклад в релаксацию за счет анизотропии химического сдвига будет значительным. В этом случае скорость релаксации возрастает как квадрат напряженности магнитного поля (см. формулу (1.38)),а разность значений химических сдвигов увеличивается с ростом поля линейно, поэтому уширение линий может компенсировать воз- [c.157]

Гидрофобная зона воронки, возможно, состоит из липидов. Эту зону можно идентифицировать с помощью фотоаффинного реагента (рис. 6.8) производного ТЭА, который способен активироваться при освещении с образованием ковалентной связи с центром связывания. [c.158]

В составе клеточной стенки грамположительных эубактерий в небольших количествах также найдены полисахариды, белки и липиды. Для полисахаридов и липидов показана возможность ковалентного связывания с макромолекулами клеточной стенки в отличие от белков, которые (у тех видов, где имеются) формируют на ее внешней поверхности отдельный слой. [c.32]

Для любого процесса в живом организме необходима энергия, которая получается при протекании химических реакций внутри клетки. Основу биохимических процессов составляют химические превращения, в частности реакции окисления и восстановления. Биологическое окисление служит, таким образом, основным источником энергии для ряда внутренних биологических изменений. Многие из протекающих при таком окислении реакции заключаются в сжигании компонентов пищи, например сахаров или липидов, что дает энергию, используемую затем для осуществления таких важных процессов л<изнедеятельности, как рост, размножение, поддержание гомеостаза, мускульная работа и выделение тепла. Эти превращения включают также связывание кислорода дыхание — это биохимический процесс, в результате которого молекулярный кислород восстанавливается до воды. При метаболизме энергия сохраняется аденозинтрифосфатом (АТР), богатым энергией соединением, которое, как известно, служит универсальным переносчиком энергии. [c.14]

Лектинами называют белки или гликопротеиды растительного (фитогемагглютинины) или животного происхождения, проявляющие более или менее избирательное сродство к остаткам индивидуальных сахаров или групп сходных сахаров. Разнообразие остатков сахаров, часто встречающихся в природе, невелико, но они входят в салшх различных колхбинациях во множество биологически важных соединений полисахаридов, мукополисахаридов, гликопротеидов, глико-липидов и др. Многие из этих соединений участвуют в построении клеточных мембран. Подобно антителам, лектины обладают более чем одним участком связывания сахаров, что обусловливает их сио-собностъ агглютинировать эритроциты и другие клетки, отбирая их по классам, напрпмер опухолевые или эмбриональные. Используемые в качестве аффинных лигандов, лектины позволяют решать важные задачи очистки содержащих сахара компонентов плазмы, гликопротеидов клеточных мембран и др. [c.363]

Под третичной структурой Ь понимают расположение его полипептидной цепи в пространстве. Существ, влияние на формирование третичной структуры оказывают размер, форма и полярность аминокислотных остатков. В молекулах глобулярных Б. большая часть гидрофобных остатков скрыта внутри глобулы, а полярные группировки располагаются на ее пов-сти в гидратированном состоянии. Однако ситуация не всегда настолько проста. Связывание белка с др. молекулами, иапр. фермента с его субстратом или коферментом, почти всегда осуществляется с помощью небольшого гидрофобного участка на пов-сти глобулы. Область контакта мембранных Ь с липидами формируется преим. гидрофобными остатками. Третичная структура многих Ь составляется из иеск. компактных глобул, наз. доменами (рис. 3). Между собой домены обычно бывают связаны тонкими перемычками -вытянутыми полипеп-тидньи и цепями. Пептидные связи, расположенные в этих цепях, расщепляются в первую очередь при обработке Б. [c.249]

Комплексообразование может также включать ионы, а не белки или липиды, но в этом случае отсутствие комплекса может быть источником проблем, поскольку многие белковые определяемые вещества содержат центры связывания двухвалентных катионов, и антитела, вьфащенные иа эти белки in vivo, могут распознавать конфигурацию, удерживаемую катионным комплексом (главным образом, Са + или Mg +) таким образом, в отсутствие этих катионов конформация может измениться, так что распознавание с антителом становится неэффективным и анализ терпит неудачу. [c.602]

После размола зерна липиды разделяются на три основные фракции. Кроме нескольких липидных мицелл, фракция, состоящая преимущественно из лизофосфатодилхолина, связана с крахмалом и составляет около 1 % его массы [72]. Однако самая значительная фракция связана с белками. Действительно, клейковина (нерастворимые в воде белки пшеницы) связывает 65 % полярных и неполярных липидов муки [114]. Белок с молекулярной массой 9000 Да, на который приходится около 10 % клейковины, является главным сайтом связывания липидов [32]. [c.286]

Депонирование лекарственного вещества после проникновения в биологический субстрат может происходить, например, в липидах (для жирорастворимых лекарственных веществ типа тиопентала) путем связывания с нуклеофильными кислотами или хондроитином (для катионных соединений типа мепакри-на—акрихина), за счет связывания с сывороточным альбумином (для анионных соединений типа дикумарина и су марина). Процессы депонирования обычно легко обратимы. В ряде случаев депонирование оказывается фактором благоприятным, когда, например, за счет запасов обеспечивается поддерживание постоянного уровня лекарственного вещества в крови. Однако депонирование может сыграть и неблагоприятную роль. Так бывает, например, когда после обычной дозы снотворного человек не в состоянии проснуться на следующее утро. [c.108]

Когда эритроциты, помещенные в суспендированную среду — коллоидный кремнезем (с частицами диаметром 14 нм),—центрифугировали, состоящая из клеток поверхность сморщивалась с образованием зернистой структуры, которая, вне всякого сомнения, появлялась благодаря деформации, возникшей при адсорбции коллоидных частиц [270]. Браун [271] наблюдал, что липиды поверхности эритроцитов адсорбировались кремнеземом. Депассе и Варлус [272] предположили, что сильное связывание частиц кремнезема с поверхностью эритроцитов обусловливается присутствием в мембране четвертичных аммониевых ионов. [c.1059]

Связывание ФВВ с мембранами клеток может сопровождаться структурными изменениями в липидах и белках мембран, приводящими к изменению проницаемости мембран, в частности, ФВВ. Важную роль при этом играют изменения текучести липидов, что может сказаться на изменеии биодоступности Л В. [c.565]

Различные бактериальные штаммы продуцируют серологически различные токсины, но все они построены одинаковым образом [16] и образуются из неактивного предшественника (претоксина — белка с М 145 000) посредством протеолитиче-ского расщепления одной из пептидных связей. Получающиеся субъединичные пептиды с М 50 000 и 100 ООО связаны дисуль-фидной связью, восстановительное расщепление которой приводит к потере токсичности [17]. Токсин ботулизма связывается специфично с ганглиозидами, но не с цереброзидами или другими липидами. Прочность связывания возрастает с увеличением числа остатков сиаловых кислот в ганглиозиде (т. е. от Gmi к Gti). Возможно, что токсин может также реагировать с гликопротеинами. Токсин ботулизма in vitro селективно связывается с синаптосомами, а in vivo он блокирует химические синапсы посредством ингибирования пресинаптического высвобождения молекулы медиатора. [c.52]

Как показывает само название, сфинголипидозы вызываются дефектами ферментов катаболизма (деградации) сфинголипидов. Такие дефекты приводят к накоплению липида или промежуточного продукта его деградации. Причинами этих наследственных заболеваний являются нарушения генетически контролируемого синтеза расщепляющих ферментов. Известен также по крайней мере один случай, когда болезнь обусловлена дефектом не самого фермента, а белкового фактора, активируемого гидролазой и облегчающего связывание фермента с его липофильным субстратом. [c.54]

Еще одна трудность выделения натриевых каналов связана с их сравнительной нестабильностью вне мембраны. Пока известны лишь следующие биохимические характеристики канала ТТХ-связывающий компонент мембраны аксона с 230 ООО (по данным метода инактивации радиацией) или 260 000 (определено биохимическими методами), коэффициент седимента-. ции 9,2 этот компонент инактивируется протеазами, при нагревании и при обработке ионными детергентами (додецилсуль-фатом натрия). Часть натриевого канала, ответственная за связывание ТТХ или STX, построена, по крайней мере частично, из белка СИ]- Молекулярная масса натриевого канала синаптосом мозга равна в целом 320 ООО, что обусловлено присутствием двух небольших полипептидных цепей (37 ООО и 39 ООО) и одной большой (260 000). Однако нельзя исключить, что другие молекулы, липиды или углеводы частично или полностью не участвуют в транспорте ионов Na+. [c.142]

Важной областью исследований, проводимых в настоящее время, является разработка полимеризующихся ПАВ, дающих двухмерные полимерные пленки, которые бы были механически прочными и молекулярно предрасположенными к специфическому связыванию. Такая бесконечно малая микроинкапсуляция, конечно же, еще далека от использования в промышленных масштабах, однако за последние десятилетия сделан большой шаг вперед [74,75]. Вселяют надежду недавно предложенные полимери-зуемые липиды, такие как РЕ и P (рис. 5.44,5.45), поскольку было показано, что они полимеризуются с сохранением достаточной гибкости для поддержания лиотропной структуры мезофазы. [c.197]

Для диагностики сифилиса выпускают кардиолипиновый антиген для реакции микропреципитации. Этот антиген включает 3 очищенных липида 0,03% 1,3-дифосфатглицерина (кардиолипин), 0,27% фосфатидилхолина (лецитин) и 0,9% холестерина в абсолютном этаноле. Препарат выпускают в ампулах по 2 мл. Срок хранения — 4 год. Инактивированные вирусные диагностикумы используют в реакциях связывания комплемента, нейтрализации и торможения гемагглютинации. [c.487]

I ведет к серьезным нарушениям липид-липидного и липид-проте-инового взаимодействия в мембране, следствием чего является ее. дестабилизация и повышение проницаемости. По этим причинам усиливается поглощение клетками веществ из окружающей среды, например, бензилпенициллина в присутствии полиэлектролита ПСК СбНзСНг- Х=1) [5] (Рис. 2) и сорбция антисептика мертио-лата мицелием гриба Aspergillus niger в присутствии того же полимера [12]. Связывание полимера клетками приводит к созданию высоких локальных концентраций антимикробного препарата в клеточной стенке [12] и увеличивает скорость его проникновения к акцептору в клетке. [c.166]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология