Калибровочная суспензия

Определение параметров калибровочной суспензии [c.148]

Приведенные уравнения справедливы только для очень разбавленных суспензий (не более 100 мг на 1 л). Турбидиметрические и нефелометрические методы обладают высокой чувствительностью. Однако применяются они не широко, что объясняется трудностью получения взвесей с одинаковыми размерами частиц. Количественные нефелометрические и турбидиметрические определения проводят, пользуясь калибровочной кривой. [c.271]

В каждой из калибровочных суспензий определяют массу осадка. Для этого 90 мл суспензии, отмеренной цилиндром, фильтруют под вакуумом на стеклянном фильтре № 3. Осадок высушивают до постоянной массы ( 0,001 г) в сушильном шкафу при 100—105 С. Массу осадка (т) вычисляют по формуле [c.200]

При определении параметров калибровочной суспензии обычно применяют один из следующих методов [c.148]

В зависимости от методики калибровки используется один из следующих параметров калибровочной суспензии [c.148]

Процесс калибровки прибора сводится к сопоставлению тех или иных параметров калибровочной суспензии с определенными делениями шкалы дискриминатора. В результате такого сопоставления из уравнений (219)—(221) определяются величины калибровочных коэффициентов к и к . [c.149]

Приравнивание моды дифференциальной кривой счетного распределения прибора к среднему объему частиц [386, 405, 508]. Как известно, мода (вершина) распределения совпадает со средним значением только у симметричных кривых. Кривые распределения объемов частиц, как правило, несимметричны, поэтому метод дает удовлетворительные результаты лишь в случае т лой дисперсии размеров частиц калибровочной суспензии. [c.150]

Для определения калибровочных коэффициентов в этом случае необходимо иметь как минимум две калибровочных суспензии с различной величиной частиц (310, 521, 523, 933]. [c.151]

По стандартной суспензии строят калибровочную кривую, отражающую измеиение коэффициента поглощения в зависимости от содержания в растворе взвешенных веществ. Затем определяют коэффициенты поглощения испытуемой ноды и по калибровочной кривой находят содержание в ней взвешенных веществ. [c.127]

Для определения концентрации органических красителей обычно применяют метод калибровочной кривой. Сначала готовят серию стандартных растворов, содержащих определенные количества красителя, принятого за эталон (типовой образец). В зависимости от свойств красителя его либо растворяют в дистиллированной воде, либо добавляют к нему для лучшего растворения небольшое количество соды или кислоты. Некоторые красители, нерастворимые в воде (сернистые, кубовые), специальными приемами переводят в форму, пригодную для колориметрического анализа (например, в гидрозоль — устойчивую суспензию, в которой краситель находится в виде мельчайших частиц и для которой сохраняется пропорциональная зависимость оптической плотности от концентрации). [c.419]

Получают митохондрии печени крысы согласно описанию на с. 406. В кювету с постоянным перемещиванием, содержащую 3 мл среды инкубации, помещают К+ Чувствительный электрод и, установив перо самописца на середину шкалы, калибруют чувствительность прибора внесением 4—6 добавок раствора КС1 с точно известной концентрацией (по 20—30 мкМ). В другой пробе в среду инкубации вносят суспензию митохондрий (3—5 мг белка на 1 мл пробы), 5 мкМ ротенон и регистрируют в течение 1—2 мин концентрацию К+ во внешней среде. В пробу добавляют валиномицин (около 0,1 нмоль на 1 мг белка), измеряют концентрацию ионов К+ во внешней среде и рассчитывают скорость его диффузии в стационарном состоянии. Внесением 2,4-динитрофенола (100 мкМ) индуцируют выход ионов К+ во внешнюю среду. Содержание эндогенного К+ в митохондриях определяют добавлением к суспензии митохондрий в среде инкубации раствора детергента (тритон-Х-100) до конечной концентрации 0,1%- Изменения концентрации К+ в среде рассчитывают по калибровочной кривой. [c.444]

Нефелометрические и турбидиметрические методы мало точны. Ошибки, происходящие от неточности фотометрических измерений, обычно ничтожно малы по сравнению с ошибками, причиной которых является недостаточная воспроизводимость суспензий. Действительно, очень трудно получить при каждом определении частицы суспензии тех же размеров, какие были в стандартной суспензии при построении калибровочной кривой. Многие [c.297]

Сравнивают коэффициенты светопропускания образца исследуемой воды и пробы воды, из которой предварительно удалены взвешенные вещества. При содержании взвешенных веществ до 10 мг/л длина кюветы 50 мм, при большем содержании длина кюветы уменьшается. Калибровочный график получают, определяя коэффициент светопропускания суспензий глины, отобранной возле водоисточника и содержащих [c.272]

При малых концентрациях взвешенного вещества чувствительность оказывается недостаточной. В этих условиях предпочтительнее проводить измерения количества света, рассеянного под прямым углом к падающему пучку. Этот метод называется нефелометрией. Он неприменим к плотным суспензиям из-за взаимного экранирования частиц. Оба метода основаны на относительных измерениях и требуют использования калибровочных кривых. [c.238]

Построение калибровочного графика. В пробирки с меткой 5 ьит помещают чистые фильтры АФА-В с обрезанными опрессованными краями. На фильтры наносят стандартную суспензию сажи в количествах 0,3 0,6 I 1,5 2 3 4 и 5 мл и доводят" дихлорэтаном до объема 5 мл. Приготовленные растворы соответствуют 3 6 10 15 20 30 40 50 мкг сажи в 5 мл раствора. Содержимое пробирок взбалтывают до полного растворения фильтра, выливают в кюветы и фотометрируют. [c.529]

Для построения калибровочного графика при нефелометрическом определении сульфат-иона 25,0 мл раствора H2SO4, содержащего 0,215 мг/мл SO3, поместили в мерную колбу на 100 мл. Затем в мерных колбах на 100 мл, содержащих 20,0 15,0 10,0 6,00 и 2,00 мл этого раствора, приготовили суспензии BaS04 и измерили их кажущиеся оптические плотности [c.153]

Кровь. В качестве калибровочной суспензии может быть исполь-зованакровь человека [386,387,389,392,438,447,486,519—523, 648, 652, 660, 714, 715], а также различных домашних и лабораторных животных [521, 522]. Достоинства такой суспензии — легкая доступность материала, небольшой разброс размеров эритроцитов (у человека — 6—9 л в), устойчивость к агглютинации. Однако наряду с этим имеется ряд существенных недостатков неустойчивость размеров эритроцитов, трудность длительного хранения и др. Поэтому при использовании эритроцитов в качестве эталонных частиц необходима особая осторожность [520, 523]. При соблюдении всех мер предосторожности калибровка эритроцитами дает вполне удовлетворительные результаты [520, 522]. Стремление к стабилизации размеров эритроцитов и к увеличению срока их хранения привело к созданию калибровочных суспензий путем специального консервирования крови [413, 550, 872, 914-931]. [c.147]

Определение параметров калибровочной суспензии производят, если размеры частиц неизвестны, а также для проверки фирменных данных. Так, например, фирма Доу кемикл (США) приводит средние диаметры частиц полистиролового латекса с точностью до четвертого знака. Однако, как показал Принсен 1828], указанная точность сильно завышена, поскольку разные латексы дали отклонение калибровочного коэффициента на 6% от среднего значения (исследовали латексы со средними диаметрами частиц 1,171 1,305 2,051 2,85 и 3,49 лк). [c.148]

При нефелометрическом определении хлорид-иона для построения калибровочного графика 20,0 мл раствора КС1, содержащего 0,5 мг/мл С1, поместили в мерную колбу емкостью 100 мл. Затем в мерных колбах на 50 мл, содержащих 8,0 6,0 4,0 и 2,0 мл этого раствора, приготовили суспензии Ag l и измерили их кажущиеся оптические плотности [c.154]

При нефелометрическом определении цинка для построения калибровочного графика в мерные колбы емкостью 50 мл ввели 18,0 14,0 10,0 6,0 и 2,0 мл стандартного раствора соли цинка, содержащего 5 мг/мл Zn, приготовили в них суспензии К22пз[Ре(СЫ)еЬ и измерили их кажущиеся оптические плотности [c.155]

Навеску пирита 0,55(3 г растворили и раствор разбавили водой до 250 м.г из 5 ли этого раствора после, соответствующей обработки получили 50 Л1Л суспензии Ва504, оптическая плотность которой оказалась равной 0,45. Для построения калибровочного графика были получены следующие данные [c.94]

В спектрофотометрическую кювету с длиной оптического пути 1 см вносят 0,1 мл суспензии иммобилизованного на сефарозе белка, добавляют 2 мл раствора кумасси, перемешивают при комнатной температуре 2—3 мин и быстро измеряют оптическую плотность смеси при 595 нм, используя в качестве контроля кювету, содержащую 0,1 мл суспензии неактивированной сефарозы и 2 мл красителя. Для построения калибровочного графика к 0,1 мл суспензии неактивированной се-<фарозЫ добавляют от 2 до 20 мкг исходного препарата белка и 2 мл раствора красителя, а затем измеряют оптическую плотность. С помощью данного метода можно определить содержание белка в препаратах иммобилизованных ферментов, содержащих более 10 мкг белка в [c.85]

Колбочки помещают в термостат аппарата Варбурга при 28° С и выравнивают температуру в течение 15 мин. В каждую колбочку добавляют по 0,1 мл густой суспензии митохондрий (6—7 мг белка) и пробы инкубируют в течение 10 мин при перемешивании. По окончании инкубации их помещают в лед и после быстрого охлаждения их содержимое осторожно наслаивают на поверхность холодного 0,88 М раствора сахарозы. Предварительно охлажденную до 0°С сахарозу разливают по 5—7 мл в четыре центрифужных стаканчика от супернасадки центрифуги ЦЛР, стоящие во льду. Пробы центрифугируют при максимальной скорости вращения 10 мин. Верхний слой отсасывают пипеткой и отбрасывают, раствор сахарозы сливают и поверхность осадков осторожно споласкивают 0,3 М сахарозой, охлажденной до 0°С. В стаканчик добавляют по 1,5 мл 1 н. хлорной кислоты, осадки хорошо размешивают стеклянной палочкой и центрифугируют при 5000 в течение 15 мин. Супернатанты собирают в пробирки и экстракцию повторяют вновь в тех же условиях. Объединенные супернатанты нейтрализуют крепким раствором МН40Н. К нейтрализованным растворам добавляют по 2 мл метилового спирта, 2,5 мл 1 М аммиачного буфера, 0,2 мл раствора цианистого калия и 0,4 мл раствора эриохро-ма черного Т в метиловом спирте. Объем доводят до 10 мл аммиачным буфером. Определяют количество Mg + в пробах, измеряя оптическую плотность при 520 нм против раствора, не содержащего Mg +. Калибровочную кривую строят одновременно с обработкой опытных проб, используя в качестве стандарта титрованный раствор Mg l2. Область концентраций, в которой сохраняется линейная зависимость между количеством Mg + и оптической плотностью, — О—0,3 мкмоль Mg2+ на пробу. [c.457]

Для опытов использовали три фракции угля со средним диаметром частиц 0,35 0,53 и 0,71 мм, полученных путем классификации угля на виброфракцион-ной установке. Уголь предварительно отмывался от пыли и в виде суспензии загружался в колонки с целью предотвращения попадания воздуха м жду гранулами угля. Б процессе опыта отбирались пробы сточных вод, цветность которых определялась на лабораторном фотоэлектрическом нефелометре (по калибровочной кривой, выражающей зависимость оптической плотности от концентрации пла-тино-кобальтового раствора нри определенной длине волны) и выражалась в ПКШ. [c.486]

Для построения калибровочной кривой исходят из мета.п-лического цинка, не содержащего индия и серебра. Для контроля 10 г гранулированного цинка (10 меш) в трубке из органического стекла люцайт диаметром 11 мм помещают в парафиновом блоке на расстоянии 5 см источника нейтронов (1 г Ra—Ве). Индий-цинковые стандарты приготовляют добавлением определенного количества хлорида индия к слабокислой (НС1) водной суспензии цинка при периодическом встряхивании. После [c.222]

Навеску 5 г исследуемого объекта (взятая из 100 г тщательно измельченной средней пробы) помещают во флакон (типа пенициллинового),добавляют 0,5 мл 96%-ного этилового спирта и 0,5 мл стандартного спиртового раствора бензола (1,7 мг/л). Смесь тщательно перемешивают, флакон закрывают эластичной резиновой пробкой и ставят на 5 мин в металлический цилиндр, который на /з высоты погружают в кипящую водяную баню. Затем нагретым до 60°С шприцем отбирают 5 мл газовой фазы и вводят в хроматограф. Измеренное на хроматограмме отношение высот пиков определяемого вешества и стандарта позволяет с помощью предварительно построенного калибровочного графика (в условиях, идентичных анализу) рассчитать концентрацию дихлорэтана в исследуемом образце. Условия газохроматографического анализа колонка 240X0,6 см с 15% триэтиленгликоля на сферохроме-1 (0,2—0,3 мм), температура 96 °С, скорость газа-носителя (гелий, водород) 70 мл/мин, детектор — катарометр. Предел обнаружения 0,25 мг в 5 г пробы. Погрешность определения в интервале содержания дихлорэтана от 0,25 до 12,5 мг составляет 5—107о- Аналогичная методика разработана Койима и Кобайаши [59] при определении толуола в тканях в интервале концентраций 0,2—2 мг/л с той лишь разницей, что твердая ткань суспендировалась в воде и в качестве стандарта использовался этилбен-зол, который добавлялся к суспензии в этанольном растворе. [c.135]

При малом содержании взвешенных веществ наблюдается прямая зависимость между интенсивностью рассеянного света и концентрацией этих веществ, что вытекает из уравнения Релея. При большем содержании взвешенных веществ наблюдается отклонение от этой зависимости вследствие того, что в уравнении не учитывается вторичное отражение света в слое суспензии [15]. Однако при наличии калибровочной кривой это отклонение не столь существенно. Для уменьшения вторичного отражения света в концентрированных суспензиях на осветителе тиндалеметра необходимо установить заслонку. Регулируя с ее помощью ширину щели и, следовательно, толщину освещаемого слоя суспензии, изменяют тем самым величину внутреннего отражения. [c.38]

Рис. 15. Калибровочная кривая фото-тиндалемера (а) и сравнение светорассеяния в разных суспензиях (б) 1 — белый свет 2 — красный 3 — синий светофильтр 4 каолиновая суспензия 5 — суспензия гидроокиси алюминия.

Количество водорослевых клеток обычно выражают в миллионах клеток на 1 мл или миллиардах клеток на 1 л. Если окраска суспензии водорослей не меняется, т. е. не происходит изменения зеленого цвета культуры, то подсчет клеток в камере можно заменить измерением плотности суспензии на ФЭК с последующим сравнением оптической плотности и с числом клеток в определенном объеме по заранее составлетГному калибровочному графику. Кроме того, результаты наблюдения выражают в весовых единицах, определяя биомассу водорослей по количеству сухого вещества клеток в литре суспензии водорослей. Для этого определенный объем суспензии водорослевых клеток (25—50 мл) отфильтровывается на предварительно взвешенный мембранный фильтр № 3 или № 4 и доводится до постоянного веса в сушильном шкафу при температуре 105—110°С. Биомассу выражают в миллиграммах сухого вещества в I л. [c.224]

На рис. 5 представлены кривые зависимости тока на зонд от величины потока массы зонд (стальной шарик V2 дюйма диаметром) погружался в суспензию угольной пыли при двух скоростях потока [74]. Этот рисунок показывает влияние потенциала зопда и скорости соударения с ним угольных пылинок. Vf — плавающий потенциал зонда. Сложный вид приведенных на рис. 5 калибровочных кривых при потоках массы, меньших 0,2 г/см , обусловлен большим изменением отношения заряда к массе при малых значениях потока массы. [c.186]

В. соИ выращивали на глюкозо-минеральной питательной среде до стационарной фазы роста с концентрацией (154-30) 10 клеток/дм . Эффективность концентрирования суспензии характеризовали степенью извлечения, мерой которой служило отношение численной концентрации клеток в над-осадочной жидкости после концентрирования (л) к их исходной концентрации (по), измеренных через 20 ч после введения реагента, а также процентом извлечения, определяемым как (Vono—Vin)/Vono, где Уо— начальный объем клеточной суспензии, V — объем раствора над осадком. Концентрацию клеток определяли с помощью ФЭК-56 по калибровочным графикам. [c.156]

Из каолина изготовляется несколько эталонных растворов мутности с известной концентрацией вещества в единице объема. Помещая их в кювету прибора, для каждого из этих растворов замечают показания микроамперм. тра и строят калибровочную кривую сила тока — мутность (мг/л). Затем, от.мечая показания микроампгрметра при заполнении кюветы исследуемыми суспензиями, находят по калибровочной кривой соответствующие им значения мутности каолинового эталона. Преимущество метода состоит в том, что окрашенные вещества не влияют на определяемую величину мутносги. [c.532]

Фототурбидиметрический метод. При фототурбидиметриче-ском методе измеряют оптическую плотность суспензий полимера. Для построения калибровочной кривой помещают в несколько мерных колб емкостью 25 мл по 10 мл ацетона и различные количества стандартной смеси диметилдихлорсилана и метилтрихлорсилана, содержащей не более 15% метилтрихлор-силана. Содержимое колб перемешивают, затем приливают в каждую колбу по 10 мл дистиллированной воды, еще раз тщательно перемешивают и оставляют стоять в течение 30 мин при периодическом взбалтывании. Объем образовавшейся суспензии доводят до метки дистиллированной водой, через 20 мин измеряют оптическую плотность суспензий на фотоколориметре ФЭК-М и строят калибровочную кривую. [c.372]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология