Получение стерильной воды

ПОЛУЧЕНИЕ СТЕРИЛЬНОЙ ВОДЫ [c.175]

Ниже приводятся некоторые рекомендации для правильного обслуживания установок по получению стерильной воды. [c.176]

Окраска жгутиков по методу Леффлера в модификации Пешкова. Бактерии, предназначенные для окраски жгутиков, ежедневно в течение 2—3 дней пересевают в свежую жидкую или на плотную среду, содержащую не более 1,5% агара. Для окраски жгутиков используют клетки 12—16-часовой культуры Клетки осторожно берут петлей и переносят в пробирку со стерильной водой, подогретой до температуры, при которой их выращивали. Прежде чем делать мазок, каплю полученной суспензии просматривают под микроскопом и убеждаются в том, что клетки подвижны и плотность суспензии невелика — 5—10 клеток в поле зрения. [c.107]

Определение общего количества бактерий в 1 г желатина медицинского. 1 мл 10% раствора желатина добавляют к 9 мл стерильной воды или изотонического 0,9% раствора хлорида натрия, тщательно перемешивают и из полученного разведения I 100 высевают 1 и 0,1 мл этого раствора (получается разведение 1 100 и 1 1000) в две чашка Петри, куда наливают 15 мл расплавленного мясо-пептонного агара, остуженного до 46—48°, тщательно перемешивают и после застывания агара выдерживают в термостате (перевернув крышками вниз) при 28—30°. Подсчет колоний производят через двое суток. [c.962]

Неспецифическая токсичность. Проводят испытания, как описано в разделе Неспецифическая токсичность (т. 1, с. 176), используя 0,5 мл раствора, приготовленного следующим образом растворяют 40 мг испытуемого вещества в 2,0 мл соляной кислоты (0,1 моль/л) ТР и разводят количеством стерильной воды Р, достаточным для получения 20 мл. [c.265]

Получение стерильной воды 175 [c.175]

Для приготовления разведений стерильную водопроводную воду разливают по 9 мл в стерильные сухие пробирки. Затем 1 мл исследуемой суспензии стерильной пипеткой переносят в пробирку с 9 мл стерильной воды — это 1-е разведение, IQ-. Полученное разведение тщ,ательно перемешивают новой стерильной пипеткой, вбирая в пипетку и выпуская из нее полученную взвесь. Эту процедуру выполняют 3—5 раз, затем той же пипеткой отбирают 1 мл получе-иной суспензии и переносят во 2-ю пробирку — получают 2-е разведение (10 ). Таким же образом готовят и последующие разведения. Степень разведения зависит от плотности исследуемой популяции микроорганизмов соответственно она тем больше, чем больше плотность популяции. [c.123]

Пшеничные отруби ковшовым элеватором I подают на автоматические весы 2, отсюда они поступают в загрузочный бункер 5, а из него в стерилизатор 5. В этом аппарате отруби увлажняются водой, подаваемой через форсунки из бака для стерильной воды 4. На 1 кг отрубей добавляют 0,2 л воды и 7—8 мл соляной кислоты с относительной плотностью 1,19 или 2,7—3,0 мл серной кислоты плотностью 1,84. Стерилизацию производят острым паром при температуре 103—105°С (давление 0,07 МПа) в течение 1—1,5 ч, периодически включая мешалку. По окончании стерилизации отруби дополнительно увлажняют до содержания влаги 58—60%, охлаждают до 40—42" С и затем производят засев культурой гриба, полученной в отделении чистых культур. [c.155]

Для получения культур клубеньковых бактерий из клубеньков кусочек корня с клубеньком тщательно промывают в стерильной воде, стерилизуют поверхность клубенька в растворе сулемы и спирте, затем вновь промывают в стерильной воде, раздавливают клубенек в капле стерильной воды и суспензию высевают на пластинках из бобового агара или среды Фреда (см. стр. 183). [c.125]

Третья стадия культивирования посевного материала осуществляется в посевных аппаратах объемом от 4 до 5 В них также первоначально вводится питательная среда (около 180 -200 л), она разбавляется в 6,0 - 6,5 раза стерильной водой, и задаются все дрожжи вместе с жидкой фазой, полученные на второй стадии в малом посевном аппарате (около 300 л). [c.12]

Из трех вариантов проведения технологического процесса (периодический, или бессменный сменный и доливной) наилучшим оценивают доливной, когда через 6—7 суток от начала процесса ферментации (концентрация сахара снижается до 3—4%) подливают стерильный раствор мелассы без питательных солей — 30—35% начального объема (не забывать рационально использовать объем кювет при первоначальном заполнении питательной средой с учетом ее испарения). Таким путем добиваются продления цикла ферментации до 12 суток, а с этим на 30—35% возрастает количество перерабатываемой среды для получения целевого продукта. При сменном (одно- и многосменном) методе культуральную жидкость в конце ферментации сливают из-под пленки, пленку снизу промывают стерильной водой и под нее же заливают свежую стерильную питательную среду, содержащую только углевод и лишенную минеральных солей. Ферментацию продолжают еще 4—6 суток. [c.421]

Рис. 55. Схема электрического питания фильтра для получения стерильной апирогенной воды а. — ток без пульсации 6 — выпрямленный ток в — импульсный ток.

Высокая экономичность разделения растворов методом обратного осмоса обусловила его широкое применение для подготовки воды в коммунальном хозяйстве, для питания котлов высокого давления, получения особо чистой воды в различных, отраслях промышленности, приготовления стерильной воды в медицинских и других целях. [c.210]

При получении сплошного роста необходимо делать рассев материала через стерильную воду на чашки со средой Эндо для выделения изолированных колоний, что удлиняет анализ еще на один день чашки помещают крышками вниз на 18—24 ч при 37 0,5°С. Отсутствие роста на секторах среды Эндо, а также при наличии [c.196]

Широко мембранный метод микрофильтрации используют при разделении суспензий, эмульсий и очистки загрязненных механическими примесями промышленных сточных вод, а также при получении стерильных растворов. [c.211]

Растворяют в 100% ном метаноле в концентрации 20 мг/мл, после чего раствор разводят стерильной водой до получения 2 мг/мл в 10% ном метаноле Хранят при 4 °С в темноте и каждую неделю готовят заново. [c.124]

Для получения рабочего раствора разбавьте концентрированный раствор стерильной водой до 2,5%. Храните при [c.319]

Семена до набухания стерилизуют для снятия эпифитной и субэпидермальной микрофлоры одним из стерилизующих агентов, трижды промывают стерильной водой и оставляют для набухания в стерильной чашке Петри. Затем семена стерилизуют второй раз, отмывают 3 раза стерильной водой и с помощью стерильных инструментов вычленяют зародыш или его структуры, которые помещают на питательные среды для роста зародыша или индукции каллусов, кроме того, стерильные семена можно использовать для получения каллуса из семян, помешенных на агаризованную среду, содержащую фитогормоны, а также для получения проростков из семян на агаризованной среде без фитогормонов, с последующим использованием стерильных корней, побегов, листьев в качестве эксплантатов для получения каллусных культур. При помещении кусочков или дисков стебля на питательную среду требуется соблюдать условия физиологической полярности, т. е. помещать их апикальным концом в среду. У фрагментов пластинок листа надсекают в нескольких местах жилки и помешают их нижней стороной пластинки на среду. [c.238]

Стерильные внутренние органы достаточно крупных насекомых (например, бабочки) можно получить, если обработать их поверхность 70 %-ным спиртом в течение 10—15 мин и извлечь ткани в стерильных условиях [28]. Личинки и куколки насекомых, тщательно отмытые водой, стерилизуют 95 %-ным этанолом 10—15 мин. Однако при работе с мелкими насекомыми (например, дрозофила, домашняя муха или комар) сложно извлечь органы при сохранении их стерильности приходится содержать насекомых в стерильных условиях. Методы получения стерильных культур насекомых различны и подробно описаны в ряде работ [19, 29, 30]. [c.242]

Чтобы получить объемы исследуемой воды менее 0,1 мл, предварительно готовят из нее десятикратные разведения в стерилизованной (в автоклаве) литьевой воде. С этой ц ью устанавливают в. штативе ряд пробирок, с 9 жл стерильной воды. Затем из пробы воды, доставленной для исследбвания после-тщательного перемег шив ния отбирают 1 мл и вносят ее в первую (слева в ряду) пробирку с. 9 мл стерильной воды. При, этом нижний, конец пипетки не должен прикасаться к стерильной воде. Перемешивание внесенной воды с жидкостью делается другой сухой стерильной пипеткой. Для этого жидкость набирают из нижней части пробирки и выпускают в ее верхнюю часть не менее трёх раз, поСле чего этой же пипеткой набирают 1 мл приготовленного разведения и переносят в следующую в. ряду пробирку, также не прикасаясь к жидкости. Далее из каждой пробирки после перемешивания, переносят в следующие пробирки с 9 мл стерильной воды по 1 л<л предыдущего разведения до получения необходимого разведения. Эти разведения используются- как для Иосева на общее микробное обсеменение, так и для определения коли-титра испытуемой воды. Схема приготовления разведений приведена на, рис. 19. [c.123]

Для получения глубинной культуры свежую рабочую культуру дрожжей пересевают путем смыва стерильной водой в конические колбы со стерильной средой (коричневый сок+сахароза+соли), культивируют на качалке при 30 °С в течение 2—3 сут и используют для засева малого АЧК. [c.101]

Мембранные фильтры нашли широкое применение для получения стерильной, свободной от каких-либо микроорганизмов воды. Из водопроводной воды можно получить дистиллированную или деионизованную воду, а затем еще более чистую и высококачественную, применяя обратный осмос (см. гл. 13). Хотя для производства стерильной воды можно использовать автоклавирование, в установках, производящих высококачественную воду методами деионизации или обратного осмоса, для стери- [c.175]

Процесс получения белков протекает в четырехфазной системе воздух, вода, углеводороды, посевная культура. При использовании в качестве сырья жидких парафинов процесс ведут под невысоким давлением в стерильных условиях с применением механических мешалок поскольку процесс протекает в жидкой фазе, в сырье не должно быть твердых парафинов. [c.264]

Асептически переносят подходящее количество твердого испытуемого материала (0,3—6 г в зависимости от размера упаковки) в стерильную колбу, содержащую около 200 мл пептона (1 г/л) ИР1, закрывают колбу и вращают для быстрого растворения. Если испытуемый материал растворяется медленно или полученный раствор быстро не фильтруется, объем растворителя можно увеличить, но он е должен превышать 400 мл. Тотчас после растворения материала асептически фильтруют раствор при пониженном давлении через мембранный фильтр, смоченный стерильной водой или пептоном (1 г/л) ИР1. Для ускорения процесса фильтрования раствор можно фильтровать, используя одновременно две фильтровальные установки. Для удаления остаточного количества антибиотика из мембраны ее промывают достаточным количеством пептона (1 г/л) ИР1, к которому, если имеется указание в частной статье (для антибиотиков ряда пенициллина и цефалоспорина), прибавлено достаточное количество пени-циллиназы ИР. [c.174]

В тех случаях, если наличие клубеньковых бактерий в почве не удается выявить ни одним из указанных методов, следует применять метод Емцева, Шильниковой, Агаджанян (1964), являющийся комбинацией методов Вильсона и Быстрого. Сущность метода заключается в следующем на чашки Петри со средой Быстрого с кристаллическим фиолетовым высевается почва в разведениях от I 10 до 1 100 000 с поверхности среды стерильной водой смываются выросшие колонии бактерий полученными суспензиями бактеризуются семена. Метод дает возможность обогащения суспензии клетками клубеньковых бактерий при некотором подавлении кристаллическим фиолетовым сопутствующей микрофлоры. Метод дает значительное увеличение количества клубеньков по сравнению с заражением семян соответствующими необогащенными суспензиями. [c.184]

Перед исследованием масло в банке расплавляют на водяной бане, нагретой до 40—50°С. Из расплавленного масла, после тщательного перемешивания, стерильной пипеткой берут 1 мл и вносят в пробирку с 9 мл стерильной воды, подогретой до 40°С. Из полученного таким образом разведения 10 готовят все последующие (10-2, 10- , 10-, 10- ). Из соответствующих разведений делают высев на элективные среды для учета общего количества бактерий — на агар с гидролизованным молоком или мясо-пептонный агар, для учета протеолити-ческих бактерий на молочный агар, для учета молочнокислых бактерий — на агар с гидролизованным обратом и мелом, для учета количества дрожжей — на сусловый агар со стрептомицином, для учета бродильного титра — на среду Кесслера. [c.212]

Для получения вакцины против желтой лихорадки также заражают куриный эмбрион, в нервных тканях которого накапливается патоген (аттенуированный штамм 17 О). Последующие этапы технологии получения вакцины заключаются в гомогенизации эмбриона в стерильной воде, получают "пюре", которое центрифугируют, осадок представляет отход, а надосадо чную жидкость, содержащую вирус, лиофильно высушивают. [c.485]

С целью получения стерильной апирогенной воды для при готовлення инъекционных растворов была создана фильтроваль пая установка по типу известного в производстве готовых ле карственных средств фильтра ХНИХФИ [55, 138], используе мого сейчас для отделения от воды грубодисперсных примесей Установка снабжена электродами п различными схемами элек троиитания толщина фильтрующего слоя — 3,5 см. [c.213]

Непосредственно перед приготовлением среды в стерильную пробирку вносят 0,5 мл фильтрованного 10%-ного раствора фуксина, к которому прибавляют из пипетки 10%-ный водный раствор сернистокислого натрия (безводного КагЗОз) или 20% -ный раствор На250з-7Н20 кристаллической соли до получения ярко-розового окрашивания. Затем 0,5 г химически чистой лактозы растворяют в 2—3 мл стерильной воды и прогревают на кипящей водяной бане, примерно около 5 мин. На 100 мл предварительно расплавленного мясо-пептонного агара добавляют сначала раствор лактозы и все количество фуксина с сульфитом натрия тщательно перемешивают и разливают в чашки Петри. Готовый фуксинсульфитный агар по застывании в чашке должен иметь кремовый со слабо-красноватым оттенком цвет. Сульфитную среду следует готовить по мере надобности. [c.79]

Каллюс сердцевинной ткани стебля табака. Этот биотест разработан в лаборатории Скуга. Определение проводят следующим образом срезают стебли взрослых растений табака. Для работы выбирают участки стебля с хорошо развитой, но еще не одревесневшей сердцевиной (обычно это 6—8-е междоузлие у растений с 13—15 междоузлиями). Отрезанные кусочки стебля длиной в 6—8 см тщательно промывают с мылом и затем отмывают от мыла водой. После этого их переносят в стерильную комнату и стерилизуют протиранием этанолом (96°) [8]. Иногда проводят дополнительную стерилизацию 0,11 %-ным раствором сулемы. При этом кусочки стебля погружают в раствор сулемы на 15 мин., а затем не менее четырех раз отмывают стерильной водой. После этого со всеми предосторожностями (в чашке Петри или между слоями стерильной бумаги) удаляют участки стебля около прежних срезов и отделяют сердцевину от наружных, корковых тканей. Для этих целей можно использовать стерильное сверло для пробок. Им вырезают столбик сердцевинной ткани из самой центральной части стебля й = Ъ мм). Периферическая часть сердцевины, граничащая с проводящими тканями, при этом не используется. Особое внимание следует обращать на то, чтобы вырезанная сердцевина не содержала элементов флоэмы и камбия их наличие может существенно исказить результаты определения. Полученные цилиндрики сердцевины режут стерильным ланцетом на кусочки высотой 2—3 мм.Эш кусочки переносят со всеми предосторожностями на поверхность агаровой среды в эрленмейеровские колбы на 100 мл. В каждую колбу помещают потри кусочка. Колбы могут быть заменены пробирками. Состав питательной среды А показан ниже. Эту среду готовят следующим образом. Приготовляют в 10 раз более концентрированный раствор макроэлементов, в 100 раз [c.66]

Третья стадия культивирования посевного материала осуществляется в посевных аппаратах 16 объемом от 4 до 5 м . В них также первоначально вводится питательная среда (около 180—200л), она разбавляется в 6,0—6,5 раза стерильной водой, и задаются все дрожжи вместе с жидкой фазой, полученные на второй стадии в малом посевном аппарате (около 300 л). Вся эта масса активно аэрируется в течение 10—12 ч при одновременном доливе питательной среды из расчета 70—75 л/ч и добавлении аммиачной воды для поддержания определенного значения pH. [c.97]

Требуемая степень окисления осадков является основным исходным параметром. В отличие от окисления производственных стоков, требующих максимального снижения ХПК перед сбросом в водоем, окисление осадков городских сточных вод производится с целью получения стерильного незагнивающегО осадка, отвечающего санитарно-гигиеническим требованиям [c.92]

Потенциал размножения различных разновидностей Вас. thuringiensis проверяли при глубинном выращивании путем перемешивания со 100 мл жидкой питательной среды, выдерживания в пробирке полученной смеси в течение 48 часов при 28°С и при промывании 10 мл стерильной воды. Культуры выращивали в течение 48 часов при 28°С. Спустя сутки были взяты пробы для проверки морфологической картины и определения числа клеток на 1 мл культуральной [c.396]

Метод микрофильтрации широко используют при разделении суспензий, эмульсий и очистке загрязненных механическими примесями промышленных сточных вод, а также при получении стерильных растворов. Экономическая эффективность использования процесса микрофильрации должна рассматриваться как часть технического процесса, где микрофильтрация - первое звено разделяющих и концентрирующих устройств. За микрофильрацией обычно следуют процессы ультрафильтраиии и обратный осмос, для которых микрофильтрация является подготовительной операцией. [c.74]

Ферментер, подготовленный для работы, стерилизуется в автоклаве. Электроды, выходящие из строя под действием высокой температуры, стерилизуют химическими реагентами, отмывают стерильной водой и вставляют в стерильный ферментер. Лучшим стерилизующим средством является 2%-ный р-пропионилактон (выдержка — 40 мин). Возможна стерилизация выдерживанием в подкисленном 70%-ном этиловом спирте (2% Н2304) и в 33%-ном пероксиде водорода по 40 мин. После стерилизации производится засев ферментера. При достижении экспоненциальной фазы роста культуры включается поток среды. Отток культуры идет через сливную трубку, которая должна обеспечить вывод среды из нижнего слоя. Слив сверху также возможен, но иногда осложняется вспениванием культуры и концентрированием клеток в пене. Стационарное состояние при данной скорости потока считается установившимся, если плотность популяции не изменяется в течение не менее 5—7 генераций (g). Культура сливается в охлаждаемые емкости, например сосуды Дьюара, чтобы приостановить всякие изменения в клетках, предназначенных для анализа. Если нет нужды получать большие количества клеток и культуральной жидкости для анализа, то пробы лучше отбирать непосредственно из ферментера. Обрастание стенок ферментера и мешалки микроорганизмами является большой помехой для длительных исследований. Поэтому до сих пор имеется мало работ по выращиванию в хемостате грибов и актиномицетов, особенно склонных к обрастаниям. Во избел<ание возникновения и отбора спонтанных мутантов ие рекомендуется вести хемостатную культуру более четырех недель. Засев всегда необходимо делать из специально выращенной культуры (не из ферментера). Для получения хемостатной кривой обычно начйна- [c.125]

Для получения культивируемых каллусных клеток фрагменты тканей разных органов высших растений (экспланты) помещают на искусственную питательную среду in vitro в пробирки, колбы, чашки Петри. Процесс получения первичного каллуса и поддержание пересадочной культуры требует строго стерильных условий. Для этого с помощью растворов, содержащих активный хлор или ртуть (гипохлориты, сулема, диацид), к которым для лучшего смачивания добавлены детергенты, стерилизуют экспланты, тщательно отмывая их затем от употребляемого раствора стерильной водой. Стерилизуют в автоклаве или фильтрованием через ультрафильтры питательную среду. В автоклаве при давлении 19,6- 10 Па (2 атм) в течение 1 ч или сухим паром в шкафах при 160°С в течение 1,5 ч стерилизуют посуду, инструменты, материалы, необходимые для работы. Манипуляции с культурами проводят в боксах микробиологического типа, облучаемых перед работой ультрафиолетом, или в ламинар-боксах, где асептика достигается постоянной подачей стерильного воздуха в рабочий объем (Р. Г. Бутенко, 1964). [c.14]

Трансформация вещества S (II стадия) также начинается со стерилизации ферментера и воздушного фильтра водным раствором формалина. Особое внимание уделяется размолу стероида на микромельнице и получению суспензии его в стерильной воде с содержанием стероида I г/л. Для предотвращения развития посторонней микрофлоры используется добавка антибиотика. Перемешивание и аэрация осуществляются, как и на предыдущей стадии, так же используются и пеногасители. [c.102]

Кроме воды, в фармацевтической практике используются неводные растворители (этанол, пропиленгликоль, полиэтиленоксид-400, бутиленгликоль, глицерин, метиловый или этиловый эфиры олеиновой кислоты, бензилбензоат, метилацетамид, диметилацетамид и растительные масла). Они могут использоваться индивидуально, а также в комбинации. Комбинированные растворители имеют большую растворяющую способность лекарственных веществ, чем каждый растворитель отдельно (явление сорастворимости). Последние широко применяются для получения стерильных растворов с труднорастворимыми веществами. Неводные растворители, которые используются для приготовления стерильных растворов должны отвечать следующим требованиям быть нетоксичными, химически совместимыми с компонентами лекарственной системы, стойкими при термической стерилизации, иметь низкую вязкость, не вызывать местного раздражающего действия. [c.155]

Перед исследованием пробу масла расплавляют в банке на водяной бане, нагретой до 40...50 °С. Из расплавленного масла после тщательного перемешивания стерильной пипеткой берут 1 мл и вносят в пробирку с 9 мл стерильной воды, подогретой до 40 °С. Из полученного таким образом разведения 10 готовят все последующие (Ю Ю 10" 10 ). Из соответствующих разведений делают порев на [c.162]

Крэйторн и др. [54] описывают применение пробоотборника фирмы Миллипор для взятия бактериологической пробы с влажных поверхностей. В этом пробоотборнике мембрана с размером пор 0,45 мм была заменена на мембрану с порами 5 мкм. После приложения сухого пробоотборника к влажной поверхности в течение 5 секунд поверхность его мембраны смачивают 1 мл стерильной воды для увлажнения культуральной среды, и пробоотборник затем помещают для инкубации в футляр. Сравнение результатов подсчета бактерий этим пробоотборником с результатами, полученными на чашках методом Родака, который обычно используется для оценки бактериального загрязнения поверхностей, показало, что пробоотборник с тампоном обнаруживает значительно больше бактерий. Его можно также применять для взятия проб с поверхностей живых тканей при клинических исследованиях. [c.259]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология