Фосфолипиды кислые

Разделение фосфолипидов на классы обычно осуществляют с помощью адсорбционной хроматографии на колонках с кремневой кислотой, силикагелем или тонкослойной хроматографией на силикагеле. В ряде случаев проводят предварительное разделение кислых и нейтральных фосфолипидов на колонках с модифицированными целлюлозами (ДЭАЭ- и ТЭАЭ-целлюлозы) [7, р. 272]. Для вымывания отдельных классов фосфолипидов при хроматографировании на колонке с кремневой кислотой преимущественно применяют смесь хлороформ—метанол с возрастающим количеством метилового спирта (4 1, 3 2, 1 4). При этом элюируются фосфолипиды в следующей последовательности фосфатидилэтаноламины, фосфоинозитиды, фосфатидилхолины, сфингомиелины. [c.189]

Используется наиболее часто. Применяется для разделения нейтральных и кислых белков, пептидов и аминокислот, гормонов, ферментов, РНК, полисахаридов, полярных липидов (особенно фосфолипидов), гемоглобинов и др. Оптимальная область pH 8—9, [c.155]

Фосфолипиды проявляют химические свойства, типичные для диэфиров фосфорной кислоты, особенно в условиях гидролитического расщепления [115]. При pH 7 фосфолипиды устойчивы, лишь в незначительной степени происходит гидролиз сложноэфирных связей, однако в кислой и щелочной средах они достаточно быстро гидролизуются. [c.269]

В последние годы разработаны многочисленные методы фракционирования смесей липидов. Особенно пригодными оказались фракционная кристаллизация при низких температурах и фракционирование с помощью соединений включения мочевины, например для разделения насыщенных и ненасыщенных жирных кислот и их эфиров. Для выделения метиловых эфиров жирных кислот с одинаковой длиной цепи была использована вакуумная дистилляция, а молекулярную дистилляцию применяли для разделения моно-, ди- и триглицеридов. Противоточное распределение между двумя жидкими растворителями использовалось для фракционирования жирных кислот в соответствии с длиной цепи или в соответствии со степенью нена-сыщенности, а также для разделения моно-, ди- и триглицеридов и фосфолипидов. Разделение нейтральных и кислых липидов осуществляли диализом через каучуковые мембраны. [c.144]

От обычных белков, состоящих исключительно из протеиногенных аминокислот, следует отличать сложные белки, называемые также конъюгированными белками или протеидами. Это вещества, содержащие помимо белковой части небелковый органический или неорганический компонент, необходимый для функционирования, могущий быть связанным с полипептидной цепью ковалентно, гетерополярно или координационно и вместе с аминокислотами присутствующий в гидролизате. Важнейшие представители сложных белков гликопроТеины (простетическая группа — нейтральные сахара (галактоза, манноза, фукоза), аминосахара (N-aцeтилглюкoзa-мин, N-aцeтилгaлaктoэaмин) или кислые производные моносахаридов (уро-новые или сиаловые кислоты)), липопротеины, содержащие триглицериды, фосфолипиды и холестерин, металлопротеины с ионом металла, связанным ионной или координационной связью, фосфопротеины, связанные эфирной связью через остаток серина или треонина с фосфорной кислотой, нуклеопротеины, ассоциирующиеся с нуклеиновыми кислотами в рибосомах или вирусах, а также хромопротеины, содержащие в качестве просте-тической группы окрашенный компонент. Обзор структур важнейших белков см. в разд. 3.8. [c.345]

У бактериальных клеток имеется электрический заряд, который всегда имеет отрицательный знак. Если в сосуд с бактериями, находящимися во взвешенном состоянии в нейтральной водной среде, погрузить два электрода и пропустить ток, то бактерии передвигаются к аноду. Это явление называется электрофорезом и свидетельствует о наличии у бактерий отрицательного электрокинетического потенциала. Отрицательный заряд бактерий обусловлен большим количеством кислых фосфолипидов и небольшого количества основных белков в мембранах бактериальной клетки. У разных бактерий потенциал неодинаков, он зависит от электрохимических свойств веществ, входящих в поверхностный слой бактериальной клетки. Ионогенный распад поверхностно расположенных веществ увеличивает электрический потенциал, что, например, происходит под влиянием антибиотиков либо лизоцима. Величина электрокинетического потенциала зависит от характера среды, окружающей клетку (концентрация электролитов и pH). Поэтому для электрохимической характеристики поверхности бактерий более типична изоэлектрическая точка, чем электрокинетический потенциал. [c.87]

Наиб, изучены фосфолипид-обменивающие белки. Их мол. м. от М до 32 тыс., р/ 4,7-5,8 (кислые Л. б.) и 8,4- [c.598]

Следует отметить, что такое латеральное разделение ли[[и-дов возможно и за пределами температуры перехода, когда с помощью двухвалентных катионов выявляются нейтральные (ФХ) и кислые (ФГ, ФИ, ДС) фосфолипиды. [c.310]

Таким образом, благодаря конформационным особенностям, молекула полимиксина состоит как бы из двух различных по своей природе зон — полярной, несущей положительный заряд +5, и гидрофобной, образованной остатками гидрофобных аминокислот и жирной кислоты. Такая структура облегчает их проникновение через клеточную стенку бактерий и способствует эффективному взаимодействию с кислыми фосфатными группами фосфолипидов, входящих в состав системы мембран грамотрицательных бактерий. [c.135]

Лецитины яйца были достаточно хорошо отделены от нейтральных липидов. Киселев [86] фракционировал липиды, содержащиеся в тканях мозга, на сефадексе LH-20. В смеси хлороформ—метанол (2 1) сефадекс вел себя как слабоосновный анионит, так что фосфолипиды разделялись в соответствии с их основными свойствами. Однако в смеси хлороформ—метанол— вода (65 35 8) сефадекс выступает в роли молекулярного сита, и поэтому вещества разделялись согласно их молекулярным массам. Использование метилированного сефадекса рассмотрено в обзоре [87] сефадекс G-25 был метилирован так, чтобы содержать 40% метоксигрупп липиды элюировали смесью хлороформ—метанол—вода (85 85 30). При этих условиях фосфолипиды элюировались в первой фракции наряду с липопептидами и глиголипидами. DEAE-целлюлоза оказалась полезна для фракционирования кислых липидов, содержащихся в Es heri hia соИ [88]. Фосфолипиды успешно были выведены также с помощью гель-хроматографии на сефадексе LH-20 [77, 89]. [c.208]

Установлено [203], что диэтиламиноэтил-целлюлоза (условное обозначение ДЕАЕ) может быть с успехом использована для разделения фосфолипидов. Применение этой целлюлозы позволило количественно и в чистой форме выделить лизолецитин, фосфатидилэтаноламин, лизо-фосфатидилэтаноламин и некоторые еще не идентифицированные составные части элюированием хлороформом, метанолом и смесью этих растворителей. Кислые фосфолипиды были элюированы смесью хлороформа, метанола и водного аммиака. При анализе смеси соевых фосфолипидов лецитин был элюирован хлороформ — метанолом 7 1, а фосфатидилэтаноламин — хлороформ — метанолом 3 2. [c.81]

Молекулярный механизм действия Г. в гипофизе включает связывание с мембранными рецепторами клеток, что приводит к ускорению обмена кислых фосфолипидов (напр,, фосфатидилинозитолов, фосфатидовых к-т) и увеличению в клетках концентрации ионов Са . Эти процессы способствуют освобождению гонадотропинов. Синтез последних при длительном воздействии Г. на гипофиз происходит при участии фермента аденилатциклазы. [c.594]

Предложено несколько гипотез структуры клейковины. По одной из них [87] гидратированная клейковина имеет структуру листа липопротеидного типа, организованную вокруг бимолекулярного слоя из фосфолипидов. Боковые неполярные цепи полипептидов составляют гидрофобные ядра. Полярные группы, ориентированные наружу, образуют с фосфолипидами солевые связи между основными группами белков и кислыми группами липидов. Ориентированный бимолекулярный липидный слой создает плоскость скольжения между двумя слоями листка, обеспечивая тем самым вязкую текучесть. [c.219]

Таким образом, представленные данные о вторичных мессенджерах свидетельствуют о том, что каждой из этих систем посредников гормонального эффекта соответствует определенный класс протеинкиназ, хотя нельзя исключить возможности существования тесной связи между этими системами. Активность протеинкиназ типа А регулируется цАМФ, протеинкиназы G-цГМФ Са -кальмодулинзависимые протеинкиназы находятся под контролем внутриклеточной [Са ], а протеинкиназа типа С регулируется диацилглицеролом в синергизме со свободным Са и кислыми фосфолипидами. Повышение уровня какого-либо вторичного мессенджера приводит к активации соответствующего класса протеинкиназ и последующему фосфорилированию их белковых субстратов. В результате меняется не только активность, но и регуляторные и каталитические свойства многих ферментных систем клетки ионных каналов, внутриклеточных структурных элементов и генетического аппарата. [c.297]

Раств-сть н.р. HjO м.р. EtOH, лед. укс. кисл. р. эф., H I3, I4, петр. эф. Обычно более раств. в орг. раств-лях, если остатки (R, и Rj) содержат ненас. связи. Диглицерид, содержащийся в тканях или образующийся из фосфолипидов,- обычно [c.145]

Сложные липиды. Наиболее важная и распространенна группа сложных липидов — фосфолипиды. Молекула их построе на из остатков спиртов, высокомолекулярных жирных кисло фосфорной кислоты, азотистых оснований (чаще всего холи [НО—СНг—СНг—М(СНз)з] + ОН- и этаноламина НО—СН21 —СН2—МНг, аминокислот и некоторых других соединений. [c.28]

ЗН-Диазирины используют для генерирования карбенов. Они более стабильны, чем диазоалканы, особенно в кислой среде, но могут разрушаться при облучении с образованием карбенов. Фоторазложение галогенозамещенных диазиринов служит хорошим методом генерирования галогенокарбенов в нейтральной среде. Молекула диазирина может быть включена в состав фосфолипида для определения места взаимодействия с белковыми мембранами при облучении комплекса фосфолипид - белок генерируется карбен и происходит образование мостиковых межмолекуляриых связей, обусловленных образованием карбеном ковалентных связей [32]. [c.418]

Применение. В гистохимии в смеси с формалином для фиксации фосфолипидов по Merojiy Бэкера [1], для стабилизации кислой фосфатазы [2, 3] и для выявления норадреналина методом флуоресценции [4, 5]. В гистохимии ферментов для выявления неспецифических фосфомоноэстераз по Гомори Така-матчу [6—9] и аденозинтрифосфатазы по методу Падикула —Германа [10], [c.174]

Полная рафинация масел складывается из следующих процессов удаления механических примесей гидратации — удаления гидрофильных примесей (фосфолипидов, б елков, углеводов) удаления восков нейтрализации—удаления свободных жирных кислот и веществ кислой природы промывки масла — удаления из него оставшихся после нейтрализации частиц мыла высушивания — удаления влаги отбеливания — удаления растворенных в масле красящих веществ дезодорации — удаления из масла ароматических и вкусовых веществ. [c.239]

О количественном содержании фосфолипидов судили по молярному содержанию фосфора. Содержание фосфора определяли по методу Блэка и Хеммонда (Blak, Hammond, 1965) в модификации А. В. Жукова и А. Г. Верещагина (1970), которую мы полностью приводим ниже. Применяли колориметрический метод определения фосфора, используя его способность давать фос-форно-молибденовый комплекс, который при восстановлении по методу Блэка и Хеммонда хлоридом олова (Sn+ ) в кислой среде образует окрашивание гетерополикислот молибдена (Мо+ ). [c.37]

Выше тем.пературы фазового перехода бислои из нейтральных и кислых фосфолипидов, койтактирующие с 0,1 Ж водными растворами солей одновалентных катионов, весьма устойчивы и обладают ограниченной проницаемостью для ионов. Область максимальной устойчивости соответствует такому составу омывающего мембрану раство1ра, когда один заряд приходится на [c.268]

Было показано, что фосфоцеллюлоза в натриевой, калиевой или аммониевой форме может быть использована для разделения фосфолипидов. В противоположность ДЕАЕ фосфоцеллюлозные колонки нуждаются в оводнении для связывания фосфолипидов, однако с увеличением объема воды требуется больше метанола в его смеси с хлороформом для элюирования фосфолипидов. Насыщение целлюлозы водой можно достичь путем промывания колонки перед хроматографированием 10 колонными объемами метанола, содержащего необходимое количество воды. При такой обработке фосфатидные фракции элюируются из колонки минимальным объемом растворителя, причем нейтральными растворителями элюируются как амфионные, так и кислые фосфолипиды. [c.81]

До недавнего времени считалось, что фосфолипиды крови состоят главным образом из лецитинов и кефалинов. Недавно, однако, было установлено, что в состав фосфолипидов крови входит также сфингомиелин [14, 15]. Характер связи фосфолипидов с белками также до сих пор еще окончательно не установлен. Кефалины, в состав которых входит фосфорная кислота и остатки серина, обладают кислыми свойствами и способны образовывать нерастворимые соединения с щелочными протаминами и яичным альбумином [16]. [c.229]

Поскольку в молекуле фосфатидилсерииов содержится две кислотные группы и лишь одна основная, то она проявляет кислые свойства. Содержание фосфатидилсеринов в тканях животных незначительно и составляет в среднем около 5% общего содержания фосфолипидов. [c.251]

Минорные кислые фосфолипиды можно анализировать также методом ТСХ в менее полярных элюирующих системах, содержащих меньшие количества метанола и воды, например хлороформ — метанол —вода (40 10 1) [262, 263]. Система хлороформ — метанол — вода (65 25 4) и сходные с ней [212,. 253] подходят для разделения смеси нейтральных липидов с наиболее часто встречающимися фосфолипидами всех классов. В сочетании с пластинками силикагеля, приготовленными с силикатом магния (вместо сульфата кальция) в качестве связующего вещества, эта элюирующая система очень эффективна и широко используется при одномерной ТСХ в количественном анализе [262—264] и в препаративном варианте ТСХ [265, 266]. Она также применяется для ТСХ плазмалогеновых фосфолипидов [267, 268]. Эти фосфолипиды нестабильны в кислых растворителях и могут разлагаться при элюировании и упаривании. Методом ТСХ с использованием этой системы для элюирования можно разделить лизофосфатидилхолин, сфингомиелин, фосфатидилхолин с фосфатидилинозитом, фосфатидилэтаноламин с фосфатидилсерином, фосфатидилглицерин с кардиолипи-ном и фосфатидной кислотой, нейтральные липиды. Следует отметить, что в такой системе тиоэфирные аналоги фосфатидилхолина и фосфатидилэтаноламина мигрируют намного бы- [c.152]

Способность к соле- и комплексообразованию часто позволяет различать типы фосфолипидов. Например, фосфатидилхолины легко образуют комплексы с СёСЬ, а кислые фосфолипиды дают свинцовые соли. [c.270]

Значение поверхностных липидов для биологических свойств, штаммов Ps. aeruginosa. (Найдено, что кислые и нейтральные липиды и фосфолипиды содержат в основном линолевую, олеиновую и пальмитиновую к-ты.) [c.183]

В наиболее популярном методе, предложенном Фолчем и др. 19], экстракцию проводят смесью хлороформ — метанол (2 1) из расчета двадцать частей экстрагирующей смеси на одну часть ткани. Этот метод позволяет получить достаточно высокий выход нейтральных липидов, диацилглицерофосфолипидов и сфинголипидов. Лизофосфолипиды переходят в раствор лишь частично, а более полярные кислые фосфолипиды могут теряться при промывках экстракта растворами солей и водой [20]. Однако путем проведения повторных экстракций и ограничения промывок выход лизолипидов можно повысить до количественного [21, 22]. [c.131]

Смотреть страницы где упоминается термин Фосфолипиды кислые: [c.19] [c.723] [c.298] [c.68] [c.136] [c.142] [c.234] [c.554] [c.723] [c.199] [c.333] [c.289] [c.53] [c.134] [c.479] [c.295] [c.131] [c.136] [c.148] [c.149] [c.151]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология