Монофенолы

Растворимость фенольных антиоксидантов в карбоцепных каучуках, как правило, выше растворимости неозона Д. Практически неограниченной растворимостью в этих каучуках обладает алкофен БП, по этому показателю он превосходит практически все антиоксиданты, рекомендованные для каучуков. Бисалкофены имеют растворимость более низкую, чем монофенолы, однако эта величина при реальных дозировках обеспечивает их хорошую совместимость с каучуком. Низкую растворимость в каучуках имеют [c.643]

Замещенные фенолы монофенолы [1, 4, 11, 44, 63, 139, 141] [c.175]

Наряду с взаимным усилением эффективности антиоксидантов в отдельных системах наблюдается явление, обратное синергетическому [23, 24, 28]. Так, взаимное ослабление действия химически родственных ингибиторов (монофенола и бифенола) при совместном введении в изотактический полипропилен объясняют ускорением инициирования в результате реакции гидроперекиси с ал кил монофенолом [23, 24]. [c.181]

На адсорбционное сродство оказывают сильное влияние свободные фенольные группы. При применении бензола монофенолы перемещаются по пластинке, но дифенолы уже задерживаются на точке старта. [c.200]

Как вытекает из уравнений (14) и (15), антиоксидант монофенол, способный обрывать цепи, в то же время увеличивает вероятность разветвления при окислении полипропилена. [c.419]

Для практических целей стабилизации каучуков многие синергические системы на основе монофенолов и фенил-р-нафтил-амина мало приемлемы из-за высокой летучести большинства монофенолов. В практическом отношении наиболее интересны синергические системы на основе пространственно-затрудненных бисфенолов и неозона Д (например, на основе МБ-1 и ТБ-3). [c.627]

Период индукции у большинства стабилизаторов возрастает с увеличением концентрации, но у дибуга и дитага он не увеличивается. Зависимость периода индукции от концентрации описывается прямой. Это указывает на то, что монофенолы относятся к типу антиоксидантов, не имеющих критической концентрции [44]. Кроме того, имеет значение повышенная летучесть многих антиоксидантов. [c.130]

Пленки, стабилизированные дитагом и дибугом, разрушились через 600 ч старения, что еще раз подтвердило, что монофенолы являются слабыми антиоксидантами [44]. [c.134]

Благодаря кислым свойствам фенола его назкали карболовой ki ло-той. По числу гидроксильны.х групп у ароматического f pa разл чают одно-, дву-, трехатомные и другие фс олы. Почти все фенолы, за исключением мета-фенолов, окрашиваются раствором хлорного железа (резорцин окрашивается в фиолетовый цвет) монофенолы окрашиваются при этом в фиолетовый или синий цвета, ортофенапы — в зеленый. [c.128]

Полифенолоксидаза действует на полифенолы, о-ди-фенол 1.1, монофенолы, дубильные нсщеетна. Фермент катализирует также окисление аминокислоты тирозина с образованием тсмноокрашенных продуктов меланинов. [c.129]

Этот метод основан на взаимодействии воднощелочного раствора бисфенолята натрия и раствора фосгена в инертном органическом растворителе при комнатной температуре и перемешивании. Вначале образуются низковязкие растворы низкомолекулярных поликарбонатов с концевыми группами хлоругольной кислоты. При дальнейшем перемешивании в присутствии катализаторов (третичных амииов или солей четвертичного аммония) молекулярный вес полимера возрастает. Этим методом можно получить поликарбонаты со средневесовым молекулярным весом до 200 000. Продукт с более низким молекулярным весом может быть получен при добавлении в реакционную смесь обрывателей цепи, например монофенолов. [c.14]

Изменение цвета овощей и фруктов начинается с окисления монофенолов и о-дифенолов до о-хинонов. Катализатором процесса служат ферменты полифенолоксидазы. Они кодируются ядерной ДНК, имеют мол. массу примерно 59 ООО и локализуются в мембранах хлоропластов и митохондрий. [c.410]

Помимо указанного первичные, вторичные и третичные ароматические амины, диамины, а также нафтолы легко роданируются при действии дихлормочевины и роданистого калия или аммония Вместо дихлормочевины с той же целью можно пользоваться и хлорацетамидом 282. Монофенолы, как и дифенолы, при помощи дихлормочевины it роданистого калия роданировать не удается. [c.84]

Карбоксилирование Фенолы взаимодействуют даже со слабоэлектрофильной двуокисью углерода с образованием соответствующих фенолкарбоновых кислот. Правда, для этого в случае монофенолов требуется повышенная температура, а для получения хороших выходов — повышенное давление. [c.321]

Наконец, можно применять третий метод, лишенный недостатков вышеуказанных методов и сохраняющий экспресоность анализа. В этом методе используют широкий испаритель с индивидуальным терморегулированием, дозатор твердых проб и программирование температуры колонок (хроматографы Цвет , серия 100), позволяющее растянуть время ввода пробы без существенного расширения пиков до десятков минут. Дозатор твердых проб позволяет вводить небольшой образец полимера (несколько миллиграмм) в нагретый до постоянной температуры испаритель и после улетучивания из полимера антиоксиданта удалять его. Серийный хроматограф позволяет провести анализ антиоксиданта из малой навески полимера, в том числе нерастворимого (сшитого), не загрязняя испаритель хроматографа при малом времени определения (40—60 мин). Недостатком метода является ограничение в термостойкости некоторых полимеров, однако показана возможность определения таким способом в каучуках и резинах не только летучих монофенолов (ионол и др.), но и высококипящих неозона Д и бисфенолов (продукт НГ-2246). [c.73]

Антиокислительная активность бисфенолов и олигомеров превосходит эффективность монофенолов, так как они могут реагировать сразу с несколькими радикалами. Благодаря полярному характеру фенолов, их введение в шинные резиновые смеси приводит к значительному снижению поверхностного натяжения на границе раздела каучук—наполнитель [486]. [c.319]

Монофенолы или многоатомные фенолы Полифенилены Zn lj 200—400 С, несколько часов [363] [c.633]

В настоящее время исследовано большое число феноксильных радикалов как монофенолов, замещенных в различных положениях фенильного кольца разными заместителями, так и некоторых полифенолов. [c.55]

Эти опыты привели к постановке специальных исследований влияния добавки монофенола на критическую концентрацию сильного актиоксиданта 22-46. В самом деле, если механизм ингибированного окисления описывается реакциями (I—IV) и реакцией, учитывающей обрыв цепей вторым антиоксидантом [c.417]

Были поставлены опыты [26] по исследованию влияния примеси монофенола 2,6-диметилгексил-4-метилфенола на критическую концентрацию антиоксиданта 22-46. Результаты опытов, приведенные на рис. 9, показывают, что введение в полипропилен монофенола приводит к значительному возрастанию критической концентрации антиоксиданта 22-46. [c.419]

К такому же выводу приводят ош>1ты по измерению падения молекулярного веса при ингибированном окислении полипропилена в присутствии различных монофенолов и бифенола с далеко расположенными гидроксилами — 4,4-бмс-2,6-дитретбутилфенола. [c.421]

Результаты опытов по окислению полипропилена, стабилизированного смесями 2,6-диизоборнил-4-метилфенола и дилаурил-тиодипронионата [34], изображены на рис. 14. При значениях суммарной концентрации [А] 0,01 молъ кг реакция протекает почти стационарно, а при больших значениях [А] наблюдается резкое увеличение периода индукции в сравнительно узких границах концентрации антиоксиданта монофенола. [c.424]

Наиболее вероятную гипотезу выдвинул Ю. А. Шляпников, который предполагает, что в результате реакции (IV) гидроперекиси с полимером образуются радикалы ВО и Bi, которые легко рекомбинируют с образованием эфира ВОВ (клеточный эффект Франка-Рабиновича). Присутствующий в клетке монофенол реагирует с одним из радикалов, причем образуется спирт ВОН или углеводород BiH и неактивный феноксильный радикал. Второй активный радикал может начать новую цепь, т. е. вызвать вырожденное разветвление. Многие опыты хорошо объясняются с этой точки зрения. [c.428]

Для определения влияния совместимости антиоксвдантов с полимером на величину синергического йекта монофенолы и сульфиды (эфиры тиодипропиоыовой кислоты), представленные в работе fзJ, была проверены при совместном применении в полипропилене (температура 200°С, давление кислорода 300 мм р т.ст.). [c.83]

Скорость расходования слабых антиоксидантов в некоторых случаях остается практически постоянной. К слабым антиоксидантам относятся алкилзамещенные монофенолы 2,4-ди-т/ ет-бутил-4-метилфенол 2,4,6-три-т/7е/п-бутнлфенол 2,6-ди-т/ ет-бутил-4-фенилфенол и др. [c.284]

Катехолоксидаза катализирует окисление не только о-ди-фенолов, но и монофенолов, например тирозина (см. работу № 61). Катехолоксидаза находится в отдельных тканях и органах животных и щироко распространена в растениях и грибах. [c.116]

Подобным же путем под действием тирозиназы (монофенол-оксидазы) тирозин превращается через окрашенные в красный двет промежуточные продукты в черный азотсодержащий пигмент-меланин. При этом тирозин вначале окисляется в диокси-фенилаланин ( дофа ), который затем дегидрируется в хинон и далее через ряд промежуточных продуктов конденсируется в меланин [c.62]

Монофенолы, спирты, углеводы, инозит и хинная кислота (содержащая три рядом расположенные оксигруппы в алицикли-ческом шестичленном кольце) не дают окраски с железотартратом и не препятствуют анализу. Лимонная кислота ослабляет окраску лишь при ее содержании свыше 1000 мкг на пробу. Другие органические кислоты (если они не вызывают сдвига pH, когда приходится увеличивать количество буферного раствора), не препятствуют определениям. Цистеин и аскорбиновая кислота в больших концентрациях дают с железотартратным реактивом слабую розовую окраску, которая в условиях определения (красный светофильтр) не влияет на результаты анализа. [c.66]

Высокие интенсивности света активируют также накопление флавоноида в листьях салата, при этом наблюдается подавление роста самих листьев (рис. 23, 26, б). С помощью пробы на рост отрезков колеоптилей пшеницы были обнаружены свободные природные ингибиторы роста в листьях гороха и салата, которые также накапливались в связи с возрастанием интенсивности освещения. Свет высоких интенсивностей подавляет образование ауксинов и вызывает накопление природных ингибиторов, а также образование избыточных количеств флавоноидов типа кверцетин-гликозил-кумарата в горохе и флавонол-гликозида в салате. Значительное накопление фенолов в период приостановки роста может явиться результатом образования их свободного пула, который не тратится на лигнификацию клеточных стенок растущего побега. Варга (Varga, 1970) считает, что накопление монофенолов под действием внешнего фактора, такого, как анаэробиоз, приводит к активации разрушения ИУК и к торможению роста. Может быть, аналогичная картина происходит при действии света. [c.116]

Другие окоигеназы разрывают ароматические ядра рядом с ор-то-оксигруппами или между гидроксильной и карбоксильной группами. Монофенолы сначала гидроксилируются в орто-положе-нйи и уже затем расщепляются по типу о-дифенолов. В результате этих реакций микробы способны использовать фенольные соедине- [c.119]

Огромное число исследований посвящено влиянию фенольных соединений на рост растений. Проблема эта достаточно сложна, и полученные данные пока не допускают однозначного толкования. С одной стороны, многие авторы [84—89] наблюдали стимулирующее рост действие фенольных соединений с другой стороны, не меньшее число авторов описали ингибирующие рост свойства полифенолов [90]. Эти различия чащ всего объясняют тем, что фенольные соединения действуют на процессы роста не непосредственно, а через систему индолилуксусная кислота — оксидаза индолилуксусной кислоты. Монофенолы и л -полифенолы обычно выступают в роли активаторов оксидазы индолилуксусной кислоты (и, следовательно, ингибируют роет), а о-дифенолы подавляют активность этого фермента (и, следовательно, стимулируют рост) [91, 92]. Описано также синергетическое действие фенольных соединений и ауксинов [84], причем в некоторых случаях в отсутствие индолилуксусной кислоты ростовая активность таких полифенолов, как хлорогеновая кислота и цинарин, не проявлялась [93]. Имеются данные о том, что пространственная конфигурация коричных кислот определяющий фактор в проявлении ростовой активности ис-форма коричной кислоты и ее хлор-производнЫх обладает ауксиновой активностью, а гракс-форма действует как антйауксин [94, 95]. Некоторые фенольные соединения (лейкоантоцианы) стимулируют деление клеток при культуре растительных тканей [96], а нарингешш [97], фенолкарбоновые кислоты и ку-марины [98], а также лишайниковые кислоты [99] подавляют прорастание семян. [c.125]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология