Кукуруза, определение воды

Для определения воды в семенах, зернах злаков и в траве Харт и сотр. [104] проводили экстракцию метанолом. (Эти авторы ранее разработали методику измельчения и экстракции в изолированном объеме для анализа с помощью реактива Фишера.) После оседания суспендированного материала из метанольной вытяжки отбирали прозрачную пробу в кювету длиной 1 см и записывали спектр поглощения в области 1,8—2,0 мкм относительно метанола. Поглощение при 1,93 мкм служит количественной мерой содержания воды. Необходима поправка на фоновое поглощение, его принимают равным поглощению в области около 1,8 мкм, где отсутствует поглощение воды. Содержание воды определяют по градуировочному графику, построенному по поглощению растворов метанола с известным содержанием воды. Стандартное отклонение составляло 0,24% для 65 анализов влажности зерна (в том числе пшеницы, кукурузы, овса, ячменя, сорго и риса), семян масличных культур (льняное семя, соя, арахис), пищевых бобов, трав (люцерна, овсяница, клевер) и семян овощных культур (огурцы, редис, лук, свекла и салат). Содержание воды колебалось от 3,4 до 18,5%, и результаты анализа удовлетворительно сходились с данными титрования реактивом Фишера. По-видимому, в анализируемых материалах не содержалось растворимых в метаноле веществ, наличие которых препятствовало бы проведению измерений при 1,93 мкм. Главная погрешность анализа, вероятно, обусловлена различием температур в рабочей и сравнительной кюветах и наличием суспендированных частиц в метанольном экстракте. Различие температуры в 13 °С приводит к ошибке определения, равной примерно 5% (отн.). Ниже приведены данные, иллюстрирующие ошибки при определении воды в экстракте соевых [c.444]

Относительно содержания в организмах и биологической роли золота пока ничего определенного не известно. Отмечалось наличие его в зернах, листьях и стеблях кукурузы. Воды океана содержат переменные количества золота от (ничтожных следов до 65 мг/т). [c.418]

Крахмал получают из некоторых корнеплодов и семян, например из картофеля, кукурузы, риса ИТ. п., при размачивании и растирании их в воде. Отмыванием освобождаются крахмальные зерна и отделяются от целлюлозы, белков, масел и других примесей. Вода удаляется фильтрацией, чаще всего на вращающихся фильтрах, а крахмал высушивается на противнях при определенных температуре и влажности. [c.316]

Можно сказать им создано целое направление прикладной коллоидной химии в пищевой технологии с участием большого числа сотрудников научно-исследовательского института коллоидной химии в Воронеже и других центрах. Совместно с С. Е. Хариным в книге Влияние коллоидов на процессы сахароварения им обобщены результаты исследования. Авторы предложили метод количественного определения растворимых в воде коллоидов, на основе которого осуществляется контроль процессов сахарного производства и оценивается эффект очистки диффузионного сока от обратимых и необратимых коллоидов. А. В. Думанский совместно с И. Я- Бень изучил свекловичный сок как коллоидную систему, дал коллоидно-химическую характеристику сахарной свеклы (совместно с Е. Ф. Симоновой), предложил очистку стоков сахарного производства путем вспенивания (совместно с П. М. Силиным и С. Е. Хариным). Им изучена связанная вода в хлебопекарных продуктах и коллоидно-химические процессы при сушке хлеба, при замочке кукурузы и др. [c.14]

Семена ячменя (в опыте 2 — кукурузы и гороха) замачивали в водопроводной воде и проращивали двое суток на фильтровальной бумаге в термостате при 24° С. В опытах с короткими экспозициями проростков на атразине (2—5 час.) одинаковые проростки на 3-й день высаживали на винипластовую крышку с отверстиями и помещали на кювету с водопроводной водой, где проростки находились до семидневного возраста при освещении люминесцентными лампами, постоянной аэрации и температуре 25—26° С. За сутки до опыта в воду добавляли минеральные соли из расчета 1/2 смеси Кнопа. В день опыта проростки разделяли на пучки по 15 штук в каждом, корни ополаскивали водопроводной водой и погружали в колбочку, содержащую 40 мл раствора СаСЬ 2,5- 10 М с гербицидом или без (кальций необходим для стабилизации мембран). Колбочки выставляли на свет на 2 часа при 25—26° С, затем корни вынимали и анализировали раствор. При определении воднорастворимого органического вещества раствор предварительно отмывали от атразина, который сильно поглощает свет в УФ-области, трехкратной экстракцией хлороформом и один раз серным эфиром. [c.103]

Для определения жароустойчивости проростки прогревают в воде в течение 1 ч проростки овса — при 36°С, пшеницы — при 37, ячменя и проса — при 37—38, кукурузы — при 39 °С. [c.107]

Л. И. Л е щ и II с к а я, К. Ф. Новикова, Л. И. X л ю п и н а (ВНИИ химических средств защиты растений) — Определение остаточных количеств триазиновых гербицидов (симазина, атразина, пропазина, прометри-на и примагола-М) в зерне кукурузы в воде методом ГЖХ, № 1542—76. 20.12.1976 [c.215]

Результаты, полученные при отгонке воды с бензолом и толуолом, согласуются с данными, определенными путем продолжительного высушивания в мягких условиях (вакуумный сушильный шкаф при 38—50 °С или вакуум-экснкатор) и методом обратного поглощения влаги высушенными образцами. При перегонке с ксилолом и сушке в вакуумном сушильном шкафу при 100 °С результаты явно выше. Это связано с разложением образцов, заметно темнеющих в процессе обезвоживания. Высушивание в воздушном сушильном шкафу, по-видимому, дает заниженные результаты из-за неполного удаления влаги (показано путем дальнейшей сушки в вакуум-эксикаторе). При сушке кукурузы в течение 130 ч могут протекать процессы окисления, вследствие чего результаты, получаемые по определению потери массы образца, могут быть заниженными. [c.274]

Надежным методом определения влажности зерна является отгонка воды с бензолом или толуолом при условии, что размер частиц измельченных зерен составляет около 10 меш [110, 253. При большем размере частиц диффузия воды из их внутренних зон затруднена. Получаемые результаты на 1,5—2% превышают результаты анализа по методике Брауна—Дювеля. В качестве стандартного метода оценки влажности зерна находит широкое распространение отгонка воды с толуолом, предложенная Сейром и Фетцером [110, 253]. По получаемым при этом значениям устанавливают необходимое время сушки при 70 °С в вакуумном сушильном шкафу [110]. Отгонку воды с ксилолом применяют для определения скорости разложения сахаров, содержащихся в кукурузе [148]. [c.274]

Указанный способ сводится к освобождению кукурузы от шелухи, ее размолу, размешиванию с горячей водой и стерилизации полученного крахмального раствора. Под влиянием определенных видов микроорганизмов — бактерий, вызывающих ацетоно-бутиловое бро1жение, происходит превращение крахмала в ацетон, этиловый и бутиловый спирты, сопровождающееся газообразованием. Дестилляцией смесь разделяют на ацетон, этиловый спирт и смесь бутилового спирта и воды, из которой затем выделяют бутиловый спирт. [c.203]

Химический анализ природного соединения, как известно, включает в себя ряд общих процедур, таких, как экстракция, выделение, очистка и определение его химической структуры. Для извлечения неизвестных соединений обычно используют путь ступенчатой экстракции растворителями по мере возрастания их полярности петролейный эфир, бензол, серный эфир, этилацетат, спирты и вода. Преимуществом спиртовых экстракций перед водными является низкая точка кипения этих растворителей, однако в этом случае возможно расщепление эфирных связей, например эфиров фенолов с сахарами (Swain, 1965). Недостатки водной экстракции извлечение большого количества посторонних веществ, невозможность предотвращения действия всех ферментов, функцию которых не может устранить даже кипячение. Дифференцированный подход следует избирать и при выборе метода разделения веществ. Разделение на бумаге Ватман 3 ММ удобно применять в том случае, когда нужно получить до 0,5 г вещества, разделение на колонках — для выделения больших количеств вещества. Ниже приводится схема препаративного выделения, использовавшаяся для изолирования и идентификации природного ингибитора роста капусты (фенольное вещество, 12 мг из 500 г листьев), ивы (халконглюкозид, 75 мг из 1000 г листьев), гороха (кверцетин-гликозил-кумарат, 500 мг, п-кумаровая кислота, 10 мг) и кукурузы (л-кумаровая кислота, 4 мг из 250 г листьев). Из листьев гороха была выделена также кофейная кислота. [c.34]

Если выращивают растения, образующие мощную вегетативную массу (кукуруза, картофель, поШздоры, клещевина, подсолнечник и др.), то при достижении ими большого веса при поливе вводят поправку на вес самого растения. Для этого взвешивают сосуд с растением перед поливом и берут пробу почвы для определения влажности. Известные веса тарированного сосуда, сухой почвы, песка, каркаса и вес воды, установленный путем определения влажности, складывают. Сумму весов затем вычитают из веса сосуда с растением перед поливом полученная разность покажет вес растения. Его надо добавлять при поливе к ранее вычисленному весу сосуда для полива. Чтобы иметь более одинаковые условия освещения для всех сосудов, их ежедневно во время поливки меняют местами, а также передвигают на один ряд [c.549]

Методика определения атразина, играна, карагарда, мезоранила, прометрина, пропазина, семерона, симазина в зерне кукурузы, яблоках, винограде, мандаринах, капусте, почве, воде газо-жидкостной и тонкослойной хроматографией. Основные положения. Принцип метода. Метод основан на экстракции препаратов органическим растворителем, очистке экстрактов путем перевода препаратов в ионизированную форму и последующего определения газо-жидкостной хроматографией с термоионным детектором или тонкослойной хроматографией. [c.217]

Из других газохроматографических методов следует отметить определение абата в воде [209] посредством пламеннофотометрического и термоионного детекторов, аккотиона и продукта его гидролиза (4-нитро-л<-крезола) в кукурузе, свинорое и молоке [163] цитрона и гордоны в органах и тканях птиц [275, 283] дурсбана и его кислородного аналога в молоке, органах, тканях животных и птиц [190, 191, 273]. [c.132]

Работу проводили с 7-миллиметровыми отрезками колеоптилей кукурузы сорта Краснодарская 1/49, взятыми от 5-дневных проростков. Отрезки инкубировали в течение 24 час. при 25° в темноте в растворах ингибиторов или без них на дистиллированной воде (рн около 6) с добавлением или без добавления метилового эфира -индолилуксусной кислоты (мИУК) в концентрации 5 мг/л. Ингибиторы использовали в следующих концентрациях аурантин —от 0,0020 до 0,0035% (1,5 10 —2,7 10" М) трипафлавин—1,7 10 — 8,5-10- М метиловый зеленый — 2,5-10- —5,0-10- М 8-азагуанин —5,0-10- —2,9-10-2 Д1 хлорамфеникол — 1,8-10 —1,5-10 М. Одновременно с измерением прироста в длину измеряли дыхание в аппарате Варбурга при 25°, Во всех случаях при определении роста и дыхания 20 отрезков инкубировали в сосудиках Варбурга с 3 мл среды. Растворы всех ингибиторов, за исключением хлорамфеникола и аурантина, готовили на дистиллированной воде. Хлорамфеникол сначала растворяли в небольшом количестве спирта раствор аурантина исходно содержал 20% этанола. Рабочие водные растворы этих ингибиторов содержали, таким образом, небольшое количество спирта. Поэтому при изучении действия различных концентраций хлорамфеникола и аурантина на рост и дыхание отрезков ставился контроль с соответствующим содержанием спирта. Содержание этанола в инкубационной среде составляло от 0,2 до 1,4%. Дыхание определяли за первые [c.192]

Исследования Смита и сотр. [11] выявили возможность существования связи между степенью чувствительности отдельных видов растений к некоторым 2-хлорацетамидам и различиями в поглощении и метаболизме этих соединений растениями. В опытах использовались семена кукурузы, овса, сои и огурцов. Овес и огурцы — чувствительные виды однодольных и двудольных растений, а кукуруза и соя — соответственно устойчивые виды. В табл. 12 перечислены изученные соединения и приведены данные об относительной устойчивости отдельных видов к хлорацет-амидам. Семена погружали в раствор гипохлорита натрия, чтобы уничтожить микроорганизмы на их поверхности, ополаскивали, сушили и помещали в мешочки для прорастания фирмы Сайенти-фик продактс . В наружный полимерный мешочек наливали растворы хлорацетамидов, а на внутренний бумажный тампон помещали семена. Во всех опытах использовали хлорацетамиды, меченные в карбонильной группе. Концентрация растворов всех препаратов составляла 10 мг]л, только диаллильное производное ввиду низкой удельной активности меченого препарата применяли в концентрации 100 мг/л. При этих концентрациях семена всех четырех видов растений хорошо прорастали. Через определенные промежутки времени после прорастания семена извлекали из мешочков, промывали дистиллированной водой и диэтиловым эфиром, сушили на воздухе 20 мин и взвешивали. Ткани гомогенизировали в 80%-ном ацетоне, фильтровали и снова экстрагировали ацетоном. Активность экстрактов измеряли жидкостным сцинтил-ляционным счетчиком. [c.176]

Определение потребности семян в воде при набухании. Количество воды, необходимое для набухания зерна хлебных злаков, выражают в процентах по отношению к массе.воздуипю-сухого зерна. Для пшеницы и ржи потребность в воде составляет в среднем 55 . -в, для ячменя 50, овса 65, кукурузы 40, проса и сорго 25 . и. [c.13]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология