Агар Мак-Конки

Положение полос преципитации можно охарактеризовать величиной р, которая выражает в процентах отношение расстояния между нижней границей агарового слоя, содержащего антиген, и полосой преципитации ко всей длине промежуточного слоя агара, который первоначально не содержал ни антигена, ни антител. [c.130]

Микробным числом называют количество микробов в 1 мл жидкости, 1 г твердого вещества или 1 кубометре воздуха. Для определения делают мерные посевы материала на питательный агар с подсчетом выросших колоний (1 колонию обычно образует 1 клетка). Результат выражают в колониеобразующих единицах — КОЕ/мл, КОЕ/г или КОЕ/м . Если, например, на чашке с посевом 1 мл воды, разведенной 1 1000, выросло 120 колоний, то микробное число составляет 1,2 10 КОЕ/мл. В соответствии с принятым стандартом (ГОСТом) водопроводная вода должна иметь микробное число менее 50. Микробное число почвы определяют аналогично после посевов 10-кратных разведений почвенной суспензии. [c.415]

Общее микробное число. ОМЧ воздуха — кол ичество колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 м воздуха (подсчитывают колонии, вырастающие на поверхности питательного агара при посеве определенного объема воздуха и инкубации в течение 24 ч при 37 °С и 24 ч при комнатной температуре). [c.423]

При определении кишечной палочки жидкость распределяют платиновой (нихромовой) петлей или шпателем (стеклянной палочкой с загнутым концом) равномерно по всей поверхности агара. При внесении исследуемой воды в чашку Петри пипетка не должна касаться поверхности застывшей среды. Поэтому последнюю наружную каплю снимают прикосновением пипетки к внутренней стенке чашки, а не ко дну, как это делается при посеве на питательном агаре. Чашки с посевом со снятыми с них крышками ставят в термостат при [c.54]

Так как студни агар-агара отстают от стенок стеклянных сосудов, в коа орых они образуются, то рекомендуется сначала стенки сосуда покрыть тонким слоем разбавленного раствора желатины, содержащего двухромовокислый калий, слегка подсушить, после чего уже наливать в сосуд раствор агар-агара, подлежащий желатинированию. [c.243]

Обычно дрожжевые культуры выращивали из чистой культуры дрожжей на сусло-агаре или из сухих дрожжей (сублимационной сушки). При этом в присутствии витаминов (тиамина и пантотената), аминного азота и воздуха происходило 20-кратное увеличение объема дрожжевой массы — до 1,6 х 10 КОЕ/мл. Все это способствует быстрому размножению клеток и образованию липидов и стеринов, появление которых свидетельствует о скором окончании брожения хорошо осветленного сока [31]. В наше время имеется большой выбор активных сухих винных дрожжей, в связи с чем стало ненужным выращивать свою бродильную культуру на сусле-агаре. Одной из проблем при работе с современными дрожжами является высокая скорость мутаций штаммов, что вызывает необходимость постоянно оценивать качество дрожжей и заново отбирать соответствующие штаммы. [c.136]

ЕМВ-агар и агар Мак-Конки [c.119]

Минимальный агар в чашках, которые часто необходимо инкубировать по двое суток, должен иметь объем -25—30 мл. Процессы брожения на ЕМВ-агаре или агаре Мак-Конки также идут лучше, если в чашках содержится по крайней мере по 25 мл агаровой среды. [c.125]

Готовят агар без источника углерода, как описано в разд. 20.2.5, и разливают его в чашки. Ко второй порции среды, расплавленной и охлажденной до 45—50 °С, добавляют достаточное количество стерильной концентрированной суспензии гранул ПГБ до конечной концентрации в среде 0,25% (вес/объем). Агаризованную суспензию гранул наливают в чашки с затвердевшей средой для образования тонкого поверхностного слоя. [c.41]

В качестве проводника второго рода ( электролитического мостика ) может служить узкая стеклянная трубочка, соединяющая оба полуэлемента трубочке обычно заполняется студнем агар-агара, приготовленным на растворе какого-нибудь электролита (КО, Na l и т. п.). [c.145]

По медицинскому назначению эмульгаторы делятся на используемые в эмульсиях для наружного и в эмульсиях для внутреннего применения. К первой группе относят в основном олеофильные эмульгаторы, а также щелочные мыла, соли нафтеновых кислот, агар-агар, трагакант, казеин и казеинаты, ко второй — лецитин, растительные экстракты, камеди, пектиновые вещества, целлюлозу и ее производные, твины, спены, желатин и желатозу, яичный желток. [c.207]

Прокариотические Р-глюкозидазные гены вьщеляли с помощью трансформации Е. соН банком ДНК-клонов, полученным из продуцирующего данный фермент микроорганизма, и отбора трансформантов, способных расти на минимальной среде с целлобиозой в качестве единственного источника углерода. Клоны, проявляющие Р-глюкозидазную активность, можно также выявлять с помощью среды, содержащей хромогенный субстрат (например, 5-бром-4-хлор-3-индол-Р-В-глюкопиранозид), или цедлобиозного агара Мак-Конки в этих условиях колонии окрашиваются в красный цвет. [c.298]

После проведения хроматографического разделения определяют границы слоя, на котором проводилось разделение. Для этого металлическим шпателем шириной 3 — 4 мм с помощью шаблона для маркировки проводят толстые разделительные линии справа и слева от разделительного слоя. Осыпавшийся силикагель сдувают. Затем хроматографическую дорожку шириной примерно 10 мм размечают тонкими поперечными линиями (игла) на 10 отрезков (Rf 0—0,1 0,1—0,2 и т. д.). Соскабливают один участок за другим, начиная от старта. Отделив определенный участок слоя в виде небольшой кучки, пластинку ставят в вертикальное положение и легким постукиванием переносят силикагель на лист целлулоида. При тесте на изгиб порошкообразный силикагель с каждого участка хроматограммы равномерно насыпают на блок из 6—19 кубиков агара. После добавления 1 капли воды оставляют эти кубики агара на 30 мин во влажной камере в темноте. После этого кубик укрепляют сбоку на колеоптиле. В холостых опытах с силикагелем не наблюдается искривления в ко трольных опытах с зонами индолил-(3)-уксус-ной кислоты определенной концентрации наблюдается ожидаемый угол искривления. [c.302]

Диско-диффузионный метод. При определении чувствительности методом диффузии в агар чистую культуру возбудителя засевают газоном на питательный агар в чашке, например, тампоном, смоченном в стандартизованной (10 КОЕ/мл) суспензии микроорганизма. Затем на поверхность агара укладывают стандартные бумажные диски, пропитанные антибиотиками, которые диффундируют в агар, создавая градиент концентрации. На чашку диаметром 90 мм равномерно укладывают не более шести дисков с определенным количеством антибиотика. После инкубирования в термостате измеряют диаметры зон задержки роста вокруг дисков и по специальным таблицам определяют степень чувствительности к тому или иному антибиотику (см. цв. вклейку, рис. 13). Поскольку опыт диффузии ставят в стандартных условиях (состав V) количество среды, количество засеваемых микробов, температура и сроки инкубирования, стандартные диски и др.), каждому значению диаметра зоны вокруг диска с ан1Ибиотиком соответствует определенное значение МИК. Исходя из этих значений, для каждого антибиотика рассчитаны величины терапевтического индекса, что позволяет по диаметру зоны определить степень чувствительности к тому или иному антибиотику чувствительные (S), умеренно устойчивые (/) и устойчивые (/ ). К категории S (от англ. sensitive, чувствительный) относят те, для которых использование средних терапевтических доз будет достаточным для трехкратного превышения МИК. В категорию / (от англ. intermediate, промежугочный) относят те микробы, для подавления которых потребуются максимальные терапевтические дозы. Категорию R [c.44]

Бактериологическое исследование. Менингококк растет на специальных питательных средах с нативным белком (бульон или агар с сывороткой, асцитической жидкостью или кровью). Для исследования материала, обильно контаминированного нормофлорой (мазки из носоглотки), применяют посев на плотные селективные среды с антибиотиками (ристомицином, ванкомицином, ко-листином и нистатином). Спинномозговую жидкость лучше сеять после центрифугирования (3000 об/мин в течение 5 мин). Засевают 2— 3 капли полученного осадка на поверхность подогретой пи- [c.117]

Метод фильтрации основан на способности подвижных кампилобактеров активно проходить через мембраные фильтры с порами диаметром 0,45 — 0,65 мкм. Преимуществом метода является возможность использования неселективных сред (например, применяют кровяной агар). Фильтр укладывают на поверхность плотной среды в чашке, наносят на него 10— 15 капель суспензии фекалий и инкубируют чашку при 37 °С в течение 1 ч, после чего фильтр осторожно снимают, а чашку продолжают инкубировать в микроаэрофильных условиях. Проникшие через фильтр клетки кампилобактеров образуют на поверхности среды колонии. Чувствительность метода невысока (около 10 КОЕ/мл), поэтому его рекомендуют сочетать с посевом на селективные среды или другими методами исследования. [c.220]

Здесь г О для суммарного катодного или анодного тока, соответственно >0 и а > 0. Отсюда и для 1 0 соответственно. Уравнения (34) справедливы как для ста ционарного, так и для нестационарного электролиза. В послед нем случае можно подставить вместоиточные выражения, полученные в результате детального исследования диффузионной задачи. Сочетание формул (31) и (34) непосредственно приводит к уравнению полной поляризационной кривой. Первые ко личественные расчеты этого типа были проделаны Гейровским и Ильковичем [48] применительно к условиям полярографии (см. также работу Агара и Боудена [48а]). Впоследствии к этой проблеме обращались многие авторы [17, 18, 25, 31, 32, 51, 52], рассматривавшие ее в различных приближениях (см. обзор Ге-ришера [45] и работы [39—43]). [c.183]

Среды разливают по колбам высотой i—IV2 см и стерилизуют под дав.че-ннем при 110°. После остывания среды ее заражают активным илом (биоплен-кой) и ставят в термостат при 25°С. Развитие азотобактера наступает на 2—3-й день. Для получения твердой среды добавляют 1,5% агара. [c.86]

Реакция питательных сред, в том числе и мясо-пептонного агара, устанавливается колориметрически с помощью компаратора Михаэлиса. При установлении реакции агара в небольшой (3—5 мл) объем его, разбавленный вдвое горячей дистиллированной водой, добавляют по каплям 0,5% раствор едкого натра или 10% раствор соды до необходимого pH. Затем вычисляют, какой объем щелбчи необходимо прибавить ко всему количеству среды для получения требуемой реакции. После прибавления щелочи всю среду,тщательно перемешивают и вновь проверяют реакцию описанным выше no o6o]vi. [c.185]

Растворы высокомолек) ляриых соединений ил еют значительную вязкость, которая быстро возрастает с увеличением концентрации растворов. Повышение концентрации макромолекулярных растворов, добавки веществ, понижающих растворимость полимера, и, часто, понижение температуры приводят к застудневанию, т. е, превращению сильно вязкого, но текучего раствора в сохраняющий форму твердообразный студень. Растворы полимеров с сильно вытянутыми макромолекулами застудневают при небольшой ко 1-центрации раствора. Так, желатин и агар-агар образуют студни и гели в 0,2—1,0% растворах. Высушенные студни способны вновь набухать (существенное отличие от гелей). [c.315]

Количество воды, предназначенное для посева, вносится в чашку Петри, причем, ес.ди должно быть внесено все содержимое пипетки, то после опорожнения ее, наружная капля снимается с конца ее прикосновением ко дну чашки. Вливаемый вслед затем в чашку расплавлеиный агар не должен иметь температуру выше + 42—44°С. Питат(мьнап среда наливается в количестве 7—10 мл, в зависимости от величины чашки. Края пробирки, перед тем как вБести ее под приподнятую крышку чашки Петри, фламбируютея. [c.391]

Ко второй группе относится большинство орга1Нических коллоидов биологического происхождения (белки, К рахмал, лецитин, гуммиарабик, агар-агар и т. д.), характеризующихся весьма малой чувствительностью к электролитам н обратимых при осаждении. Они обладают большой вязкостью, способны к обратимому застудневанию высушенные студни, жадно поглощая растворитель, 01бнаружи-вают большую способность к набуханию. [c.282]

Ход определения. Перед посевом на крышках чашек Петри восковым карандашом сокращенно указывают дату посева, название пробы и степень разведения. Используют не менее 2—3 десятикратно убывающих разведений так, чтобы на чашках просчитывалось не менее 15 и не более 300—400 колоний бактерий. Из каждого разведения производят посев параллельно на две чашки Петри. В пробах неизвестной степени бактериального загрязнения ряд разведений необходимо расширить. При посеве 1 мл неразведенной пробы учитывают любые количества колоний, не превышающие 400. Посев производят примерно из следующих разведений для неочищенной сточной воды 1 10 000 1 100 000 из очищенной на городских сооружениях биологической очистки (после вторичных отстойников) — 1 100 1 1000 из хлорированной воды — без разведения из воды водоема, приемника сточных вод — 1 10 1 100 1 1000. Прн посеве крышку чашки Петри немного приоткрывают, воду выдувают из пипетки и последнюю каплю воды снимают прикосновением пипетки ко дну чашки. После внесения воды чашку заливают 10—12 мл расплавленного стерильного питательного агара, охлажденного до 45 5°С. Перед выливанием агара пробирку фламбируют. Питательную среду в закрытой чашке быстро и осторожно перемешивают, на- клоняя или вращая чашку. [c.189]

При посеве на чашку Петри после выдувания жидкости из пИ петки последнюю каплю жидкости снимают прикосновением пипетки ко дну чашки. Перед выливанием агара пробирку фламби-руют. Влитый в чашку агар перемешивают с исследуемой жидкостью осторожным круговым вращательным дв,ижением чашки Петри. Для застывания МПА чашки Петри ставят на строго го-ризонтальную поверхность зеркальных стекол. [c.154]

Культивирование нематоды. Глезер [16] разводил эту нематоду на питательном агаре, поливая его накануне суспензией хлебных дрожжей и раствором декстрозы. После суточной инкубации дрожжей культура нематод наносилась на среду путем их смыва водой с мертвых личинок японского жука. Выросшая на агаре культура дрожжей предотвращает развитие загрязняющих среду бактерий. Мак-Кой и Герт [41] для культивирования нематоды использовали мясопептонный агар с добавлением натриевой соли метил-пара-оксибензоата (0,2%) и при дозе инокулюма 600 инвазионных личинок на 1 см поверхности питательной среды получали через 7 дней (при 21° С) 9000—12 000 нематод с 1 см . После этого личинок смывают со среды 1—2%-ным раствором Na l и, промыв,,содержат при 24° С, для того чтобы личинки оделись чехликом , т. е. перешли во 2-й инвазионный возраст. При подготовке к линьке личинки рвотой освобождаются от содержимого кишечника, и потому через 48 часов после изоляции личинок необходимо вновь промыть их чистым солевым раствором. [c.573]

Компенсационное титрование классическим методом практически проводится следующим образом исследуемый раствор вливают в титрационный сосуд, опускают в него индикаторный электрод, выбор которого зависит от титруемого объекта, и при помощи солевого или агар-агарового мостика присоединяют электрод сравнения, в большинстве случаев каломельный полуэлемент. Проверяют напряжение аккумулятора, включая в цепь нормальный элемент Вестона, и устанавливают, если это возможно, на мостике такое напряжение, чтобы оно соответствовало напряжению нормального элемента в этом случае показания мостика, умноженные на два, будут сразу давать потенциал исследуемого элемента в милливольтах. Приключают. к мостику исследуемый элемент и, работая ключом, передвигают движок до достижения нулевого отклонения гальванометра — момента ко.мпенсации. При точных измерениях рекомендуется, записав отсчет по мостику, подойти к нему с другой стороны шкалы, снова до момента компенсации. При работе с потенциометром М-1 после настройки его, как это описывалось выше, ставят переключатель в положение X, включают дополнительное сопротивление гальванометра и реохордом 1 добиваются, чтобы при переходе с одного контакта на другой отклонение стрелки гальванометра изменяло свое направление. Возвратившись после этого на предыдущий контакт реохорда, верньером вращают реохорд 2, нажимая время от времени кнопку потенциометра. Когда отклонения стрелки гальванометра станут небольшими (одно-два деления), выключают дополнительное сопротивление и добиваются окончательно момента компенсации. При этом отсчет по первому реохорду дает сотни милливольт, а по второму десятки и единицы милливольт. [c.238]

Гели делят на две группы эластичные — набухающие и хрупкие — ненабухающие. Такое деление неточно, так как существуют гели, занимающие промежуточное положение. К первой группе относятся гели высокомолекулярных соединений — желатин, каучук, агар-агар и др. ко второй — гели кремниевой кислоты, гидроокиси железа и алюминия. [c.226]

Г. Фарш из телятины [818, 1337]. Свежую телятину, свободную от жира, трижды пропускают через мясорубку, взвешивают, смешивают с двойным количеством дистиллированной воды и выдерживают в холодильнике в течение 18—48 часов. Затем настой сливают на чистую фланель и отжимают возможно суше вручную или под прессом. К фаршу прибавляют антисептик, массу тщательно перемешивают и помещают в культуральные сосуды. После этого культуры готовы для заселения нематодами. Выход с культур из телятины, приготовленных Мак-Коем и Гиртом, колебался от 9 до 12 тыс. нематод на 1 см поверхности культуры (вышеописанные картофельные культуры давали около 2000 нематод на 1 см ). Средний выход с лотка (см. В ) был около 20 млн. личинок второго возраста. Заметного уменьшения плодовитости при повторном пересеве не отмечено, по крайней мере в течение 10—12 пассажей. Однако целесообразно заменять более старые культуры нематодами, выведенными на агаре, так как это поддерживает более высокий средний выход и более равномерное развитие крупных культур. [c.457]

Допускается применение других сортов агара, но с заранее вытитрованным ко-личеством [c.957]

НЫХ энтеробактерий и энтерококков. Для селекции представителей сем. Enteroba teria eae желчь или ее соли добавляют к таким средам, как агар Мак-Конки (разд. 8.5.27), агар для салмонелл и шигелл (разд. 8.5.43), агар с желчью и фиолетовым красным (разд. 8.5.56) и многим другим. Для получения накопительных культур энтерококков [20] хорошей селективной средой оказался питательный агар с желчью (разд. 8.5.9). [c.301]

Изготавливаемые в промышленных масштабах агары ЕМВ и Мак-Конки являются удовлетворительными индикаторными в отношении брожения средами при работе с грамотрицательными кишечными бактериями. Однако, поскольку многие штаммы Е. oli, Salmonella, а также другие штаммы, используемые в экспериментах по переносу генов, имеют мутации, которые делают их ауксо-трофами по отношению к пуринам, пиримидинам и (или) витаминам, следует на каждый литр среды добавлять 5 г дрожжевого экстракта. Желательно также добавление Na l в количестве 5 г/л в среды, используемые для проверки чувствительности штаммов бактерий к фагу. Агары ЕМВ и Мак-Конки обычно дополняются сахарами до конечной концентрации 1% и обозначаются EMB + Gal, Ma + La и т. д. ЕМВ-агар, не содержащий сахаров, используется для проверки чувствительности бактерий к фагам и обозначается как ЕМВО-агар. В табл. 14.3 перечислены концентрации стерильных исходных растворов наиболее часто используемых сахаров. [c.119]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология