Митохондрии содержание ДНК

Кроме того, установлено, что Хр внутренней части клетки приблизительно в два раза меньше внешней среды для обоих образцов. Это означает, что клетки митохондрий способны регулировать свою внутреннюю концентрацию ионов пропорционально их содержанию во внешней среде. [c.385]

Небольшую колбу Эрленмейера помещают в сосуд со льдом па магнитную мешалку. В колбу вносят густую суспензию митохондрий и добавляют раствор дигитонина так, чтобы его конечное содержание было 0,]б мг на 1 мг белка митохондрий. Смесь инкубируют на холоде 15 мин при медленном перемешивании, затем разбавляют в 3—5 раз холодным раствором, содержащим 0,25 сахарозу, 5 мМ трис-НС1, -0,5 мг/мл альбумина и центрифугируют 10 мин при 10 ООО g. Супернатант (Si) сливают, избегая загрязнения рыхлым слоем осадка. [c.411]

Получают митохондрии печени крысы согласно описанию на с. 406. В кювету с постоянным перемещиванием, содержащую 3 мл среды инкубации, помещают К+ Чувствительный электрод и, установив перо самописца на середину шкалы, калибруют чувствительность прибора внесением 4—6 добавок раствора КС1 с точно известной концентрацией (по 20—30 мкМ). В другой пробе в среду инкубации вносят суспензию митохондрий (3—5 мг белка на 1 мл пробы), 5 мкМ ротенон и регистрируют в течение 1—2 мин концентрацию К+ во внешней среде. В пробу добавляют валиномицин (около 0,1 нмоль на 1 мг белка), измеряют концентрацию ионов К+ во внешней среде и рассчитывают скорость его диффузии в стационарном состоянии. Внесением 2,4-динитрофенола (100 мкМ) индуцируют выход ионов К+ во внешнюю среду. Содержание эндогенного К+ в митохондриях определяют добавлением к суспензии митохондрий в среде инкубации раствора детергента (тритон-Х-100) до конечной концентрации 0,1%- Изменения концентрации К+ в среде рассчитывают по калибровочной кривой. [c.444]

В настоящей работе предлагается количественно изучить зависимость скорости окислительного фосфорилирования в митохондриях печени крысы от содержания Са + (или других двухвалентных катионов) в матриксе. [c.476]

Внутри клеток содержание неорганических ионов в разных органеллах и отсеках существенно различается. Так, в ткани сердца быка концентрация меди в 10—15 раз меньше, чем в митохондриях [105]. [c.156]

В плазматических мембранах имеется также холестерин, его содержание в миелине достигает 17%- В митохондриях же холестерин обна- [c.341]

Биолог. Совершенно верно. Продолжим, однако, наш разговор о важности снабжения клеток глюкозой в строго нужном количестве. Недостаток глюкозы уменьшает возможности синтеза АТФ митохондриями, а избыток ее угнетает их активность, вызывает деградацию и тоже снижает производство АТФ. Поэтому и то и другое может нарушить все процессы метаболизма в организме. Вот почему содержание глюкозы в крови должно регулироваться организмом очень строго. СН-метим, кстати, что этот процесс давно и основательно исследован эксперимеигально. Например, данные, которые я предлагаю использовать, опираются на тщательные наблюдения за изменением содержания сахара в крови у людей от 5 до 80 лет. Эги данные хорошо известны специалистам и их с полным правом можно считать классическими [Дильман, 1972 Руководство по физиологии, 1975 и др.]. Их надежность не вызывает сомнений [c.54]

Биолог. Можно. Но это потребует дополнительных данных. Посмотрите на рис. 4.2. На нем приведены оценки Я-параметра + - полученные при анализе динамики содержания глюкозы в крови у людей ра шого возраста х - по содержанию глюкозы в крови натощак - по содержанию в крови холестерина А - по массе тела у детей [Тодоров,1961] -по плотности митохондрий в клетках печени [Руководство по физиологии, 1984] О - по активной клеточной массе [Руководство по физиологии, 1975] - по удельной жизненной емкости легких ( ) [Навратал и др., 1967 Мерков, Поляков, 1974] [c.69]

Биолог. Я хочу отметить, что избыточное содержание глюкозы в крови вызывает сначала снижение активности митохондрий, а затем - и их деградацию [Лузиков, 1980]. А так как Параметр Подобия связан с числом митохондрий, то избьггочное питание может постепенно приводить к его понижению, из-за чего пищевая нагрузка на организм будет ощущаться им все тяжелее и тяжелее.. [c.83]

Яо//) /з =(j/) /5 =(La/) /7,4 где А,В - коэффициенты сноса и диффузии микродвижений частиц в межклеточном пространстве организма (1.23) - средний квадрат перемещения частицы за время/ а - интенсивность взаимодействий частиц в организме (2.5) Mit - плотность митохондрий (4.5) р. - удельная интенсивность метаболизма (1.22) т - продолжительность сердечного цикла L - удельная жизненная емкость легких (4.5) Gh - содержание глюкозы в крови натощак (4.1) Hol - содержание в крови холестерина (4.2а) J - общая нагрузка на организм от углеводной пищи (4.12) La -уровень аутоантнтел в крови (4.23) символ "/" здесь использован для обозначения отношения каждого параметра к его соответствующему базовому значению. [c.95]

Врач. Ну так вот. Вы решили заняться собой и однажды утром сделали зарядку. Что произошло с вашим организмом На какое-то время скорость кровотока повысилась, и если сразу после зарядки вы измерите содержание глюкозы в крови, то оно, наверняка, немного понизится. Что же касается жизненной емкости легких и массы вашего тела, то после одного занятия, как вы прекрасно понимаете, они практически не изменятся. Совсем другое дело, если вы зарядку станете делать ежедневно да еще ежедневно будете совершать прогулки на свежем воздухе. Словом, существенно измениге свой образ жизни. Тогда через несколько месяцев у вас заметно возрастут потребление кислорода тканями тела, интенсивность метаболизма, число митохондрий в клетках, а значит, и ваш Параметр Подобия повысится. Вот теперь, в полном соответствии с (4.32), у вас уменьшится содержание жира в теле, увеличится жизненная емкость легких, снизится содержание в крови глюкозы и холестерина, а также понизится уровень очень опасных для организма аутоиммунных процессов (см. рис. 4.7). [c.96]

Читатель. Нет Ведь и рождаемость, и смертность, и востфоизводство стабильного населения зависят от физиологических процессов, которые у разных людей подобны. А социальные факторы, которые вы не учли, не очень сильно повредили согласованию ваших вьгеодов с данными наблюдений. Поэтому с Жизненной Теплотой, согласно вашей итоговой цепочке подобия, оказались статистически связаны столь разные показатели, как плотность митохондрий в клетках организма, содержание в крови глюкозы, жизненная емкость легких, а также рождаемость, смертность от рака и сердечно-сосудистых заболеваний, смертность от инфекций, возрастная структура населения и др. [c.177]

Защищенные новыми энзимами живые клетки постепенно начали выносить все большее содержание Ог в газосфере. На рис. 193 показано при увеличении в 4-10 раз расположение пероксозом, митохондриев и хлоропластов внутри листа табака. [c.377]

Высокую активность ззз гистоауторадиографически установили р1гке1 и соавт. (1963) в ЖКТ, легких, надпочечниках и коже крыс в период от 5 до 30 мин после внутрибрюшинного введения меченого цистамина в дозе 100 мг/кг. Моп(1оу1 и соавт. (1962) определяли 8-цистамин в растворимых белках и субклеточных структурах большинства органов крыс после внутривенного введения протектора. Высказано предположение, что степень защиты отдельных тканей связана с концентрацией цистамина в их субклеточных структурах. Уже через 5 мин после внутривенного введения цистамина и АЭТ Владимиров (1967) обнаруживал их присутствие в митохондриях клеток селезенки и печени мышей. Тотальное гамма-облучение мышей (6 Гр) не влияло на распределение цистамина в субклеточных структурах. Через 30 мин после внутрибрюшинного введения цистамина мышам и крысам его внутриклеточное распределение у этих видов животных существенно не отличалось. Увеличение дозы цистамина у мышей приводит к повышению его содержания во всех субклеточных фракциях селезенки и печени, особенно в ядрах клеток [Владимиров, 1968]. Довольно быстро, в течение 5 мин, [c.45]

В кювету полярографа, заполненную средой, содержащей 0,125 М сахарозу, 60 мМ КС1, 10 мМ трис-НС1, 0,1 мМ 2,4-динитрофенол и 40 мкМ цитохром с, вносят суспензию либо интактных митохондрий, либо митопластов, либо интактных митохондрий, разрушенных детергентом (конечное содержание белка в кювете полярографа —0,5— 1 мг/мл). Митохондрии, разрушенные детергентом, готовят, смешивая равные объемы густой суспензии митохондрий и 2%-ного раствора детергента твин-80. Смесь взбалтывают 2—3 мин и помещают на лед. Реакцию начинают добавлением нейтрализованной (pH 7,4) аскорбиновой кислоты (конечная концентрация 10 мМ). Регистрируют постоянное во времени поглощение кислорода и рассчитывают активность цитохромоксидазы в микроэлектронэквивалентах за 1 мин в расчете на 1 мг белка препарата. [c.412]

Одним из компонентов дыхательной цепи митохондрий является коэнзим Q, или убихинон. Это соединение способно к редокс-превраще-ниям и присутствует в митохондриях в количествах, более чем на порядок превышающих содержание ферментов дыхательной цепи. Коэнзим Q акцептирует электроны от дегидрогеназ, локализованных во внутренней мембране митохондрий (сукцинат- и НАДН-дегидроге-назы), и передает их комплексу III (с. 415). Согласно хемиосмоти-ческой гипотезе Митчела, в процессе редокс-превращений коэнзим Q осуществляет векторный перенос протонов через мембрану в так называемом Q-цикле . Реакция переноса электронов и протонов с участием коэнзима Q в комплексе III сопровождается высвобождением энергии, достаточной для синтеза одной молекулы АТФ. [c.421]

Рассмотрим процессы, происходящие при уравнивании концентрации ионов К+ во вне- и внутримитохондриальном пространстве (рис. 53). Внутренняя мембрана митохондрий плохо проницаема для К" . Поэтому если митохондрии с высоким содержанием калия в матриксе поместить в бескалиевую среду, то калий в окружающей среде практически не появляется. Специфическую проницаемость мембраны для К можно индуцировать антибиотиком валиномицином, представляющим собой циклический депсипептид с выраженными гидрофобными свойствами и способным к комплексообразованию с К+. Добавление к ми- [c.442]

Примечание. При выборе концентрации ЭГТА в этих опытах студент должен руководствоваться значением Кя комплекса Са-ЭГТА в используемых условиях, сродством Са +-транспортирующей системы митохондрий для Са + и содержанием эндогенного и примесного Са + в системе. [c.466]

ДНК, не влияя при этом на репликацию ДНК в ядре. Этот эффект сходен с описанным выше действием этидиумбромида на митохондриальную ДНК- Вместе с тем клетки hlamydomonas, обработанные эти-диумбромидом, способны в дальнейшем восстанавливать содержание ДНК в хлоропластах. При интерпретации этих данных было высказана предположение о существовании исходных копий хлоропластной ДНК в специально защищенных участках. При такой интерпретации необходимо учитывать также данные, свидетельствующие о том, что, хотя репликация ДНК в ядре и в других органеллах происходит в разные периоды клеточного цикла, соотношение между содержанием ДНК в ядре и органеллах поддерживается на постоянном уровне. Должен, по-видимому, существовать какой-то регуляторный механизм, обусловливающий сопряжение процессов репликации ДНК в ядре, митохондриях и хлоропластах [184]. [c.271]

Процесс репликации ДНК в фагах и в митохондриях мышиных клеток, был исследован методом электронной микроскопии с использованием в качестве маркеров денатурационных петель. Эти петли представляют собой небольшие участки ДНК, денатурирующиеся в процессе подготовки препаратов для электронно-микроскопических исследований. Возможно, что эти петли ДНК образуются в участках с низким содержанием G -nap или в участках, обладающих по каким-либо другим причинам пониженной стабильностью по сравнению с остальными участками ДНК Петли чем-то напоминают гетеродуплексьь (разд. Г, 8, в), однако возникают они по другой причине. В кольцевой, митохондриальной ДНК мыши можно видеть две такие петли, отстоящие-одна от другой приблизительно на 180° и отличающиеся друг от друга. Использование этих петель в качестве маркеров позволило проследить-направление репликации. В настоящее время этот метод широко используется. [c.274]

Витамин Вт (карнитин). По своему химическому содержанию — это у-ами-но-р-гидроксикарбоновая кислота бета-иноаой структуры, которая присутствует в тканях животных, растений, в микроорганизмах. Для некоторых насекомых карнитин является собственно витамином. Высшие животные синтезируют его из 1-лизина и далее используют в качестве кофермента, участвуюш,его в переносе остатков жирных кислот через мембраны из цитоплазмы в митохондрии. Карнитин, взаимодействия с коферментно связанной жирной кислотой, образует бифильное производное жирной кислоты, имеюш,ее высокое сродство к липидному слою клеточных мембран. Это свойство и обеспечивает ему легкость внедрения в мембрану и транспорт через нее. Жирная кислота высвобождается после транспорта реакцией гидролиза (схема 10.2.13). [c.281]

Венгерские исследователи попытались применить в качестве эмульгатора инвертных эмульсий другое биологически важное вещество — холестерин, являющийся вместе с фосфолипидами и белками материалом мембран клеток и субклеточных структур (ядер, митохондрий и др.) и важным фактором обмена веществ. Холестерин представляет собой гидроксилсодержащее производное циклопептанопергидрофе-нантрена, обладающее значительной реакционной способностью с образованием двойных соединений и аддуктов. Он дает в воде кол- лоидные растворы и растворим в ряде органических веществ. С холестерином были получены обратные эмульсии, но с малым содержанием воды. Применение этого эмульгатора представляет, видимо, лишь теоретический интерес. [c.210]

ДИФОСФАТИДИЛГЛИЦЕРЙНЫ [1,3-бис-(3-5и-фосфати-дил) глицерины 1,3-бис-(1,2-диацил- и-глицеро-3-фосфо)-глицерины кардиолипины], соед. общей ф-лы I, где К, К, К" и К -ацилы высших жирных к-т, К = Н. Содержатся в тканях животных, в высших растениях, дрожжах и большинстве бактерий. Один из основных фосфолипидов митохондрий, в к-рых находится гл. обр. во внутр. мембране. Обычно содержание Д. в прир. объектах не превышает 10% от кол-ва всех фосфолипидов исключение - актиномицеты, у к-рых на долю Д. приходится до 60%. [c.98]

Для вьщеления Ц. из митохондрий или субмитоховдриаль-ных частиц используют ПАВ, чаще всего холат или дезокси-холат натрия. Обычно чистоту Ц. выражают через отношение содержания гема а к кол-w белка. Для препаратов фермента, выделенных разл. способ1ами, этот показатель составляет 8-14 нмоль/мг. Определить точное значение этой величины пока невозможно из-за отсутствия надежных данных о числе субъединиц, действительно необходимых для функционирования фермента. [c.390]

Согласно последним данным, никель необходим для животных . Так, на рационе, дефицитном по никелю, цыплята плохо росли, имели утолщенные ноги у них наблюдались дерматиты. В тканях подобных животных обнаружены набухшие митохондрии и расширенное иеринуклеарное пространство, что указывает на нарушение функции мембран. Токсичность никеля очень низка, и в организме животных существуют гомеостатические механизмы, регулирующие его koh -центрацию. Содержание этого элемента в тканях составляет от 1 до 5 мкг-л . В сыворотке никель находится в составе [c.41]

Наружные мембраны митохондрий могут быть разорваны путем осмотического шока И отделены от внутренних мембран [64]. Анализ фракции наружных и внутренних мембран показывает, что наружные мембраны имеют меньшую плотность ( 1 1 г/см ), чем внутренние Они легко прО(ннцаемы для большинства веществ с мол. весом 10 000 и ниже. Отношение фосфолипид/белок весьМа высокое ( 0,82 по весу), экстракция фосфолипидов ацетоном разрушает мембрану. Для этих фосфолипидов характерно низкое содержание кардиолипина и высокое содержание фосфоинозита и холестерйна. Убихинона в этих мембранах нет. Внутренняя мембрана (плотность 1,2 г/см ) для многих соединений непроницаема. Фактически, за исключением нейтральных молекул с мол. весом <150, проницаемость для всех других соединений жестко контролируется. Отношение фосфолипид/белок во внутренней мембране имеет низкое значение (/ 0,27) кардиолипин составляет 20% общего содержания фосфолипидов. Во внутренней мембране присутствуют убихинон и другие компоненты дыхательной цепи. [c.392]

В митохондрии составляет примерно 22%, то средняя концентрация цнтохрома составит 0,06 мМ. Поскольку цитохромы сосредоточены во-внутренней мембране, на долю которой приходится 10% или чуть меньше объема всей митохондрии, то концентрация цитохромов в этой мембране должна приближаться к значению 1 м)М. Этого достаточно для-быстрого протекания их реакций с субстратами. Имеется много аналитических данных об относительном содержании различных компонентов дыхательной цепи (табл. 10-1). [c.396]

Важным методом изучения цепи переноса электронов является разделение митохондриальных мембран на фрагменты, сохраняющие способность катализировать отдельные реакции цепи. Существует много методов, используемых для получения субмитохондриальных частиц. Широкоизвестный препарат Кейлина—Хартри из сердечной мышцы получают гомогенизацией митохондрий и осаждением фракций при низких значениях pH. Хотя получаемые в результате частицы имеют низкое-содержание цитохрома с и не способны к окислительному фосфорилированию, они активно дышат . С помощью ультразвука был получен другой тип переносчиков электронов. Под электронным микроскопом такие-частицы выглядят как маленькие образованные мембранами пузырьки,, напоминающие митохондриальные кристы. [c.399]

По значениям митохондриальные переносчики разбиваются на четыре изопотеициальиые группы с потенциалами —0,30, 0, 0,22 и / 0,39 В (табл. 10-6). Когда жестко сопряженные митохондрии переходят в состояние 4 (низкое содержание ADP, высокое содержание АТР, присутствие Ог, но низкая скорость дыхания), наблюдаемые потенциалы изменяются. У самой низкой изопотенцнальной группы, включающей NAD+/NADH, потенциал снижается до —0,38 В, что соответствует состоянию восстановления переносчиков слева от первого участка фосфорилирования на рис. 10-И. Группы 2 и 3 остаются вблизи их Потенциалов средней точки —0,05 и +0,26 В. В этих условиях разность потенциалов между последовательными группами переносчиков составляет 0,32 В, чего вполне достаточно для образования одной молекулы АТР на каждую перенесенную пару электронов, при отношении i p 10 М [уравнение (10-13)]. [c.409]

Имеются растворимые ферменты, катализирующие эту реакцию, для которых величина К близка к единице. Содержащаяся в митохондриях энергозависимая система (гл. 10, разд. Д, 10), включающая мембраны, ускоряет эту реакцию и смещает равновесие в сторону более высокого содержания NADPH. В цитоплазме же эта система, по-видимому, не функционирует. [c.470]

Биосинтез белков в клетках листьев зависит от экспрессии генетической информации трех различных геномов ядра, хлоропластов и митохондрий. Эта генетическая информация проявляется через три генетические системы, включающие ДНК, ДНК-полимеразу, РНК-полимеразу и аппарат белкового синтеза (рибосомы, транспортные РНК, ферментный набор...). Ядерные гены подчиняются закону двуродительского наследования, тогда как гены органелл имеют исключительно материнское наследование. Именно эти носители генетической информации с их собственными законами передачи определяют структуру и свойства белков листьев, а также содержание в них белков, липидов, волокон и т. п. Более подробные сведения о передаче и проявлении генетической информации в хлоропластах можно получить из литературных источников [25, 27, 1П , как и по тем же вопросам применительно к митохондриям [67]. [c.237]

Однако хлоропласты и митохондрии эукариотических клеток содержат рибосомы, отличные от 80S типа. Рибосомы хлоропластов высших растений принадлежат к истинному 70S типу и практически не отличимы от рибосом эубактерий и синезеленых водорослей по вышеприведенным показателям и по более детальным молекулярным характеристикам. Митохондриальные рибосомы более разнообразны в зависимости от принадлежности организма к тому или иному царству эукариот. Наиболее изучены рибосомы митохондрий грибов и млекопитающих. Митохондриальные рибосомы грибов (Sa haromy es, Neurospora) похожи на прокариотические 70S рибосомы, но, может быть, лишь слегка крупнее (около 75S) и содержат относительно больше белка абсолютное содержание рибосомной РНК в них, повидимому, почти такое же, как в типичных 70S рибосомах. Митохондриальные рибосомы млекопитающих, однако, существенно мельче типичных 70S рибосом, имея также и существенно меньшее абсолютное количество рибосомной РНК на частицу их иногда называют мини-рибосомами . Действительно, коэффициент седиментации рибосом из митохондрий млекопитающих составляет всего около 55S, а тотальная масса рибосомной РНК на частицу более чем на 1/3 меньше, чем в типичных 70S рибосомах. В то же время, митохондриальные рибосомы млекопитающих содержат довольно много белка, так что общие размеры их как будто бы не сильно отличаются от таковых прокариотических рибосом. В целом, несмотря на ряд необычных черт, по ряду своих признаков, и в том числе по функциональному поведению, митохондриальные рибосомы млекопитающих все же близки к прокариотическим 70S рибосомам. [c.54]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология