Субклеточные частицы

Исходный субстрат в биосинтезе АМФ-инозиновая к-та. АМФ, образующаяся также при пирофосфатном расщеплении АТФ, фосфорилируется в организме до АДФ при участии аденилаткиназы. Фосфорилирование АДФ, приводящее к синтезу АТФ в живых организмах, происходит при сопряжении этой р-ции с окислит.-восстановит. р-циями. Различают три типа сопряжения в гликолизе (локализован в водной фазе клетки, в цитоплазме), при окислит, фосфо-рилировании и фотофосфорилировании в т. наз. сопрягающих мембранах субклеточных частиц (митохондрий и хлоропластов) и бактерий. [c.34]

Выделение субклеточных частиц Дифференциальное центрифугирование, центрифугирование в градиенте плотности, зональное центрифугирование 9, 10 [c.66]

Известны также внеядерные ДНК, которые входят в состав различных субклеточных частиц — митохондрий и хлоропластов. [c.717]

Том 3 посвящен практическому применению жидкостной колоночной хроматографии для анализа широкого круга соединений, включая как неорганические (изотопы), так и органические вещества, имеющие синтетическое (элемент- и металлорганиче-ские соединения, пестициды, красители, полимеры и некоторые лекарственные препараты) и природное происхождение (ферменты, нуклеиновые кислоты и их компоненты, алкалоиды, антибиотики, витамины, пигменты и гетероциклические соединения). Описана также возможность применения жидкостной хроматографии для фракционирования клеток, вирусов (и фагов) и субклеточных частиц. [c.4]

Начальным этапом в изучении структуры и функции нуклеиновой кислоты является ее выделение из клетки или субклеточных частиц и очистка от различного рода примесей. Заключительный этап — фракционирование для получения препаратов, гомогенных по химическому составу, молекулярному весу и надмолекулярной организации. Естественно, что схема выделения может существенно изменяться в зависимости от природы исходного материала. Подробное описание методик можно найти [c.66]

Внеядерная ДНК (обзоры — см. ° ). Хотя, по цитохимическим данным, основная масса ДНК сосредоточена в клеточном ядре, было показано присутствие ДНК и в других субклеточных частицах Этот цитохимический вывод подтвержден выделением ДНК из митохондрий и хлоропластов. [c.34]

ГЛАВА 50. КЛЕТКИ И СУБКЛЕТОЧНЫЕ ЧАСТИЦЫ [c.309]

Обычно хроматографическое выделение клеток и субклеточных частиц используют с препаративными целями. Некоторые методики напоминают фронтальный анализ, и их можно отнести к хроматографии, в то время как другие приемы выглядят непривычно для специалистов по хроматографии. [c.309]

Тем не менее эти методы могут оказаться полезными при выделении отдельных типов клеток и субклеточных частиц. [c.309]

Клетки и субклеточные частицы [c.311]

Все цитохромы состоят из железопорфирина, связанного с белком. Цитохромы различаются между собой характером замещений в ядре порфирина, белковой частью и типом связи между белком и железосодержащим порфирином. Цитохромы связаны с субклеточными частицами (митохондриями, микросомами и хлоропластами). Наибольшее число данных получено в отношении свойств цитохрома с, который выделяется относительно легко из животных и растений. Остальные цитохромы связаны с субклеточными частицами более прочно, что затрудняет их получение в чистом виде. Кроме упомянутых цитохромов, существует еще ряд других цитохромов, найденных пока только у бактерий. [c.213]

Как указывалось на стр. 194, метильный углеродный атом ацетил-КоА пе превращается в СОг до третьего оборота цикла Кребса. В то же время карбоксильный углерод уксусной кислоты выделяется в виде СОг после завершения второго оборота цикла. Следовательно, если система субклеточных частиц арахиса осуществляет Р-окисление высокомолекулярных жирных кислот до ацетил-КоА, который затем окисляется посредством реакций цикла Кребса, то высокомолекулярные жирные кислоты с нечетным числом углеродных атомов должны скорее превращаться в СОг, чем жирные кислоты с четным числом углеродных атомов. Эти предположения были подтверждены при использовании уксусной кислоты, меченной в карбоксильной и метильной группах, и пальмитиновой кислоты, меченной по С-2 и С-3. [c.308]

Субклеточные частицы из растений и животных катализируют включение аминокислот в полипептиды. Это включение представляет собой присоединение или обмен аминокислот на концах поли- [c.481]

Б. синтезируются в субклеточных частицах — рибосомах, представляющих собой нуклеопротеиды (комплексы рибонуклеиновых к-т и белков). Информация о первичной структуре Б., т. е. о последовательности остатков аминокислот, хранится в соответствующем гене — участке дезоксирибонуклеиновой к-ты (ДНК) [c.125]

Г р и н Д. Е. Структура и функции субклеточных частиц (Пленарная лекция на V Международном биохимическом конгрессе). Изд. АН СССР, 196 . [c.38]

Выделение ДНК из митохондрий основано на тех же методах, которые используются для выделения ДНК из клеточного ядра в этом случае, однако, предварительно выделяют соответствующие субклеточные частицы и перед разрушением обрабатывают их ДНК-азой, что позволяет удалить возможную примесь ядерной ДНК. Исследование физических свойств митохондриальных ДНК, выделенных из разных источников, показывает, что во многих случаях этот вид ДНК отличается от ядерной ДНК по плавучей плотности и температуре плавления и, следовательно, имеет другой нуклеотидный состав. Митохондриальная ДНК имеет мол. вес " около 10-10 и существует в виде двухцепочечного комплекса, который обладает способностью легко ренатурировать. [c.35]

Синтез. Биосинтез Б. происходит в результате трансляции в субклеточных частицах-рибосолшх, представляющих собой сложный рибо-нуклеопротеидный комплекс. Информация о первичной структуре Б. хранится в соответствующих генах-участках ДНК-в виде последовательности нуклеотидоа В процессе транскрипции эта информация с помощью фермента-ДНК-зависимой РНК-полимеразы - передается на матричную рибонуклеиновую к-ту, к-рая, соединяясь с рибосомой, служит матрицей для синтеза Б. Выходящие из рибосомы синтезированные полипептидные цепи, самопроизвольно сворачиваясь, принимают присущую данному Б. конформацию, а также подвергаются модификации благодаря р-циям разл. функциональных групп аминокислотных остатков и расщеплению пептидных связей (см. Модификация белков). [c.253]

ЛИПИДПЕРЕНОСЯЩИЕ БЕ. 1КЙ (липид-обменивающие белки), р-римые внутриклеточные белки, способные переносить липиды и обменивать их между мембранами. Содержатся в малых KO.i-вах в цитоплазме клеток животных, растений, дрожжей и нек-рых бактерий. По субстратной специфичности делятся на моноспецифичные, переносящие липидные молекулы только одного типа, песпецифичные (универсальные), способные переносить и обменивать широкий круг разл. липидов, и белки со смешанной специфичностью, к-рые переносят липиды двух или трех типов, хотя и с разными скоростями. Как правило, Л, б. не проявляют особой избирательности по отношению к к.-л. определенному типу мембран они могут обменивать липиды между мембранами прир. происхождения (целые клетки или субклеточные частицы), искусств, мембранами (напр,, липосомы), а также между мембранами и липо-протеинами плазмы крови. [c.598]

Крахмал. Клетки первичной коры накапливают крахмал и другие вещества. В цитоплазме клеток высших растений заметны крупные гранулы крахмала, достигающие 20-100 мк форма их характерна для данного вида растений. Гранулы крахмала часто бывают связаны с субклеточными частицами, в которых происходит синтез крахмала - хлоропла-стами и амилопластами внутренних частей растений [3, 9]. [c.268]

Электронномикроскопические исследования показывают, что в основе клеточных и внутриклеточных мембран лежит структура единичной мембраны толщиной 75—95 А, состоящая из двух слоев липида и двух слоев нелипидного материала . В настоящее время имеются данные, указывающие на присутствие углеводсодержащих биополимеров во внешнем слое клеточной мембраны . При биохимическом исследовании субклеточных частиц из клеток печени крыс было обнаружено высокое содержание гексозаминов и сиаловых кислот — специфических компонентов смешанных углеводсодержащих биополимеров во фракции гладких микро-сом , возникающих из гладкой эндоплазматической сети . Экспериментально доказано присутствие гликолипидов в клеточной мембране Mi ro o us lysodeikti us и других грамположительных бактерий . [c.600]

Агароидные бисерные гели применяются для гель-фильтрации (см. раздел 64) очень крупных молекул, которые нельзя разделить на сефадексах (однако область применения агароидов частично перекрывает область применения сефадекса G-200). Агароидные гели используются для выделения и разделения протеинов, нуклеопротеидов, нуклеиновых кислот, полисахаридов, вирусов, бактериофагов, субклеточных частиц и т. п. [c.169]

Данная глава посвящена выделению хроматографическими методами интактных клеток и субклеточных частиц. Многие исследователи выделяют вирусы и субклеточные частицы хроматографированием на пористых стеклах, гелях, ионитах для фракционирования клеток чаще всего пользуются пористыми стеклами. Очевидно, наиболее перспективным в этом отношении методом следует считать аффинную хроматографию. Действительно, фракционирование клеток на хроматографических носителях, так называемая хроматография сцепления (adheren e), имеет много общего с аффинной хроматографией. Клетки определенного типа вначале более или менее избирательно сорбируют на носителе, а затем после удаления сопутствующих примесей элюируют подходящим элюентом. Однако на практике вторую стадию часто опускают и проводят элюирование путем экстракции в статических условиях. И наоборот, многие операции, проводимые в статических условиях, можно выполнять на хроматографических колонках. Именно по этой причине чрезвычайно трудно провести четкую границу между строго хроматографическими методами и элюированием в статических условиях. [c.309]

Б. синтезируются в субклеточных частицах — рибосомах, представляющих собой нуклеопрстеиды (комплексы рибонуклеиновых к-т и белков). Информация [c.128]

Агарозные гранулированные гели применяют для выделения и фракционирования очень крупных молекул, в том числе вирусов, бактериофагов, субклеточных частиц (например рибосом), белков, нуклеопротеидов, нуклеиновых кислот, полисахаридов, Ог других мягких гелей агарозы отличает болёе широкие интервалы фракционирования. Агарозы используют также в качестве носителей иоспецифических сррбентов для аффинной хроматографии (см. разд. 120), [c.62]

Биосинтез целлюлозы мало изучен. Данные, полученные в опытах с подкормкой растений, показывают, что наиболее вероятным ее предшественником является глюкоза, которая как таковая включается в молекулу целлюлозы. Препараты субклеточных частиц, полученные из A etoba ter хуИпит, катализируют перенос глюкозы от УДФГ к целлюлозе. Для переноса необходим целло-декстрин (смесь соединенных -1,4-связями глюкозных цепей, содержащих до 30 ее остатков). Выход целлюлозы при этом очень мал [c.165]

Обмен этих глюканов почти не изучен обнаружены лишь ферменты, катализирующие образование и разрыв р-1,3-связей. Препараты субклеточных частиц, полученные из ряда растений, в присутствии соответствующего акцептора катализируют синтез р-1,3-полимера, по-видимому, очень близкого к каллозе, из УДФГ. Глюкоза и ряд глюкозидов, мальтоза, целлобиоза и ламинарибиоза действуют как акцепторы. В процессе этого синтеза происходит обращение конфигурации глюкозы, но акцепторы в полимер не включаются. В растениях найдена также р-глюкозидаза, катализирующая расщепление получающегося полимера. По-видимому, этот фермент подобен ламинариназе водорослей. [c.166]

Связь этих растворимых ферментов с дыхательной цепью не вполне ясна. В последовательном действии переносчиков водорода, рассмотренном на стр. 223, восстановление цитохрома с осуществляется при участии цитохромов 6 и j. Поскольку ни один из описанных выше растворимых ферментов не содержит в заметном количестве цитохрома, следует допустить, что эти растворимые ферменты действуют как-то в обход обычной последовательности реакций в дыхательной цепи. Кроме этих растворимых ферментов, из субклеточных частиц были выделены также НАД-Нг-цитохром-с-редуктаза и сукцинат-цитохром-с-редуктаза. По-видимому, оба эти выделенных из субклеточных частиц препарата являются фрагментами дыхательной цепи, содержащими все переносчики водорода, необходимые для восстановления цитохрома с в дыхательной цепи. Так в субклеточных частицах, содержащих НАД-Нг-цитохром-с-редуктазу и сукцинат-цитохром-с-редуктазу, кроме флавина и негеминового железа, присутствуют цитохромы Ь и j. [c.212]

Известно, что для сопряжения фосфорилирования с переносом водорода необходимы четыре растворимых фактора. Они же оказывают стимулирующее действие на этот процесс. Этими факторами являются Mg+ , РНК, некоторые хиноны и различные белки. Добавление Mg++ необходимо для восстановления фосфорилирования в животных и бактериальных системах, которые предварительно были разделены на окисляющую фракцию, содержащуюся в субклеточных частицах,, и растворимую белковую фракцию. В бактериальных системах, полученных из Al aligenes fae alis, для сопряжения окисляющих НАД-На субклеточных частиц с растворимой фракцией, помимо требуется РНК- Возможное участие в фос- [c.254]

Пинчо [24] получил данные, что выделенный из Л. fae alis, фосфорилирующий комплекс, содержащийся во фракции субклеточных частиц, образует макроэргическое прохмежуточное соединение. При инкубации этого комплекса с НАД-Нг (но не с НАД) освобождается растворимая фракция, которая катализирует синтез АТФ из фосфата и АДФ. Было высказано предположение, что при окислении НАД-Нг образуется макроэргическое соединение, которое отщепляется от комплекса, содержащегося в субклеточных частицах. Добавление АДФ и фосфата к растворимой фракции, содержащей макроэргическое промежуточное соединение, приводит к синтезу АТФ. [c.254]

Допускают, что в летательной мышце насекомых существует цикл глицерин-1-фосфата, который осуществляет перенос водорода от внемитохондриального НАД-Нг к дыхательной цепи. Этот цикл включает сочетанное действие двух а-глицерофосфатдегидрогеназ — растворимой НАД-специфичной и связанной с субклеточными частицами и цитохромами. [c.296]

Кофакторы, необходимые для системы субклеточных частиц арахиса, в основном те же, которые требуются для Р-окисления жирных кислот митохондриями животных и растворимыми ферментными системами, описанными Грином и Линеном. [c.308]

Изучение синтеза ненасыщенных жирных кислот из С1 -сахарозы в бобах сои подтверждает, что сахароза превращается преимущественно в олеиновую кислоту линолевая и лино.леновая же кислоты образуются в результате последующего дегидрирования олеиновой кислоты. Не получено никаких данных о синтезе олеиновой кислоты из стеариновой [22]. Точно так же стеариновая кислота, по-видимому, не участвует в качестве промежуточного продукта в синтезе олеиновой кислоты из уксусной под действием препаратов субклеточных частиц из мезокарпия авокадо. [c.328]

Растительная глутаматдегидрогеназа специфична по отношению как к НАД, так и НАДФ и существует в виде связанного с субклеточными частицами фермента, катализирующего и прямую и обратную реакцию дезаминирования Ь-глутаминовой кислоты (см. Яковлева В. И., К р е т о-в и ч В. Л., Гильманов М. К., Био.химия, 29, 463, 896, 1964).— Прим. ред. [c.406]

Обычно вначале проводят фракционирование по какой-либо схеме, а затем избирают определенные ферменты, активности или какие-либо ееш ества в качестве так называемых маркеров, или индикаторов, которые, судя по опыту, могут быть полезны для идентификации некоторых внутриклеточных частиц или компонентов. На основании полученных результатов вычерчивают кривую распределения и таким образом определяют частицы с точки зрения характерных биохимических активностей или, наоборот, приписывают характерные биохимические свойства различным типам частиц. Распространение этого метода на весь спектр ферментов и других индикаторов позволяет закрепить определенные функции клетки за известными внутриклеточными компонентами и, наоборот, описать и впоследствии идентифицировать новые, или но крайней мере ранее не известные, морфологические компоненты на основании биохимических данных. Примером успешного применения такого подхода является отождествление частиц кислой фосфатазы с лизосомами, а частиц уратоксидазы с микротельцами (называемыми также пероксидосомами) в печени млекопитающих. В основе этого подхода лежат два главных допущения, отмеченных де Дювом 1) каждый из ферментов локализуется только в одном каком-либо месте внутри клетки и 2) популяция субклеточных частиц в ферментативном отношении гомогенна. [c.251]

Для выделения ДНК из хлоропластов используют тот же самый прием, что и при выделении митохондриальной ДНК, — обработку субклеточных частиц ДНК-азой перед их разрушением. В этом случае, однако, не удается добиться полного удаления ядерной ДНК, и ДНК хлоропластов очищают далее равновесным центрифугированием в градиенте плотности s l. Наиболее подробному исследованию подвергалась ДНК из хлоропластов зеленой водоросли Euglena gra ilis она отличается от ДНК ядра по составу оснований и существует в виде двухцепочечного комплекса с мол. весом 10 10 . [c.35]

Изложенный материал показывает, что внутри каждой живой клетки существует несколько типов дезоксирибополинуклеотидов, различающихся по своему составу и свойствам. Биологическая функция всех типов ДНК не выяснена окончательно, хотя, по современным представлениям, она во всех случаях аналогична — обеспечение возможности самовоспроизведения клетки (или субклеточной частицы), хранение и перенос генетической информации [c.35]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология