Петрову определение активности

Мышцы ( 5 г) задних конечностей декапитированного животного помещают в ледяную среду выделения. После охлаждения ткань обсушивают фильтровальной бумагой, переносят в чашку Петри, стоящую на льду, очищают от жира и соединительной ткани, измельчают ножницами. Навеску тканевой кашицы гомогенизируют в стеклянном гомогенизаторе Поттера с тефлоновым пестиком, имеющим нарезку в 6-кратном по отношению к весу ткани объеме среды выделения. Тканевый гомогенат центрифугируют при 15000 д в течение 20 мин. Супернатант после центрифугирования, представляющий собой 14%-нук> растворимую клеточную фракцию, фильтруют через 4 слоя марли и хранят порциями при —5°С в течение 2 нед. Размораживают при комнатной температуре и перед определением активности пируваткиназы разводят средой выделения до конечного разведения 1 200. [c.334]

П.5. ОПРЕДЕЛЕНИЕ АКТИВНОСТИ АНТИБИОТИКОВ МЕТОДОМ ДИФФУЗИИ В АГАР НА ЧАШКАХ ПЕТРИ [c.236]

Аналогичные опыты были проведены с доломитом. Навеску доломита, к которой прибавляли ВаСЬ и RaD определенной активности, растворяли в соляной кислоте. Нерастворимый остаток отфильтровывали, а из фильтрата производили осаждение хромата бария. Хромат бария отфильтровывали, растворяли в азотной кислоте и раствор выпаривали на чашке Петри, а затем осадок промывали. Выход RaD составляет 85—90%. [c.193]

Петров К. П. Рефрактометрический метод определения ферментативной активности зерна, муки и продуктов их переработки,— В сб. Биохимия зерна и хлебопечения. М., Изд-во АН СССР, 1960, с. 283. [c.219]

Э. ц. используют во всех хим. источниках тока. Эдс измеряют при определении коэф. активности электролитов, чисел переноса нонов, произведений растворимости хим. соед., констант равновесия и др. О. Л. Петрий. [c.705]

Каждая чашка Петри содержит девять отрезков и, следовательно, позволяет провести три определения. Если для каждой концентрации цитокинина было взято по 3 чашки, то всего проводят 9 определений. Затем для полученных цифр рассчитывают среднее значение и его ошибку (Лср т). Линейная зависимость между концентрацией цитокинина и содержанием хлорофилла в кусочках листьев ячменя отмечается в пределах, которые зависят от особенностей взятого цитокинина и могут быть различными (рис. 2). Достигнув максимального эффекта, концентрационные кривые выходят на плато, однако при дальнейшем значительном увеличении концентрации может быть достигнуто снижение действия. Следует упомянуть, что при использовании концентраций, значительно более низких, чем стимулирующие, также наблюдается угнетение. Этот не объясненный пока феномен был обнаружен на других показателях кининовой активности [14] и воспроизведен нами при использовании данного теста [15]. [c.70]

Контроль биологической активности антибиотиков и их лекарственных форм проводится общепринятым методом диффузии растворов этих веществ в агар. Сущность его состоит в том, что в чашки Петри, содержащие агаризованную среду, вносят определенное. количество тест-культуры. Для контроля различных [c.29]

В пробирке с исходной культурой готовят споровую взвесь в воде, фильтруют ее и разводят водой, чтобы получить отдельные споры. Затем их высевают на чашки Петри с агаризованной средой определенного состава (стр. 68) и выращивают в течение 7—12 дней при температуре 26—28°. На чашках Петри вырастают отдельные колонии, различные по внешнему виду. Типичные колонии пересевают на косой агар, выращивают в течение 7—12 дней, а затем определяют их продуктивность. Наиболее активные колонии используют для приготовления партий посевного материала. [c.70]

К. П. Петров. Новости пищ. пром., № 5, 14, 1958 (определение протео-литической активности муки, солода и других растительных продуктов). [c.353]

Образование такого комплекса определенным образом фиксирует конформацию реагирующей молекулы, дальнейшее превращение которой приводит к преимущественному получению одного из антиподов продукта реакции. Асимметризующую активность комплекса НЬ с тирозином в гидрогенизации С — 0-связи в ацетоуксусном эфире обнаружили недавно Клабуновский, Хидекель и Петров. [c.427]

Пример использования Fy /F как показателя активности комплексов ФС II для определения k pj показан на рис. 2.2. Высечки листьев брали через определённые промежутки времени после начала освещения, помещали на 3 часа в чашку Петри с влажной фильтровальной бумагой, после чего измеряли . [c.53]

Миграция клеток костного мозга в периферические лимфоидные органы обеспечивает поступление определенных клеточных форм в места активного антителообразования. Известно, что иммунизация животного вызывает усиление процессов миграции (Хаитов, 1975), а клетки костного мозга, полученные от иммунных доноров, оказывают меньший стимулирующий эффект на выработку антител в зрелой иммунной популяции, чем клетки костного мозга интактных животных (Петров, Михайлова, 1974). По-видимому, введение антигена вызывает миграцию из костного мозга в периферические лимфоидные органы тех клеток, которые принимают участие в регуляции антителообразования. [c.200]

Описанная в предыдущем параграфе методика определения активности антибиотиков по схеме латинского квадрата предполагает использование лотков. Возможен и другой способ определения этой активности — по диффузии в агар на чашках Петри. Ниже описан трехдозный вариант этого метода. [c.236]

Культуру тест-микроба Pseudomonas aeruginosa N СТС 2134 выращивают на чашках Петри со средой № 1 в течение 18—20 ч при температуре (36 1)°С, отбирают типичные колонии, пересевают их на мясо-г.ептонный бульон pH от 7,2 до 7,4 и выращивают в вышеуказанных условиях. Полученная культур.а служит посевным материалом для приготовления суточной культуры, используемой при определении активности в каждом конкретном опыте, и может храниться в течение 30 сут при температуре от 4 до 10°С. [c.219]

Количественное определение. Проводят испытание, как описало в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя чашки Петри или прямоугольные лотки, заполненные на глубину 1—2 мм культуральной средой КсЗ с конечным значением pH 6,0—6,2, засеянной Sa haromy es erevlslae (штамм N Y 87 АТСС 9763) в качестве тест-организма с добавлением нистатина в соответствующей концентрации (обычно между 25 и 300 МЕ/ /мл) при температуре инкубации 29—33°С. Готовят растворы испытуемого вещества путем растворения 75 мг его в количестве диметилформамида А, достаточном для получения 50 мл, и разводят 10 мл до 200 мл стерильным фосфатным буфером pH 6,0 ИРЗ. Предохраняют растворы от действия света в течение всего испытания. Точность определения такова, что фидуциальные пределы ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 95 и не более 105% от найденной активности. Верхний фидуциальный предел ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 4400 МЕ нистатина в 1 мг в пересчете на высушенное вещество. [c.260]

Петров К. П. Аппарат Зимограф для определения бродильной активности дрожжей и исследование им активирующего действия янтарной кислоты.— Известия вузов СССР, Пищевая технология , 1962, № 4, с. 157. Петров К. П. Метод комплексного определения водорастворимых легкоокисляющихся сульфгидрильных соединений.— Известия вузов СССР. Пищевая технология , 1976, № 2, с. 142. [c.219]

Для определения ДНКазной активности суточные культуры стафилококков засевают бляшками в чашку Петри с ДНК-содер-жаш,им агаром. [c.106]

В некоторых случаях применяют количественный учет организмов. Для подсчета организмов в активном иле отбирается 1. мл иловой смеси. Для подсчета организмов в биопленке всегда отбирается одинаковое количество загрузочного материала (шлака, щебенки и т, п.), пленка смывается определенным объемом воды, отстаивается в течение 30 мин для замера ее объема, затем размешивается и из смеси берется 1 мл для счета организмов. Счет ведется под микроскопом при малом увеличении, на предметном стекле, покрытом покровным стеклом, или в камере для счета элементов крови. Личинки мух, клещи просчитываются во всем объеме ила (биопленки) в чашке Петри под лупой. [c.56]

Полученный таким образом осадок РЬСг04 ВаСг04, выделенный из доломита после определения его активности, смывался с чашки Петри в платиновую чашку азотной кислотой и при 0,001 н. HNO3 подвергался электролизу. [c.194]

Анализ проводили следующим образом. Растения ячменя выращивали в ящиках с почвой. У растений в возрасте 10—14 дней срезали листья первого яруса. Отступя 2 см от нижнего края листа, отрезали участок длиной в 2 Полученные отрезки раскладывали в чашки Петри на круги фильтровальной бумаги одинакового диаметра й = 10 см), смоченные 3 мл исследуемого раствора. В каждую чашку кладут по девять отрезков. На каждую концентрацию исследуемого вещества следует брать не менее двух чашек. Как и при работе с другими тестами, проверку кининовой активности исследуемого вещества проводят в широком диапазоне его концентраций. Каждый опыт содержит два контроля чашки, к которым добавлено 3 мл дистиллированной воды, и чашки со стандартным раствором заведомо активного кинина. В качестве такого стандартного раствора используют раствор 6-бензиламинопурина в концентрации 2 мг л. Чашки с отрезками листьев ставят в кювету, на дно которой наливают воду. Кювету сверху закрывают стеклом и помещают под люминесцентные лампы при температуре 20—25° или оставляют в комнатных условиях на рассеянном свету. При этом в отрезках листьев на воде неуклонно снижается содержание хлорофилла. Цитокинин предотвращает убыль хлорофилла. Уловимое различие проявляется на третий день. Однако пропорциональность между концентрацией цитокинина и содержанием хлорофилла более четко выявляется на шестой-восьмой день. Обычно берут двойное число всех чашек и определение проводят в два срока (например, на пятый и восьмой день от начала опыта). На рис. 1 показан характер развития реакции листьев на цитокинин во времени. [c.69]

Фунгицидная активность препаратов определялась по способу контактного проращивания спор тест-объекта. С этой целью определенный объем водной суспензии испытуемого препарата в концентрациях 0,00125, 0,005 и 0,02% по токсическому началу наносили пипеткой на предметные стекла, на которых выгравированы кружочки диаметром по 13 мм для предотвращения растекания капель суспензии препарата по поверхности стекла. После подсушивания при комнатной температуре капель, нанесенных на предметные стекла, на сухой осадок препарата наносили тот же объем свежеприготовленной суспензии тест-объекта. Затем предметные стекла помещали во влажные камеры (чашки Петри) и экспозировали в течение 24 час. при температуре 20—22°. Приведенная выше методика, применяемая много лет в токсикологической лаборатории, аналогична методике, описанной в литературе , и отличалась от нее только способом нанесения суспензии препарата на предметные стекла. [c.190]

Тест-культурой служит Вас. зиЫШз 2. Суспензия спор тест-. культуры готовится по стандарту мутности 10, т. е. в 1 лл дистиллированной воды должно быть около 1 млрд. спор. Определенное количество приготовленной взвеси спор вносят в расплавленный и охлажденный до 65° агар. 3"асеянную среду тщательно перемешивают и разливают по Ъ мл в стерильные чашки Петри, установленные строго в горизонтальном положении. После застывания агара на чашках в нем проделывают по кругу 6 лунок на определенном расстоянии друг от друга. Для определения биологической активности оксистетрациклина в качестве стандарта применяют сухой кристаллический препарат хлоргидрата окситетрациклина с известной активностью. Биологическую активность измеряют в единицах действия (ЕД). [c.144]

Известен метод изучения фунгицидной активности летучих веществ. Поверхность агаровой пластинки инфицируют одним из приведенных выше способов, после чего чашки nepeeepTbiBarot и на их крышки помещают определенную навеску препарата. В перевернутом состоянии чашки Петри помещают в оптимальные условия для развития гриба. Учет проводят, когда в контрольной чашке обнаружат заметный рост гриба. Фумигационное действие препарата характеризует величина минимальной концентрации, вызывающей полное подавление роста гриба. Эта концентрация выражается в мг/см . [c.170]

Если не учинывать влияния адсорбции гербицидов, то важнейшим фактором, определяющим их активность, можно считать растворимость в воде. Растворимость до 1 мг/л рассматривается как очень низкая, в пределах 1—10 мг/л — как низкая, слабая — в интервале 10—100 мг/л, средняя — в пределах 100—1000 мг/л и хорошая или очень хорошая — если она превышает 1000 мг/л (естественно, возможны и другие градации). Гербицид проявляет биологическую активность лишь при условии, что он присутствует в определенной эффективной концентрации и может перемещаться в почве, т. е. достигает семян или корней растений. Эффективные концентрации гербицидов, подавляющих прорастание семян, определяют в чашках Петри, концентрации других типов гербицидов—путем добавления соответствующих доз препаратов в питательные растворы. Для -большинства гербицидов величины этих концентраций известны. [c.113]

Для определения поверхностно активных свойств диалкил-бензолсульфонатов А. Д. Петров, Г. И. Никишин и В. Д. Воробьев синтезировали ряд индивидуальных иа/ а-диалкилбен-золов. [c.124]

Определять антибиотическую активность методом серийных разведений можно и на чашках Петри. В пробирки, содержащие по 9 мл расплавленного питательного агара, вносят по 1 мл изучаемого антибиотика определенного разведения или культуральной жидкости. После тщательного перемешивания содержимое пробирки выливают в чашку Петри и дают агару застыть. Затем по поверхности пластинки штрихами делают посев тест-организ-мов. Чашки выдерживают в термостате при оптимальной для используемых тест-организмов температуре в течение 20-21 ч. [c.170]

Липолитическая активность. Липиды подвергаются гидролитическому разложению под действием липаз. Продуценты липаз обнаружены среди дрожжей, мицелиальных грибов, бактерий рода lostridium и других микроорганизмов. Для выявления липолити-ческой активности исследуемые микроорганизмы высевают на среду, содержащую соответствующий липид. Определенная трудность при постановке таких опытов связана с тем, что жиры не смешиваются с водой. Поэтому чаще всего вместо жиров в среду вводят твины — эфиры жирных кислот и сорбита. Твин-40 содержит пальмитиновую, твин-60 — стеариновую, а твин-80 — олеиновую кислоты. Твины хорошо растворимы в воде и имеют нейтральную реакцию. Состав среды (г/л) твин — 10,0 пептон — 10,0 Na l — 5,0 СаСЬ-Н О — 0,1 агар — 20,0 pH среды 7,4. Готовят среду без твина и стерилизуют ее при 1 ати. Водный раствор твина соответствующей концентрации стерилизуют отдельно при 0,5 ати и добавляют к стерильной основной среде. Среду разливают в чашки Петри. Когда агар застывает, на поверхность агаровой пластинки высевают штрихом или уколом исследуемый микроорганизм. Засеянные чашки Петри выдерживают при соответствующей температуре необходимое для роста микроорганизма время. На наличие липазы указывает образование вокруг штриха или колонии непрозрачной зоны кальциевых солей жирных кислот, освобожденных из твина. [c.167]

АРМ физико-биохимических анализов, состоящее из набора автоматизированных измерительных модулей с микропроцессорными контроллерами, — для морфометрического анализа, измерения активности антибиотиков, анализов реплик колоний на чашках Петри и состава культуральных сред с помощью газовой и жидкостной хроматографии, непрерывного измерения оптической плотности суспензий, определения дыхательной активности микроогранизмов методом замедленной флуоресценции, биохимических анализов с помощью хемилюминометра [c.106]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология