Листья содержание аминокислот

В растения ТХА проникает через корни и перемещается в стебли, листья и точки роста с транспирационным током. В чувствительных к ТХА растениях наблюдаются после обработки скручивание листьев и стеблей, нарушение роста отдельных органов, прекращается образование воска на листьях. В растениях изменяются процессы дыхания и фотосинтеза, поступление питательных веществ, увеличивается содержание аминокислот и нарушается азотный обмен. [c.369]

Гербицидная активность этих веществ, как и других. хлор-замещенных алифатических кислот, обусловлена вызываемыми ими нарушениями обмена веществ у обработанных растений. При обработке растений происходит задержка передвижения крахмала и сахаров из корневой системы и белковых веществ из листьев изменяется также содержание аминокислот. Нарушение обмена веществ, по-видимому, является следствием подавления дыхания при снижении активности соответствующих ферментов. [c.259]

В процессе индивидуального развития содержание аминокислот белка, так же как и свободных аминокислот, значительно изменяется (см. рис. 2, б). Так, в листьях и стеблях количество аминокислот у всех изучаемых видов снижается от начальных фаз развития к конечным, в репродуктивных органах уменьшение идет от бутонов к цветкам. С момента появления плодов до их созревания наблюдается увеличение содержания аминокислот бел- [c.58]

Содержание аминокислот белка в листьях копеечника родственного — [c.65]

В настоящее время установлено, что органические кислоты образуются в процессе дыхания растений и представляют собой продукты неполного окисления сахаров. Имеются весьма убедительные данные, свидетельствующие о том, что источником образования органических кислот у высших растений являются сахара. Вместе с тем органические кислоты - исходный строительный материал для синтеза самых различных соединений углеводов, аминокислот, жиров. Кроме того, в растении отдельные органические кислоты могут легко превращаться друг в друга. Например, при сушке табачных листьев содержание в них яблочной кислоты значительно уменьшается, а лимонной возрастает. Обратное превращение лимонной кислоты в яблочную наблюдается в клубнях картофеля. [c.83]

РАСТИТЕЛЬНЫЕ БЕЛКИ Содержание основных аминокислот в белках листьев [c.97]

РАСТИТЕЛЬНЫЕ БЕ ТК[1 Содержание ароматических аминокислот в белках листьев Высчитано на 1б,0>п азота [c.176]

Белки трав и листьев. В отличие от больших колебаний в содержании цистина и метионина у автотрофных организмов, содержание этих аминокислот в белках всех до сих пор исследованных трав и листьев очень однородно. [c.257]

Изменчивость химического состава семян в период созревания зернобобовых культур можно рассмотреть на примере гороха. Основными процессами в созревающем зерне бобовых являются синтез белков и поступающих в зерно аминокислот и синтез крахмала и сахаров, а также образование клетчатки и жира. Вскоре после цветения в семенах гороха образуется много сахаров и азота (до 5% на вес сухой массы), но сравнительно мало крахмала. Через 18—24 дня после цветения, вследствие интенсивного оттока сахаров из листьев, количество сахаров в зерне увеличивается еще больше и достигает 33—35%, а так как интенсивность синтеза крахмала в этот период еще сравнительно невысока, то относительное содержание крахмала снижается. Сахароза является основным сахаром, который накапливается в семенах. [c.394]

После формирования отделительного слоя относительное содержание всех форм азота и свободных аминокислот резко снижается. По-видимому, в этот период, когда связь между листом и стеблем нарушена и осуществляется только через сосудисто-волокнистые пучки, происходит быстрый отток соединений азота из листьев. [c.145]

Описанная выше методика применялась для анализа свободных дикарбоновых аминокислот в корнях свеклы, проростках пшеницы и люпина, молодых листьях фасоли и ивы. Ввиду значительного содержания в растениях аспарагина и глютамина, исследовалось поведение этих амидов в колонке анионообменной окиси алюминия. При этом было установлено, что аспарагин и глютамин совершенно не адсорбируются окисью алюминия н полностью уходят из колонки с промывными водами. [c.124]

Различные органы растений заметно отличаются по содержанию свободных аминокислот и аминокислот белка. Больше всего свободных аминокислот обнаружено на всех фазах развития копеечников в репродуктивных органах (бутонах, цветках, плодах), немного меньше — в листьях и стеблях. Максимальное накопление аминокислот белка происходит в листьях, несколько меньше их накапливается в стеблях, бутонах и цветках. Незрелые и зрелые плоды содержат значительное количество аминокислот белка, превышающее содержание этих соединений в листьях в соответствующий период развития (рис. 2). [c.55]

Обнаружено, что листья, стебли и репродуктивные органы (бутоны, цветки, плоды) копеечников значительно различаются по количеству общего, белкового и небелкового азота, свободных аминокислот и аминокислот белка. Содержание небелкового азота и свободных аминокислот выше в бутонах, цветках и плодах, несколько ниже в листьях и стеблях максимальное количество белкового азота и аминокислот белка накапливается в листьях, немного меньше в бутонах, цветках и стеблях. Плоды содержат повышенное количество этих соединений по сравнению с листьями и стеблями в соответствующий период развития. [c.59]

Ход работы. Приготовить стандартные растворы аминокислот (10 мг аминокислоты в 1 мл). Некоторые аминокислоты (тирозин, аспарагиновая кислота) в воде растворяются пло-хо, поэтому в растворитель добавить по нескольку капель НС1. На листы или полосы (ширина 15—20 см) хроматографической бумаги на расстоянии 2,5—3 с.ч нанести микропипеткой такое количество раствора каждой аминокислоты, чтобы содержание аминокислот в местах нанесения было не менее 15—20 мкг, а для триптофана, гистидина, тирозина, лизина и пролина не менее 20—30. чкг. [c.172]

Через несколько часов, когда можно ожидать разделения аминокислот, бумагу вынимают из ванночки и растворитель удаляют высуи иванием. После этого для лучшего разделения аминокислот лист бумаги поворачивают на 90° и снова помещают в ванночку и по бумаге пропускают другой растворитель. После вторичного пропускания растворителя бумагу обрабатывают каким-либо реактивом, дающим окрашивание при взаимодействии с аминокислотами, чаще всего нингидрином или изатином. На бумаге появляются окрашенные пятна, соответствующие отдельным аминокислотам. По месту положения пятен и интенсивности их окраски судят о наличии и содержании в гидролизате белка тех или иных аминокислот. Фотография хроматограммы показана на рисунке 21. Метод распределительной хроматографии на бумаге позволяет быстро и точно определить содержание аминокислот. В последние годы хроматографические методы успешно применяются для разделения и определения сахаров, органических кислот и ряда других соединений. [c.218]

Определения аминокислот белков показали, что отдельные белки резко различаются по составу аминокислот. В некоторых белках отдельные аминокислоты могут отсутствовать или находиться в ничтожном количестве, а других может быть очень много. Например, зеин семян кукурузы не содержит лизина и триптофана, в то же время в нем много глутаминовой кислоты, лейцина, пролина и аланина. В глиадине пшеницы количество глутаминовой кислоты и амидов достигает почти половины общего содержания аминокислот в белке, в белках клубней картофеля много лизина, а в белках листьев ячменя очень мало цистина и т. д. [c.218]

ЛИСТЬЯ. Содержание органически связанной серы колеблется от 0,06% в хвое до 0,7% в листьях некоторых крестоцветных. НеЙ1ральная сера в органических соединениях входит в состав сульфгидрильных, дисульфидных и сульфо-групп или гетероциклических ядер. SH-форма серы имеет большое значение в процессах синтеза незаменимых аминокислот цистеина и метионина. Путем окисления сульфгидрильные соединения преврашаются в соединения, содержащие сульфид. Редокс-система ци-стеин — цистин и трипептид глутатион участвуют в образовании третичной структуры белков. Активность многих ферментов также зависит от присутствия высокореактивной SH-группы, как, например, кофермента А. Физиологически важная дисульфидная связь липоевой кислоты принимает участие в расщеплении пировино-градной кислоты и биосинтезе ацетил-КоА. [c.109]

При изучении количества аминокислот в листьях растений, произрастающих в разных местообитаниях хр. Чихачева, было обнаружено, что содержание аминокислот выше у экземпляров, [c.63]

Место произрастания вида в значительной степени сказывается на содержании аминокислот не только в листьях, но в стеблях и цветках. Так, стебли копеечника, собранные в разных условиях произрастания, отличаются по количеству свободных аминокислот и аминокислот белка. При этом выявлены те же особенности, что и в листьях этого вида наивысшее содержание свободных аминокислот отмечено в стеблях растений, собранных в лиственничном мохово-разнотравном лесу (2350м),несколько меньшее количество — в стеблях, собранных в высокогорно-тундровом поясе на альпийской лужайке (2600 м), наименьшее — в стеблях, собранных в луговой кобрезиевой тундре (2700 м) (табл. 3, 4). [c.65]

В процессе вегетации содержание аминокислот белка листьев снижается от фазы бутонизации к фазе плодоношения, особенно сильное уменьшение наблюдается от фазы цветения до фазы созревания. Такая закономерность наблюдается как в изменении содержания суммы аминокислот, так и количества аспарагиновой кислоты, глицина, глутаминовой кислоты, аланина, пролина, тирозина, лейцинов (табл. 7). [c.75]

Содержание аминокислот, входящих в состав белка, в листьях и цветках видов рода остролодочник — интродуцируемых в ЦСБС СО АН СССР, мг/г абсолютно сухого вещества [c.77]

Содержание аминокислот в листьях видов рода астрагал — Astragalus L. в зависимости от условий произрастания, мг/г абсолютно сухого вещества [c.90]

Таким образом, некоторые данные подтверждают гипотезу ю том, что уменьшение содерлеания белка в прикрепленных ста-реюплих листьях связано в основном с ограниченным содержанием аминокислот, а ие с понижением способности к синтезу белка, ио эти данные не бесспорны. Кроме того, известно, что, когда у растения удаляют молодые листья, оставшиеся более [c.427]

В таблицах 6В.11 и 6В.12 представлен аминокислотный состав фермента рибулозобисфосфаткарбоксилазы (РБФК) и белых или зеленых белков листьев люцерны. Автором этой главы подсчитана разница в содержании каждой аминокислоты между РБФК, белыми и зелеными белками принимали лишь различия, равные или больше 10 %. [c.249]

Б. Известное количество изучаецрй ДНФ-фракции хроматографируют на бумаге в условиях, необходимых для данного ДНФ-производного. Пробы контрольного препарата, содержащие различное количество вещества, хроматографируют на том же листе бумаги. По окончании хроматографии пятна ДНФ-аминокислот вырезают вместе с контрольными, бумагу измельчают на мелкие кусочки и помещают в пробирки. В каждую пробирку наливают по 5 мл 1 %-ного раствора NaH XDa и в течение 30 мин при периодическом встряхивании в темноте производят элюирование проб. Экстинкцию растворов при 360 нм измеряют в спектрофотометре. Содержание ДНФ-аминокислот в исследуемой фракции определяют по калибровочной кривой, построенной для контрольных образцов. [c.272]

Примечания. Тип бумаги Ц — целлюлозная (см. разд. 122), С — стекловолокнистая (см. разд. 125). 1—4. Стекловолокнистая бумага приготовлена без добавок свяаующего, отличается высокой скоростью движения растворителя и допускает проявление хроматограмм с помощью серной кислоты при нагревании до 200—300 °С. Бумага № 1 — с небольшим содержанием сорбента, рекомендована для хроматографии липидов и других неполярных соединений. Содержание сорбента в бумагах № 2—4 значительно больше, причем в направлении к одному краю листа pH немного возрастает. Рекомендованы для разделения полярных веществ сахаров, аминокислот, витаминов. Сорт бумаги № 4 предназначен для идентификации наркотиков. 6. Для препаративных работ. 8.9. Время капиллярного поднятия воды на 75 мм —22 и 15 мин (№ 8 и 9), бензола на 115 им — 30 мин. Средний диаметр пор силикагеля 11 нм. 11, 12. Бумаги соответственно аналитического и технического сортов. [c.247]

Аналогичные данные были получены и в других исследованиях, где определялись изменения величины отношения углерода к азоту. Например, в опытах X. Бурстрема (1943 г.) было показано, что <ъ молодых листьях пшеницы количественное отношение С N было равно 4,6, а в более старых листьях оно составляло 17,6. Одновременно с ростом листьев относительное содержание в них белкового азота в процентах от общего азота понижалось. Было замечено также, что с возрастом листьев меняется и природа синтезируемых белков в молодых листьях синтезируется большое количество нуклеопротеидов с большим содержанием основных аминокислот, а при старении листьев образуются качественно иные белки. [c.287]

В разных видах растений в свободном состоянии можно найти до 100 различных аминокислот. Содержание свободных аминокислот в растениях не остается постоянным, а подвергается заметным изменениям в зависимости от внешних факторов, общего состояния растения и от направленности в нем процессов обмена веществ. В ряде экспериментов показано, что аминокислотный состав листьев и других органов, а также абсолютное и относительное содержание отдельных аминокислот могут существенно изменяться в зависимости от возраста растений, температурного и светового режйма, а также от условий питания. Повышение общего содержания свободных аминокислот в растениях и накопление ненормально высокого количества отдельных аминокислот наблюдалось при недостаточном питании растений калием, серой, кальцием, магнием, некоторыми микроэлементами (цинком, медью, марганцем, железом). В отличие от влияния других элементов недостаток молибдена приводит к снижению количества аминокислот и амидов в вегетативных органах растений. [c.37]

На основании этих данных можно предположить, что отток аминокислот из листовых пластинок хлопчатника, обработанного бутифосом, происходит быстрее, чем из растений, дефолиированных хлоратом магния. Этот вывод согласуется с результатами исследований А. Имамалиева (1966), который показал, что мягкодействующие дефолианты — бутифос, фолекс, бутилкаптакс и цианамид кальция — способствуют лучшему оттоку пластических веществ из листа, по сравнению с хлоратом магния, который является дефолиантом жесткого действия. Различия между бутифосом и хлоратом магния проявились также в действии на а-аминомасляную кислоту. В варианте с хлоратом магния относительное содержание этой аминокислоты на вторые — третьи сутки было более чем в 2 раза выше, чем в необработанных растениях. В варианте с бутифосом небольшое увеличение (39%) наблюдалось лишь через 48 ч после обработки. Установлено, что накопление у-аминомасляной кислоты в растениях происходит по мере их старения (Хавкин, 1964). Предполагают, что это явление связано с замедлением и прекращением ростовых процессов и прежде всего с торможением или прекращением новообразования белка. Поэтому есть основания полагать, что в различном действии бутифоса и хлората магния на у-аминомасляную кислоту находят отражение существенные различия в механизме действия этих двух дефолиантов. [c.141]

Полученные данные отличались от предполагаемых. На основании этих данных нельзя объяснить избирательности накопления одних аминокислот без существенного изменения в содержании других, но вместе с тем они не отрицают того факта, что накопление свободных аминокислот происходит за счет гидролиза белка. По-видимому, в процессе гидролиза освобождаются все аминокислоты, но накапливаются лишь те из них, которые с трудом окисляются, остальные быстро превращаются в цикле Кребса. Такое предположение было высказано (Plaisted, 1958) для объяснения избирательного накопления аминокислот в стареющих листьях клена. Очевидно, оно приемлемо и в данном случае. [c.145]

Азот — один из основных биогенных элементов, он входит в состав белка и этжм определяется его большая роль в жизни всех организмов. Большая часть А., содержащегося в животном или растительном организме, представлена белковыми веществами. Содержание А. в отдельных белках колеблется от 15 до 19%. А. входит в состав таких жизненно важных веществ, как нуклеиновые кислоты, аминокислоты, хлорофилл, ферменты, гормоны, витамины. Общее содержание А. в листьях растений составляет 3—4% на сухой вес, в семенах злаков — 1,5—3, в семенах бобовых — до [c.15]

ФЕРМЕНТАЦИЯ. Биохимический процесс превращения веществ при переработке растительного и животного сырья. При Ф. главным образом формируются специфические свойства того или иного продукта, его вкус, цвет, аромат и др. Поэтому в пищевой, легкой и фармацевтической промышленности Ф.— основной технологический процесс. Примерами в этом отношении являются чайная, табачная, хлебопекарная отрасли промышленности. Предполагали, что Ф.—микробиологический процесс. Но в настоящее время благодаря исследованиям советских ученых окончательно установлен ферментативный характер этих превращений. Главную ро.иь в этом процессе играют ферменты, как ускорители процессов превращения веществ. Для нормального течения Ф. необходимо прежде всего разрушение тканей и клеток растительного и животного сырья, например помол зерна в мукомольно-хлебопекарном производстве, раздавливание виноградной ягоды в виноделии, томление и сушка табачного листа, скручивание завяленного чайного листа и т. д. Для нормального течения Ф. требуется также создание определенных условий — температура, относительная влажность воздуха и др. Чайный лист после завяливания подвергается скручиванию на специальных машинах — роллерах, где происходит разрушение тканей и клеток листа, содержимое которых подвергается биохимическим изменениям с участием ферментов. Листья чая содержат сложную смесь катехинов, которые при Ф. претерпевают окислительную конденсацию с образованием более сложных соединений. Катехины взаимодействуют не только между собой, но и с разными аминокислотами, образуя соединения, обладающие разными запахами, с сахарами, белками и другими соединениями. В результате сложных превращений при Ф. образуются цвет, вкус, аромат черного байхового чая. Ф. табака — автолитический процесс, происходящий в убитых тканях листьев после их томления и сушки. При этохм окончательно формируются характерные признаки качества табака, как сырья для получения табачных изделий. Изменяется химический состав табака, уменьшается содержание белкового азота и идет накопление растворимых азотистых соединений, ул1еньшается содержание никотина, идет распад углеводов, накопление ароматических со- [c.317]

Наряду с этим содержание свободных аминокислот и ами-нокислот входящих в состав белка, у видов рода копеечник значительно различается. Наибольшее количество свободных аминокислот характерно для копеечника забытого в листьях содержится до 16,6 мг/г абсолютно сухого вещества растения, в стеблях — до 14,8 мг/г, в репродуктивных органах (бутонах) — до 21,4 мг/г. У копеечника Гмелина несколько меньше свободных аминокислот соответственно по органам 14,7 13,0 16,0 мг/г. Копеечник родственный и к. южносибирский имеют почти равные количества свободных аминокислот к. родственный—13,6 10,6 14,4 мг/г, к. южносибирский—13,8 11,5 14,3 мг/г. Наименьшее содержание свободных аминокислот было выявлено у копеечника ферганского 10,9 10 6 12,5 мг/г. Из аминокислот белка наиболее высокие показатели обнаружены у копеечника забытого в листьях — до 278 мг/г абсолютно сухого вещества растения, в стеблях — до 207 мг/г, в репродуктивных органах (зрелые плоды)—до 208 мг/г. Немного меньшее количество аминокислот белка нами было обнаружено у копеечника родственного (225 192 168 мг/г соответственно по органам), к. ферганского (217 177 202 мг/г), к. южносибирского (208 190 158 мг/г), к. Гмелина (204 144 200 мг/г). [c.55]

Характер накопления некоторых аминокислот выпадает из общей закономерности. Так, содержание аспарагина возрастает от начала к концу вегетации, лишь незначительно уменьшаясь в некоторых органах у отдельных видов в листьях в фазу бутонизации у копеечника родственного и к. южносибирского, в фазу плодоношения у к. Гмелина и к. родственного, в репродуктивных органах в фазу плодоношения у к. родственного (рис. 3). Количество глутамина возрастает в листьях копеечника родственного, к, ферганского до конца вегетации, у к. забытого — до фазы цветения. В стеблях всех видов количество глутамина увеличивается до конца вегетации. В репродуктивных органах возрастание до конца вегетационного периода отмечено только у копеечника Гмелина (рис. 4). Содержание глицина в процессе вегетации повышается в листьях копеечника ферганского, в репродуктивных органах —к. Гмелина (рис. 5). По-видимому, это связано с видовыми особенностями растений и участием этих аминокислот в общем обмене веществ. [c.57]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология