Соотношение хлоропластов

Н -АТФазы бактерий и хлоропластов имеют близкую структурную организацию F состоит из 5 типов субъединиц, обозначаемых а. (1 Y порядке уменьшения их молекулярной массы, а Р, из трех — а, Ь, с. До сих пор нет общепринятого мнения о стехиометрии субъединиц Р. Р.-комплекса, однако для бактериальных ферментов большинство данных свидетельствует в пользу соотношений для F и aib> h к для Рп. [c.620]

Пигменты хлоропластов относятся к двум основным группам — хлорофиллам и каротиноидам (каротины и ксантофиллы). В нормальных зеленых листьях хлорофилла много больше, чем каротиноидов их соотношение иногда достигает 5 1. [c.257]

Содержащиеся в хлоропластах липиды находятся в связанном и свободном состоянии. Соотношение между обеими фракциями непостоянно по мере старения организма возрастает содержание свободных липидов. Хлоропласты способны осуществлять окисление как ненасыщенных, так и насыщенных жирных кислот. [c.106]

Рассмотренные выще материалы свидетельствуют об альтернативности путей, которыми в зеленой клетке осуществляются процессы запасания энергии света в акте фосфорилирования. В зависимости от интенсивности и качества света, а также от природы содержащихся в хлоропластах кофакторов соотношения между отдельными типами фосфорилирования могут сильно варьировать. Природой кофакторов и акцепторов электронов в значительной степени определяются также различия путей циклического и нециклического потока электронов. [c.161]

В основе этого замечательного эффекта лежит стимулирующее действие, оказываемое кининами на нуклеиновый обмен. Кинины активируют процессы новообразования ДНК и РНК, они благоприятствуют процессам восстановления размеров и нормальной внутренней структуры ядерного аппарата, митохондрий и хлоропластов, нарушенной в результате отделения листьев от материнского растения. Восстанавливают кинины и количество рибосом, резко снижающееся у срезанных листьев. Регулирование процессов синтеза нуклеиновых кислот представляет собой первичный механизм действия цитокининов на метаболизм обработанных ими тканей. Весь сложный комплекс других сторон влияния кининов должен рассматриваться как следствие этого первичного эффекта. Аналогично ауксинам и гиббереллинам, цитокинины также являются эндогенными стимуляторами, в связи с чем их влияние проявляется в особенности четко при нарушении нормальных соотношений между отдельными органами растения, нарушении условий питания и других видах аномального состояния. [c.569]

Фикобилины, на долю которых приходится у некоторых водорослей до 60% всего белка, образуют достаточно эффективную светособирающую систему, хотя передача энергии между этими пигментами происходит все же не столь эффективно, как в хлоропластах высших растений. Есть водоросли, у которых соотношение различных фикобилинов меняется в зависимости от спектрального состава света. Такие водоросли при освещении светом разных длин волн меняют свою окраску. Это явление получило название хроматической адаптации. Если, например, выращивать такие водоросли на красном свету, то у них будет преобладать фикоцианин, если же освещать их зеленым светом, то главное место займет фикоэритрин. Подобная приспособляемость позволяет водорослям, растущим на разной глубине, поглощать достаточно света, необходимого для фотосинтеза, хотя свет с увеличением глубины меняет свой спектральный состав, так как часть его энергии при прохождении через слой воды поглощается или же рассеивается молекулами воды или взвешенными в воде частицами. Не все водоросли обладают способностью к хроматической адаптации. Некоторые из них выживают на разной глубине благодаря тому, что с увеличением глубины они синтезируют больше пигмента. [c.117]

ДНК, не влияя при этом на репликацию ДНК в ядре. Этот эффект сходен с описанным выше действием этидиумбромида на митохондриальную ДНК- Вместе с тем клетки hlamydomonas, обработанные эти-диумбромидом, способны в дальнейшем восстанавливать содержание ДНК в хлоропластах. При интерпретации этих данных было высказана предположение о существовании исходных копий хлоропластной ДНК в специально защищенных участках. При такой интерпретации необходимо учитывать также данные, свидетельствующие о том, что, хотя репликация ДНК в ядре и в других органеллах происходит в разные периоды клеточного цикла, соотношение между содержанием ДНК в ядре и органеллах поддерживается на постоянном уровне. Должен, по-видимому, существовать какой-то регуляторный механизм, обусловливающий сопряжение процессов репликации ДНК в ядре, митохондриях и хлоропластах [184]. [c.271]

Пигменты зеленых частей растений, содержащиеся в хлоропластах наряду с каротино-идами (в соотношении 3 1),-сине-зеленый хлорофилл а (XVI R = = Hj) и желто-зеленый хлорофилл 6 (XVI R = СНО), играющие важную роль в процессах фотосинтеза (см. Хлорофиллы). Кроме [c.491]

Масса ДНК гаплоидных геномов хлоропластов или митохондрий приблизительно в 10 000 раз меньше, чем масса ДНК ядер. Генетическая информация, содержащаяся в этих органел-лах, находится в тех же соотношениях. [c.237]

Мембраны хлоропластов состоят на 50—60 % из белков и приблизительно на 40% из липидов (табл. 6В.6). Эти липиды преимущественно представляют собой глицеролипиды (по структуре см. главу 8 и работу [20]), но к ним относятся и пигменты. Соотношение масс хлорофиллов и белков составляет 0,25. Основным каротиноидом является лютенин. [c.239]

Влияние неравномерности светового поглощения. Влияние неравномерности освещения и поступления реагентов, участвующих в процессе фотосинтеза, обсуждалось в общих чертах в гл. XXVI. В гл. XXVII при обсуждении кривых зависимости скорости фотосинтеза от концентрации двуокиси углерода мы отметили, что на ход этих кривых сильно влияет градиент концентрации, который создается, в особенности при интенсивном фотосинтезе, между внешней средой и слоем, непосредственно прилегающим к поверхности хлоропластов. Подобным же образом соотношение между величиной светового поглощения и выходом фотосинтеза может быть представлено на световых кривых в сильно искаженном виде вследствие того, что между сильно освещенными и затененными молекулами хлорофилла часто может существовать значительный градиент световой интенсивности. Даже в пределах единичного хлоропласта поглощение света на освещенной стороне может быть в 5—10 раз больше, чем на затененной если же освещение является диффузным, то погло- [c.436]

Следует сразу сделать одно замечание, ограничивающее практическую применимость аналитических выражений, выведенных в данном разделе. Кинетические уравнения основываются на законе действующих масс и предполагают гомогенность реагирующей системы. Интенсивность света, /, однако, неравномерна по всей толще листа или клеточной суспензии она колеблется даже в пределах одной клетки или отдельного хлоропласта. Об этом осложнении многократно упоминалось выше, и мы еще вернемся к этому в настоящей главе. Пока же мы будем вести рассуждения так, как если бы поглощение света являлось равномерным по всей рассматриваемой области. Это значит, что наши уравнения будут строго верны только для оптически тонких слоев. Поэтому в этих уравнениях под / следует понимать световой поток, фактически достигающий хлорофиллового слоя, а не световой поток, падающий на внешнюю поверхность системы. Эти два потока пропорциональны друг другу, но коэффициент пропорциональности изменяется с изменением глубины, а также длины волны падающего света. Практически большинство, если не все, кинетические измерения были сделаны не с оптически тонкими пигментными слоями, а с листьями, слоевищами или суспензиями, поглощающими ббльшую часть (иногда до 100°/о) падающего света. Ниже мы рассмотрим, насколько сильно изменяются кинетические соотношения, выведенные для оптически тонких слоев, из-за интегрирования вдоль пути, проходимого светом в системе, а также из-за неравномерности поглощения различных составных частей немонохроматического света. Вопрос осложняется, кроме того, структурными эффектами, разобранными в гл. ХХП (рассеяние и эффект проскока ). Еще одно осложнение возникает при изучении клеточных суспензий, сильно перемешиваемых во время измерений. Это перемешивание приводит к тому, что индивидуальные клетки более или менее периодически попадают в световые поля различной интенсивности. Если бы перемешивание было настолько интенсивным, что каждая клетка проходила бы все варианты световых полей за время, достаточно короткое по сравнению с периодом Эмерсона—Арнольда (около 10 2 сек. при комнатной температуре см. гл. XXXIV), то было бы возможно принимать во внимание только среднее освещение и считать его одинаковым для всех клеток. Другими словами, поглощение света каждой клеткой могло бы считаться равным общему поглощению всей суспензии, деленному на число имеющихся в ней клеток. Никакое перемешивание, однако, не может подействовать на содержимое хлоропластов, поэтому молекулы хлорофилла, расположенные глубже, всегда будут получать меньше света, чем молекулы, находящиеся на освещенной поверхности. Еще более важным является то обстоятельство, что степень перемешивания обычно совершенно недостаточна, чтобы узаконить расчет [c.451]

Собственно образование АТФ в процессе, сопряженном с индуцированным светом транспортом электрона, происходит в итоге темновых реакций. Наибольшее число сведений о фотофосфорили-ровании получено для изолированных хлоропластов. Изучать эти реакции in vivo очень трудно, особенно если пытаться дифференцировать циклическое и нециклическое фосфорилирование. Для хлореллы установлено по косвенным данным, что вклад циклического фосфорилирования в суммарный баланс синтеза АТФ составляет 70%, нециклического — 30%. Возможно, состояние НАДФ определяет соотношение между этими путями фосфорилирования. [c.33]

В квантосомах ликаишзованы все пигменты хлоропластов. Соотношение пигментов и хинонов примерно такое же, как в хлоро- [c.103]

Эффективность процесса фотосинтеза в г1елом, по вышеизложенной концепции, определяется эффективностью параллельно осуществляемых в хлоропластах фотореакций и обоих путей транспорта электрона, а не соотношением скоростей двух последовательных фото-реакций при нециклическом переносе электрона в фотосинтезе, как ато принято в настоящее время большинством исследователей и трактовалось в более ранних работах Арнона. Ослаблере интенсив- [c.214]

Некоторыми работами показано, что восстановление СО2 на свету изолированными хлоропластами до уровня фосфатов сахаров требует определенных соотношений между циклическим и нециклическим фотофосфорилированием. В нециклическом пути транспорта электрона НАДФ Н2 и АТФ образуются в эквимолекулярных количеетвах. [c.220]

Нет сомнений, что сейчас только начинает познаваться исключительно важная и сложная роль углеводов. Это подтверждается тем, что все время получаются все новые и новые сведения о, казалось бы, неожиданных функциях, свойственных углеводам или содержащим их смешанным биополимерам. Например, некоторые гликолипиды в хлоропластах играют роль в освобождении кислорода при фотосинтетическом процессе. Другие гликолипиды—танглиозиды играют важную роль В проведении нервных HMinyvib oB. Определенное соотношение фракций ганглиозидов мозга, очевидно, необходимо для нормального осуществления высшей ервной деятельности. [c.6]

В наших опытах (Чернавина, Купке, 1959) молибденнедостаточные растения горчицы и кукурузы отличались от нормальных более высоким относительным содержанием в листьях и корнях связанной формы аскорбиновой кислоты. Количество свободной аскорбиновой кислоты в процентах от общего содержания в от-сутствие молибдена падало. Соотношение между отдельными формами аскорбиновой кислоты в сильной степени зависело от концентрации в питательной среде нитратного азота. Наблюдалась прямая зависимость между количеством азота и содержанием связанной аскорбиновой кислоты в листьях и корнях. Б связи с этими данными представляют интерес сообщения Омура (Ohmura, 1958) о важной роли аскорбиновой кислоты в сохранении хлоропластов в функциональном состоянии. [c.130]

Перераспределение энергии между фотосистемами отражает большую роль факторов физиолого-биохимической регуляции в тилакоидной мембране, которые имеют важное значение наряду с обычными физическими факторами, определяющими миграцию энергии (см. 9-10 гл. XIII). Значение этой регуляции заключается в возможности изменять соотношение между нециклическим и циклическим электронными потоками, преимущественно ускоряя последний при фосфорилировании ССПБК. Было установлено также, что в хлоропластах присутствуют два типа ФС II, которые различаются по местам локализации и размерам их антенных комплексов ФС 11 и ФС Пр. Из них ФС 11 обладает большой антенной и поэтому насыщается при более высокой интенсивности света, проявляя и более высокую фотосинтетическую активность. ФС Пр соответственно обладает меньшей антенной и раньше насыщается при увеличении интенсивности света. [c.295]

Цитохромы — гемсодержащие белки, простетическая группа которых близка к гему пероксидазы и каталазы. Одноэлектронные окислительно-восстановительные превращения испытывает железо гема Fe ++e->-Fe2+. У фотосинтетиков выявлены цитохромы трех типов с, Ь и f, причем тип с наиболее широко распространен у микроорганизмов. Количественное соотношение цитохромов Ьв, Ьъъэ и f в хлоропластах высших растений составляет 2 2 1. На одну молекулу цитохрома f приходится около 400 молекул хлорофилла, а на две молекулы цитохрома Ь Ь + + Й55э) около 118 молекул пигмента. [c.71]

Важно ие перегрузить градиент (-в особенности это касается выделения хлоропластов) во избежание слишком плотного скопления органелл в интерфазе, что может способствовать соосаждению ядериой ДНК- Оптимальное соотношение между числом необходимых пробирок с градиентами и количеством гомогенизируемой ткани составляет примерно 20—30 г свежей ткани на градиент, что определено эмпирически для многих видов растений. Чтобы предотвратить перегрузку градиента хлоропластами, Палмер с сотрудниками [10] предлагает интенсивно смешивать 30%-иуЮ сахарозу верхнего слоя с 52%-ной сахарозой нижнего слоя, при этом иитер-фаза оказывается диффузной. Можно приготовить градиент и за несколько дней до использования, чтобы между двумя слоями произошла диффузия и был бы достигнут тот же эффект. [c.262]

ФСП играет центральную роль в генерировании и регуляции электронного транспорта в хлоропластах. Поэтому показатели, отражающие эффективность работы ФСП являются важным компонентом мониторинга активности фотосинтетического аппарата. Метод ИФХ обладает большими возможностями в плане получения информации о состоянии комплексов ФСМ. Одной из основных характеристик комплексов ФСМ является квантовый выход фотохимического превращения энергии, осуществляемого ФСМ. Этот показатель, называемый также квантовым выходом фотохимии ФСП, определяется как соотношение количества квантов, используемых в разделении зарядов в ФСП, к общему количеству квантов, поглощенных антенной этой фотосистемы. Наличие взаимосвязи между квантовым выходом флуоресценции хлорофилла и квантовым выходом фотохимии ФС П имеет большое значение для практического применения метода ИФХ. Существуют различные способы математического вывода зтой зависимости. Все они базируются на наличии конкуренции флуоресценции с другими процессами реализации энергии возбуждения и зависят от используемой модели системы. Ниже приведен наиболее общий вариант (S hreiber et aL 1998). [c.45]

Следует помнить, что Ру/Р отражает средневзвешенную величину квантового выхода для всех комплексов ФСП экспериментального объекта. Поэтому данный параметр зависит от количества активных комплексов ФСП в образце. Для подтверждения вышесказанного на рис. 2.1 показана зависимость величины соотношения Ру Р от содержания ФСП, которое оценивали с помощью электрофоретического разделения пигмент-белков в полиакриламидном геле. В эксперименте использовали суспензии лёгких фракций фрагментов хлоропластов мезофила кукурузы, состоящие из участков тилакоидных мембран, экспонированных в строму и обогащённых комплексами ФС1. Разное содержание ФСП получали путём модификации процедуры фрагментирования или создания условий фосфорилирования мембранных белков хлоропластов (Куфрик и др. 1997). Зависимость Ру1Р от соотношения [c.47]

Однако, пул ФСП в хлоропластах гетерогенен и содержит определённое количество Qg-невосстанавливающих комплексов, которые имеют минимальный размер пула акцепторов, состоящий только Од. Поэтому существует необходимость расчёта количества переносчиков электронов, которые функционально связаны с Qg-восстанавливающими ФСП, принимающими участие в линейном транспорте электронов. Для этого нужно внести поправку, учитывающую вклад Qg-невосстанавливающих комплексов ФСИ в соотношение [c.146]

Глутаматдегидрогеназа обнаружена практически у всех высших растений. Она присутствует и в листьях, и в корнях, однако в корнях активность этого фермента, как правило, значительно выше. Фермент локализован преимущественно в митохондриях, хотя имеется также в цитозоле и хлоропластах, где его активность в несколько раз ниже. Полагают, что ГДГ корней и митохондриальная ГДГ NADH-зависимы, тогда как в хлоропластах ГДГ специфична к NADPH. Растительные ГДГ имеют М, 200 — 300 тыс. и состоят из 4 —6 субъединиц. Обнаружено до 13 изоформ ГДГ. Это фермент обратимого действия. Соотношение аминирующей и дезаминирующей активности ГДГ митохондрий сильно зависит от соотношения NAD+/ NADH и уровня pH. Оптимум pH для аминирования на 1 — 1,5 единицы ниже, чем для дезаминирования. [c.231]

Мембраны, в которых энергия внешних ресурсов превращается в энергию АТФ, получили название сопрягающих. К ним относятся внутренние мембраны митохондрий, тилакоидные мембраны хлоропластов, а также мембраны и хроматофоры некоторых бактерий. Сопрягающие мембраны содержат компоненты цепей переноса электронов и фос-форилирования, а также фосфолипиды. Соотношение белков и фосфолипидов, как правило, составляет 2 1, причем среди белков свыше 30 % составляют различные компоненты редокс-цепеи, а среди фосфолипидов присутствует кардиолипин и почти отсутствует холестерин. Толщина сопрягающих мембран в разных биологических объектах варьирует незначительно и обычно достигает 7,0—9,0 нм. [c.54]

Таким образом, наблюдаемая после многократного действия вспышек реакция хлоропластов на световой импульс представляет собой суперпозицию двух реакций — восстановления выделяющегося кислорода и окисления компонента Я. В результате в амплитудно-частотном спектре экспериментальной кривой наблюдаются три процесса. Первый обусловлен восстановлением кислорода, выделяющегося под действием вспышки. Его скорость примерно такая же, как и в контроле, но амплитуда существенно меньше. Процесс 3 — образование в системе окисляющегося компонента Я. Процесс 2 — выработка из объема ячейки электроак-тивных веществ — кислорода и компонента Я. Амплитуда и направление этого процесса определяются соотношением количеств указанных веществ, а скорость — диффузией их к электроду и практически не отличается от скорости процесса 2 на рис. 65. [c.203]

Смотреть страницы где упоминается термин Соотношение хлоропластов: [c.476] [c.75] [c.202] [c.192] [c.97] [c.202] [c.243] [c.381] [c.135] [c.381] [c.196] [c.477] [c.96] [c.92] [c.51] [c.96] [c.72] [c.49] [c.50] [c.128] [c.147] [c.515] [c.27] [c.51]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология