Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Свет длина листьями

    Если при освещении солнечным светом смотреть на дерево через фильтр, прозрачный для узкого диапазона длин волн красного света, то листья выглядят розовыми на почти черном фоне. [c.397]

    Установив, что растения короткого дня быстрее зацветают при коротком дне, а растения длинного дня — при более длинном дне и что органами, воспринимающими свет, являются листья, некоторые исследователи начали искать объяснение причин перехода к плодоношению в происходящих в них процессах. [c.470]


    Для получения хроматограмм растворы разделяемой смеси и чистых веществ — свидетелей наносят на листы ХБ, нижние концы которых опускают в соответствующую систему растворителей. Через некоторое время смесь разделяется на зоны отдельных компонентов. Для обнаружения зон хроматограммы наблюдают в свете УФ-излучения при определенной длине волны. Контуры пятен компонентом очерчивают карандашом. Если компоненты дают цветные реакции, то хроматограммы окрашивают (проявляют) путем погружения их в раствор реагента или опрыскивают реагентами из пульверизатора. [c.238]

    Если коллоидная частица по форме приближается к сфере, то независимо от ее положения относительно направления светового потока интенсивность ее освещения в поле ультрамикроскопа будет неизменной. Иная картина наблюдается, если частицы имеют значительную асимметрию, например имеют форму палочек или листков. Интенсивность рассеянного света будет минимальной, если направление падающего луча света параллельно длинной оси палочки или листа, или максимальной, если направление падающего луча света перпендикулярно длинной оси. Вследствие непрерывного теплового движения частицы изменяют свое положение относительно направления светового потока, соответственно изменяется яркость рассеянного света, направленного в сторону объектива, и в результате будет наблюдаться мерцание. Это позволяет в какой-то мере оценить форму частицы. [c.394]

    Из многих фотореакций, опосредованных фитохромом, лучше всего изучены, вероятно, инициация цветения, прорастание семян и позеленение этиолированных тканей. В первом случае очень кратковременное освещение даже части растения (одного листа) светом требуемой длины волны инициирует реакцию, для завершения которой необходимо несколько недель. Ясно, что при этом происходит экспрессия новой генетической информации. В природных условиях начало цветения определяется длиной дня, или, говоря более точно, продолжительностью темпового периода. Так, у растений короткого дня цветение начинается в условиях длинной ночи и короткого дня, в то время как для растений длинного дня необходимы прямо противоположные условия — длинный световой и короткий темновой период. В обоих случаях фитохром является фоторецептором, который опосредует реакцию. [c.371]

    Фотосинтез протекает при помощи пигментов зеленых листьев. Последние содержат два хлорофилла — а (голубовато-зеленый) и б (желтовато-зеленый) (см. главу Пиррол ) — и две группы каротиноидов — каротины (оранжевые) и ксантофиллы (желтые). Эта система пигментов находится в хлоропластах — частицах удлиненной формы, находящихся в клетках зеленых листьев. Установлено, что лучистая энергия, поглощенная одним пигментом, может быть передана другому пигменту хлоропласта. При облучении хлоропластов светом с длиной волны, поглощаемой исключительно хлорофиллом б, испускаемое излучение (за счет флуоресценции) содержит длины волн, характерные для хлорофилла а, в то время как флуоресценция хлорофилла б уменьшается. Остальные пигменты клетки могут передавать аналогичным образом поглощенную энергию хлорофиллу а. Тем самым расширяется спектральная область, потребляемая в фотосинтезе. Хлорофилл передает поглощенную лучистую энергию химической системе при помощи еще не выясненного механизма. [c.260]


    Рост листьев растения. Скорость увеличения площади молодого листа виктории-регии, имеющего форму круга, пропорциональна длине окружности листа и количеству солнечного света, падающего на него. Последнее пропорционально площади листа и косинусу угла между направлением лучей и вертикалью к листу. Пайти зависимость между площадью S листа и временем если в 6 ч утра эта площадь равнялась 1600 см , а в 18 ч того же дня — [c.240]

    Использование света листьями Длина волны, M]i.  [c.103]

    Из всех внешних факторов, вероятно, труднее всего контролировать абсолютное количество света, используемое в фотосинтезе. По этой причине в большинстве экспериментальных работ или наблюдений приводятся лишь относительные значения интенсивности света. На первый взгляд абсолютной мерой количества света могла бы служить световая энергия, падающая на единицу площади поверхности в единицу времени Дж-м 2.с- . Такая мера была бы почти удовлетворительной для монохроматического света, падающего на известную площадь поверхности хлоропласта, при условии, что можно учесть свет, теряемый на отражение, рассеяние и пропускание, и тем самым определить количество поглощенного света. Однако при таком подходе возникает ряд трудностей одни из них связаны с использованием света различных длин волн, другие —с оценкой площади эффективной поглощающей поверхности и третьи — с определением потерь света. Помимо уже упомянутых источников потерь, имеется и еще один —в листьях или в интактных клетках водорослей могут присутствовать пигменты, не участвующие в фотосинтезе, которые будут поглощать часть света прежде, [c.108]

    Отбелка приводит к изменению оптических свойств целлюлозы— светопоглощения, светорассеяния и отражательной способности, которые характеризуются белизной, яркостью и светонепроницаемостью. В практике для характеристики цвета целлюлозы используют ее белизну, которую можно определять разными методами (стандарты TAPPI Т 217 т-48, Т 218 OS—75 S AN—С 11 75 ISO 3688—1977 Е). Чаще всего в качестве меры белизны используют коэффициент отражения листом целлюлозы синего света (длина волны 357 или 360 нм), выраженный в процентах по отношению к коэффициенту отражения оксида магния в качестве эталона (100 %-ная белизна). [c.371]

    Методы определения поглощения света, основанные на измерении различий между количеством падающего света и количеством света, прошедшего через объект, а также отраженного и рассеянного им, обсуждаются в гл. III. Если при определении спектров поглощения с помощью этих методов используются узкие спектральные полосы падающего света, то полученные результаты выражают действительное поглощение данного объекта—листа, суспензии клеток или суспензии изолированных хлоропластов. Однако объяснить эти спектры, исходя из оптических свойств отдельных пигментов, чрезвычайно трудно. Особенно трудно интерпретировать спектры поглощения листьев. Проникающий в лист свет проходит через неоднородную среду. Сначала он отражается и преломляется клеточными стенками, особенно в листьях наземных растений, у которых межклетники заполнены воздухом затем он рассеивается множеством внутриклеточных частиц разной величины, обладающих разными показателями преломления. Следовательно, пути света в листе различны и длина их неизвестна. Часть света может вообще не попасть в хлоропласты, тогда как другая часть пройдет через несколько пластид или даже несколько раз через один и тот же хлоропласт. Для суспензий одноклеФочных водорослей или хлоропластов эта неопределенность длины оптического пути меньше, но и в этих случаях она довольно значительна. Известно, что резкое изменение показателя преломления приводит к рассеянию части света. Рассеяние на поверхности клеток водорослей, являющееся результатом различия в показателях преломления их стенок и воды, можно почти полностью исключить, суспендируя клетки в концентрированном растворе белка, показатель преломления которого близок к показателю преломления клеточных стенок [10]. Рассеяние внутри клеток может быть более значительным вследствие того, что рассеивающие свет частицы в этом случае меньше, а также из-за присутствия пигментов. При наличии очень мелких частиц, диаметр которых меньше длины волны света, величина рассеяния обратно пропорциональна четвертой степени длины волны (релеевское рассеяние). Это в высшей степени избирательное рассеяние особенно сильно увеличивает среднюю длину пути коротковолнового света. Для бесцветных частиц больших размеров величина рассеяния в меньшей степени зависит от длины волны. Однако показатель преломления пигментов резко меняется в области их полое поглощения (аномальная дисперсия), вследствие чего [c.39]


    Рассчитать максимально возможный теоретический выход углевода (НаСО)п в тоннах, который может быть произведен на акре земли зелеными растениями или деревьями в течение 100 дней сезона роста. Подобные расчеты провести для альги (водоросль), растущей в озере или океане. Предполагается, что солнечное излучение в среднем составляет приблизительно 1,0 кал/(см2-мин) за 8 ч в день и что половина площади покрыта зелеными листьями. Пусть при этом одна треть излучения лежит между 400 и 650 нм, что представляет собой область света, поглощаемую хлорофиллом, и пусть средняя длина волны составляет 550 нм. Считать, что листья достаточно плотные для того, чтобы поглотить весь падающий на них свет. Пусть квантовый выход равен 0,12 молекулы на фотон, т. е. 8 фотонов с хлорофиллом могут произвести 1 единицу Kj O из 1 молекулы Oj и I молекулы Н2О. Рассмотреть критически некоторые из этих предположений. [c.561]

    Древесная зелень отличается от остальной биомассы дерева наличием большого числа клеток, содержащих хлоропласты, главным образом, клеток палисадной и губчатой тканей мезофилла листа и в меньших количествах других зеленых тканей. Обычно хлоропласты окрашены в зеленый цвет, и именно их присутствию зелень обязана своим названием. Они содержат фотосиитетичесие пигменты двух классов - хлорофиллы и каротиноиды, поглощающие свет разных длин волн. Хлорофиллы относятся к зеленым пигментам и поглощают свет в синей и красной областях видимой части спектра при длинах волн соответственно около 450 нм и 650...700 нм. Каротиноиды - желтые и оранжевые пигменты, поглощающие свет в области 400...500 нм. [c.531]

    Проверка работы прибора. Перед началом измерения оптической плотности анализируемых растворов проверяют работу узлов прибора. Правильность установки ртутной лампы проверяют визуально открывают щель на полную ширину (2 мм) рукояткой 14 (см. рис. 106). Указатель длин волн устанавливают на длину волны 546,1 нм (зеленая линия ртути). Со стороны, противоположной щели, в кюветное отделение вставляют лист белой бумаги а наблюдают освещенность прямоугольника, который является изображением ли. При правильной установке лампы этот прямоугольник равномерно освещается зеленым светом. Если освещенность неравномерна или имеются затевен ные углы, то следует специальным ключом и часовой отверткой настроить ламг пу при помощи винтов и зеркала-конденсора до получения равномерного освещения прямоугольника зеленым светом. [c.163]

    Работа выхода с поверхности металла определяется как потенциал (или разность потенциалов) в вольтах, который необходимо преодолеть электрону, чтобы удалиться с поверхности металла в бесконечность без приобретения кинетической энергии. Свет с длиной волны 3000 А, падающий на лист алюминия, вызывает испускание фотоэлектронов с его поверхности. Одпн из этих электронов, удалившись на большое расстояние, столкнулся с протоном, что привело к получению атома водорода в третьем возбужденном состоянии. Какова была длина волны фотона, образовавшегося в этом процессе, если работа выхода для алюминия составляет 3,0 В (А, 6000 А.) [c.121]

Рис. 23-10. Спектр поглощения и фотохимический спектр действия зеленого листа. Спектр поглощения характеризует долю энергии поглощенного света в зависимости от длины волны. Фотохимический спектр действия показывает зависимость отнбсительйой эффективности фотосинтеза от длины волны. Стимулировать фотосинтез может, вообще говоря, видимый свет любой длины волны, однако наибольшую эффективность фотосинтеза обеспечивают длины волн 400-500 и 600-700 вм. Для сравнения показан спектр поглощения чистого хлорофилла а, который в области 500-600 нм поглощает сравнительно слабо. В некоторых фотосинтезирующих клетках имеются вспомогательные пигменты, интенсивно поглощающие в этой области и, таким образом, дополняющие собой хлорофиллы. Рис. 23-10. <a href="/info/2753">Спектр поглощения</a> и <a href="/info/373578">фотохимический спектр</a> <a href="/info/189227">действия зеленого</a> листа. <a href="/info/2753">Спектр поглощения</a> характеризует долю <a href="/info/6186">энергии поглощенного</a> света в зависимости от <a href="/info/2957">длины волны</a>. <a href="/info/373578">Фотохимический спектр</a> действия показывает зависимость отнбсительйой <a href="/info/587116">эффективности фотосинтеза</a> от <a href="/info/2957">длины волны</a>. Стимулировать фотосинтез может, вообще говоря, <a href="/info/190955">видимый свет</a> любой <a href="/info/2957">длины волны</a>, однако наибольшую <a href="/info/587116">эффективность фотосинтеза</a> обеспечивают <a href="/info/2957">длины волн</a> 400-500 и 600-700 вм. Для <a href="/info/793966">сравнения показан</a> <a href="/info/2753">спектр поглощения</a> чистого хлорофилла а, который в области 500-600 нм поглощает сравнительно слабо. В <a href="/info/1685745">некоторых фотосинтезирующих</a> клетках имеются <a href="/info/2933">вспомогательные пигменты</a>, интенсивно поглощающие в этой области и, <a href="/info/461013">таким образом</a>, дополняющие <a href="/info/1795776">собой</a> хлорофиллы.
    Способ наблюдения спектров поглощения состоит в том, что берется источник непрерывного (т.-е. не дающего ни темных линий, ни особо ярких светлых полос в спектре) белого света, напр., свет свечи, лампы или других источников. Спектроскоп (т.-е. трубка со щелью) направляется на этот свет, и тогда видны все цвета спектра в окуляр прибора. Тогда между источником света (или где-либо внутри самого прибора, на пути прохождения лучей) и прибором ставится поглощающая прозрачная среда, напр., раствор или трубка с газом. При этом или весь спектр равномерно ослабляется, или на светлом поле сплошного спектра в определенных его местах являются полосы поглощения, которые имеют различную ширину и положение, резкость очертания и напряженность поглощения, смотря по свойствам поглощающей среды. Подобно светящим спектрам накаленных газов и паров, спектры поглощения множества веществ уже изучены и некоторые с большою отчетливостью, напр., спектр бурых паров двуокиси азота (Гассельбергом в Пулкове), спектр длинного столба сжатого кислорода (изучен Н. Г. Егоровым и др.), спектры красящих веществ, особенно (Едер и др.) применяемых в ортохроматической фотографии, или спектры крови, хлорофилла (зеленого начала листьев) и тому подобных веществ, тем более, что при помощи спектров этих веществ можно также открывать их присутствие в малых количествах (даже в микроскопических, при помощи особых приспособлений при микроскопах) и изучать претерпеваемое ими изменение. Спектры поглощения, при обыкновенной температуре получаемые и свойственные веществам во всех физических состояниях, представляют обширнейшее, но еще мало обработанное поле как для теории всей спектроскопии, так и для суждения о строении веществ. Изучение красящих веществ уже показало, что в некоторых случаях определенное изменение состава и строения влечет за собою не только определенное изменение цветов, но и перемещение спектров поглощения на определенные длины волны. [c.347]

    Определение поглощения света в растворах или других гомогенных средах является хорошо известной операцией, результаты которой допускают простое, основанное на законе Бэра истолкование и выражаются в молекулярных коэффициентах поглощения, называемых также коэффициентами экстинкции (попытки придать различный смысл этим терминам не имели успеха на практике). Экспериментальное определение поглощательной способности растений является менее простым, и часто точный смысл результатов проблематичен. Измерения световой энергии, поглощенной листьями, водорослями или суспензиями клеток, осложняются рассеянием, которое имеет местр не только в тканях, но даже и в суспензиях отдельных клеток, потому что размеры клеток ( 10- см) больше, чем длина волны видимого света ( 5- 10 см). Выражение результатов в терминах констант поглощения пигментов усложняется не только рассеянием света на границах фаз, но и неоднородным распределением пигментов в клетках и тканях, а также смещением и деформацией полос поглощения вследствие адсорбции и образования комплексов. Пусть, например, мы измерили энергию / пучка света, падающего на растительный объект (лист, слоевище или суспензию клеток), и энергию Г пучка, выходящего из этого объекта, приняв меры к тому, чтобы суммировать выходящий пучок по всем направлениям, с учетом не только света, проходящего вперед (Г), но и отраженного назад (/ ) это позволит избежать грубых ошибок, которые может внести рассеяние. [c.81]

    Цифры Покровского [61], приведенные в табл. 14, иллюстрируют распределение света различных длин волн, падающего на лист Fra-xinas ex elsior. [c.102]

    Следует сразу сделать одно замечание, ограничивающее практическую применимость аналитических выражений, выведенных в данном разделе. Кинетические уравнения основываются на законе действующих масс и предполагают гомогенность реагирующей системы. Интенсивность света, /, однако, неравномерна по всей толще листа или клеточной суспензии она колеблется даже в пределах одной клетки или отдельного хлоропласта. Об этом осложнении многократно упоминалось выше, и мы еще вернемся к этому в настоящей главе. Пока же мы будем вести рассуждения так, как если бы поглощение света являлось равномерным по всей рассматриваемой области. Это значит, что наши уравнения будут строго верны только для оптически тонких слоев. Поэтому в этих уравнениях под / следует понимать световой поток, фактически достигающий хлорофиллового слоя, а не световой поток, падающий на внешнюю поверхность системы. Эти два потока пропорциональны друг другу, но коэффициент пропорциональности изменяется с изменением глубины, а также длины волны падающего света. Практически большинство, если не все, кинетические измерения были сделаны не с оптически тонкими пигментными слоями, а с листьями, слоевищами или суспензиями, поглощающими ббльшую часть (иногда до 100°/о) падающего света. Ниже мы рассмотрим, насколько сильно изменяются кинетические соотношения, выведенные для оптически тонких слоев, из-за интегрирования вдоль пути, проходимого светом в системе, а также из-за неравномерности поглощения различных составных частей немонохроматического света. Вопрос осложняется, кроме того, структурными эффектами, разобранными в гл. ХХП (рассеяние и эффект проскока ). Еще одно осложнение возникает при изучении клеточных суспензий, сильно перемешиваемых во время измерений. Это перемешивание приводит к тому, что индивидуальные клетки более или менее периодически попадают в световые поля различной интенсивности. Если бы перемешивание было настолько интенсивным, что каждая клетка проходила бы все варианты световых полей за время, достаточно короткое по сравнению с периодом Эмерсона—Арнольда (около 10 2 сек. при комнатной температуре см. гл. XXXIV), то было бы возможно принимать во внимание только среднее освещение и считать его одинаковым для всех клеток. Другими словами, поглощение света каждой клеткой могло бы считаться равным общему поглощению всей суспензии, деленному на число имеющихся в ней клеток. Никакое перемешивание, однако, не может подействовать на содержимое хлоропластов, поэтому молекулы хлорофилла, расположенные глубже, всегда будут получать меньше света, чем молекулы, находящиеся на освещенной поверхности. Еще более важным является то обстоятельство, что степень перемешивания обычно совершенно недостаточна, чтобы узаконить расчет [c.451]

    Кроме длины волны, качество света характеризуется его поляризацией. Однако при изучении взаимоотношения между светом и фотосинтезом на эту характеристику почти никто не обращал внимания. Дастур и Асана [50] и также Джонсон [78] не обнаружили разницы в скорости фотосинтеза при освещении обычным и линейно-поляризованным светом одинаковой интенсивности однако Дастур и Гуникар [62] установили заметное уменьшение поглощения листьями при использовании эллиптически поляризованного света. Гуникар [63] указал также на наличие подобного уменьшения и для синтеза углеводов. Хотя можно сомневаться в правильности этих результатов, все же [c.586]

    Влияние оптической плотности на световые кривые обсуждалось в гл. XXVIII, и результаты иллюстрировались схемами, представленными на фиг. 191. Изменение длины волны равносильно изменению оптической плотности клеточная суспензия, оптически тонкая в зеленом свете, становится оптически плотной при красном или фиолетовом освещении. Однако там, где дело касается скорости фотосинтеза, переход от зеленого к красному свету не во всех отношениях равнозначен увеличению концентрации клеток, так как уровень при насыщении остается неизменным в первом случае и увеличивается пропорционально числу клеток во втором случае. Результат перехода от сильного поглощения света к слабому больше напоминает, повидимому, переход от зеленых к желтым листьям (см. гл. XXXII), так как здесь максимальная скорость приблизительно одинакова для обоих разновидностей. [c.599]

    По мнению Батлера [50а], избирательное рассеяние существенно искажает спектры поглощения лишь в том случае, если измерение рассеяния проводится в очень узком телесном угле. Многократное неизбирательное рассеяние в плотных суспензиях, так же как и в листьях, вызывает увеличение длины пути для тех длин волн, которые слабо поглощаются. Батлер попытался учесть эти различия в длине эффективного оптического щгти. В опытах с разбавленными суспензиями свет, проходящий между клетками, увеличивает измеряемую величину коэффициента пропускания при всех длинах волн и, таким образом, значительно уменьшает высоту максимумов поглощения (эффект Оита) [257а]. Эта ошибка достигает наибольшей величины для [c.41]

    Источники ошибок при измерении флуоресценции еще более многочисленны, чем при измерении поглощения. Свет флуоресценции, который должен быть измерен, необходимо с помощью фильтров отделить от выходящего из клетки рассеянного возбуждающего света (часть этого света может иметь ту же или почти ту же длину волны см. фиг. 18 и фиг. 23). Еще одним источником ошибок является реабсорбция излучаемого света внутри самой клетки ее, однако, можно свести к минимуму, если использовать ткани с. очень низким содержанием хлорофилла. На фиг. 23 показан спектр флуоресценции белых участков листа пестролистной разновидности плюща видно, что он сильно напоминает спектр флуоресценции хлорофилла а в эфире (фиг. 8, Л), хотя и с некоторым смещением максимума в длинноволновую сторону (как это характерно также для спектра поглощения in vivo). В нормальном листе реабсорбция вблизи максимума поглощения хлорофилла а значительно уменьшает интенсивность флуоресценции и еще больше сдвигает максимум в длинноволновую сторону. В то же время дальний красный максимум флуоресценции при 740 нм, где хлорофилл поглощает совсем слабо, в нормальном листе оказывается значительно выше благодаря более высокому содержанию хлорофилла. Рассеяние и внутреннее отражение в листе, которые увеличивают реабсорбцию, удлинняя путь света, можно уменьшить, инфильтрируя межклетники водой [304]. Этот же метод можно использовать и для улучшения спектров поглощения. [c.45]

Фиг. 23. Спектры флуоресценции различных участков листа пестролистной разновидности плюща (Hedera helix), снятые при одинаковой длине волны падающего света (линия 436 нм от ртутной лампы) н одинаковой чувствительности регистрирующего прибора [305]. Фиг. 23. <a href="/info/103709">Спектры флуоресценции</a> различных участков листа пестролистной разновидности плюща (Hedera helix), снятые при одинаковой <a href="/info/2957">длине волны</a> падающего света (линия 436 нм от <a href="/info/128503">ртутной лампы</a>) н одинаковой чувствительности регистрирующего прибора [305].
    Указанное значение для среднего диаметра устьица (d= = 10 мкм) весьма приблизительно и основано на измерении [255] длины и ширины эллиптических отверстий на фиксированных препаратах, приготовленных методом Ллойда [204] вполне возможно, что это значение завышено [140] и действительно такую величину получают лишь в условиях дефицита СОг, например в неподвижном воздухе при наличии интенсивного фотосинтеза. Для получения 2 использовалось среднее расстояние от некой внутренней точки нижнего эпидермиса до середины палисадного слоя ( 150 мкм). При определении Ьз принимали, что расстояние от стенки клетки до хлоропласта равно 2,4 мкм в воде, что эквивалентно 2,4 см в воздухе. При слабом освещении и низкой температуре, когда химические реакции замедлены, химическое сопротивление будет значительным и концентрация СОг на поверхности хлоропласта будет заметно больше нуля. Даже при благоприятных условиях освещения и температуры химическое сопротивление, по мнению Максвелла, равно сопротивлению гидродиффузного пути в этой главе мы будем считать, что это именно так, хотя другие исследователи [110] полагают, что на сильном свету концентрация СОг на поверхности хлоропласта равна нулю. У данной разновидности Р. zonale на верхней стороне листа число устьиц обычно в 10 раз меньше, чем на нижней поэтому для простоты мы будем пренебрегать поглощением СОг через верхнюю поверхность. Если принять величину 0,40 в вместо лО/8 для неподвижного воздуха (стр. 62) и уменьшить коэффициент I -j- nd/4) на 10%, то [c.71]


Смотреть страницы где упоминается термин Свет длина листьями: [c.43]    [c.576]    [c.122]    [c.207]    [c.95]    [c.301]    [c.360]    [c.173]    [c.406]    [c.480]    [c.257]    [c.464]    [c.104]    [c.240]    [c.692]    [c.301]    [c.67]    [c.367]    [c.103]    [c.130]    [c.584]    [c.608]    [c.12]    [c.75]    [c.76]   
Фотосинтез (1972) -- [ c.35 , c.38 , c.39 , c.218 , c.219 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Лист Листья

Листов



© 2025 chem21.info Реклама на сайте