Хлорофилл фракция

Один из методов получения фитола из хлорофилла состоит в экстракции из крапивы сухим ацетоном липоидной фракции с последующим гидролизом заключающегося в ней хлорофилла твердым едким натром при этом исключается образование стойких эмульсий [174]. Из 1 кг муки сухой крапивы выделено 2,8—3,0 г фитола. Фитол —вязкое масло с т. кип. 145° С при 0,03 мм. [c.278]

I переводятся сначала желтые пигменты (каротиноиды), затем а-хлорофилл и р-хлорофилл. Фракции собирают в отдельные приемники. [c.296]

В хроматографическую колонку вводят 5 мл экстракта. Образуется первичная хроматограмма, которую промывают смесью бензина и бензола (10 1). При промывании колонки происходит разделение зон вверху колонки образуется зеленая зона чистого хлорофилла р, далее — зона хлорофилла а и ниже располагается зона желтого цвета — каротиноиды. При дальнейшем промывании колонки растворителем в фильтрат переводятся сначала желтые пигменты (каротиноиды), затем хлорофилл а и последним хлорофилл р. Каждую фракцию собирают в отдельный приемник. [c.30]

Как и ожидалось, после отщепления аминокислот изотопный состав углерода фракций облегчился. Причем три из шести фракций после гидролиза стали соответствовать по своему изотопному составу порфириновому ядру хлорофилла, остальные три фрак- [c.366]

Аналогичным образом у бурых, красных и сине-зеленых водорослей в фотосистеме II функционируют коротковолновый компонент хлорофилла а и главная фракция вспомогательных пигментов, тогда как длинноволновые компоненты хлорофилла а совместно с незначительной фракцией вспомогательных пигментов сенсибилизируют фотореакцию I. Однако следует помнить, что у бактерий, у которых, по-видимому, происходит только одна фотореакция, бактериохлорофилл также находится в нескольких связанных состояниях, имеющих четко различающиеся максимумы поглощения. Как станет ясно из дальнейшего более деталь- [c.560]

Крахмал. Крахмал является важнейшим резервным углеводом растений. Он образуется из углекислоты, усваиваемой растениями с помощью хлорофилла, и попадает затем в различные части растения, где используется в качестве строительного вещества. В периоды сильной ассимиляции он откладывается в корнях, клубнях и семенах (особенно обильно, например, в картофеле и семенах хлебных злаков). В холодной воде крахмал почти совсем не растворим, но горячая вода растворяет его в значительной степени, причем образуется вязкий раствор, не восстанавливающий фелингову жидкость и при охлаждении застывающий в студнеобразную массу (крахмальный клейстер). Природный крахмал всегда содержит немного фосфора, количество которого в разных видах бывает различным (0,02—0,16%). Этот фосфор, по-видимому, имеет значение для энзиматического распада крахмала. Из продуктов гидролиза картофельного крахмала была выделена глюкозо-6-фосфорная кислота. На основании исследований Макэнна различают две фракции крахмала амилозу и а м и л о-пектин (вещество оболочки). Первая растворяется в воде без образования клейстера и окрашивается иодом в чисто-синий цвет. Амило-пектин, наоборот, с горячей водой образует клейстер и от иода приобретает фиолетовую окраску. Отделение амилопектина может быть осуществлено путем извлечения щелочами или посредством электродиализа отделение амилозы достигается осаждением различными органическими веществами — спиртами (например, амиловым), сложными эфирами, кетонами, меркаптанами, парафинами. [c.454]

Фракции хлорофилла из листьев растений, экстрагированные с помощью хлороформа, наносили в виде полос на слои силикагеля PF254 толщиной 2 мм [12]. Зоны разделили при многократном проявлении в восходящем направлении подвижная фаза смесь петролейный эфир — хлороформ (1 1 по объему). После нескольких проявлений отделенные хлорофилловые и нехлорофилловые полосы были видны в дневном свете и в ультрафиолете. Вещества были извлечены из зон обычной процедурой элюирования. [c.148]

На ПЭЗ ВИЛАР проведена работа по выделению суммы гликозидов из наперстянки шерстистой. Сырьё экстрагировали этилацетатом, пасыщеппым для стабилизации водородного показателя 2,5% водным раствором бикарбоната натрия [2]. Данный экстрагент отличается избирательностью и не способствует фермептативпому гидролизу гликозидов [3]. Во время экстракций периодически ведётся рН-коптроль экстрагента. Наиболее приемлемым является pH от 6,0 до 7,0, что обеспечивает максимальный выход суммы гликозидов. Это объясняется тем, что снижение pH раствора ниже 5,0 приводит к разрушению гликозидов из-за их гидролиза в кислой среде. Повышение pH более 7,0 обусловливает меньший выход суммы гликозидов в связи с размыканием лактонного кольца и дезацетилированием [4]. Экстракты пропускали через окись алюминия с оптимальным размером частиц и проводили хроматографическую очистку лапатозидов АВС от балластных веществ, таких как флавоноиды, каротиноиды, хлорофиллы, смолы и др. ТСХ-контроль осуществляли на силуфоле в системе метанол- этилацетат (1 4), проявитель- пары соляной кислоты [5]. Фракции, содержащие сумму гликозидов объединяли для кристаллизации. [c.172]

У растений фотосинтез происходит внутри высокоспециализированных органелл, называемых пластидами. Если клетки разрушить и выделить из них чистую фракцию пластид, то оказывается, что пластиды в присутствии соответствующих субстратов и кофакторов способны осуществлять все реакции фотосинтеза. В зеленых растениях, в том числе и в зеленых одноклеточных организмах, например у водорослей hlorella и S enedesmus, а также у простейшего Euglena, пластиды содержат хлорофилл и называются хлоропластами. Число, размеры и форма хлоропластов у разных организмов различны. В клетках хлореллы, например, имеется только одна пластида чашеобразной формы большинство же других водорослей, а также зеленые клетки высших растений содержат много хлоропластов. [c.315]

Дитерпены широко распространены в природе и выделяются обычно из высококипящих фракций эфирных масел растений. Дитерпенами являются фитол, входящий в состав молекул хлорофилла и токоферолов (см. с. 686), витамин А (см. с. 669), смоляные кислоты (например, абиетиновая кислота), гибберелловые кислоты (см. с. 717), инсектицид 1 ис-озовая кислота и другие соединения. [c.698]

Хлорофилл Ь Гель полиметакрилата (0,7X60 см) Бензол Последние фракции содержат а-каротин 18 [c.273]

Из сравнения А тл Б (фиг. 6) видно, что результаты, полученные этими двумя методами, достаточно хорошо согласуются. Две полосы хлорофуцина расположены в оранжевой и красной областях с максимумами у 575,5 и 627 м >. в метаноле и у 581 и 631 в 80-процентном ацетоне. На фиг. 6, В, видна также полоса в синей области спектра (у 446 м х), почти в 10 раз большей интенсивности, чем длинноволновые максимумы. Отношение интенсивностей этих полос, таким образом, гораздо больше, чем у хлорофилла Ь (для которого это отношение равно 3), не говоря уже о хлорофилле а, у которого обе полосы почти одинаковы по интенсивности (см. табл. 2 и 10). Однако общая картина спектра имеет один и тот же характер. Вассинк и Керстен [61] и Танада [71] дают аналогичные кривые поглощения для фракции хлорофилла с, полученной при хроматографическом разделении пигментов диатомовых водорослей. В метаноле они наблюдали три максимума поглощения, около 450, 590 и 635 причем первая полоса была почти в 10 раз интенсивнее двух других (см. стр. 30). [c.21]

Получение растворов хлорофилла-а и хлорофилла- проводят промыванием колонки смесью бензина и бензола (10 1). При этом в фильтрат переводятся сначала желтые пигменты (каратиноиды) затем хлорофилл-ос и хлорофилл-р. Все три фракции получают отдельно. [c.200]

Для выделения природных фенольных ингибиторов зеленые листья (или другие растительные органы), растертые в жидком азоте, заливали 96%-ным этанолом, подогретым до 70°, и оставляли настаиваться в течение 2—3 дней, экстракт сливали, экстракцию повторяли до полного извлечения хлорофилла. Затем этанол выпаривали, водную фазу декантировали (освобождали от пигментов), а затем последовательно трехкратно экстрагировали эфиром, эти-лацетатом и н-бутанолом. Извлеченные фракции выпаривали досуха и растворяли в 70%-ном этаноле. Первое хроматографическое разделение фракции проводили на бумаге Ватман 3 ММ в одной из селективных смесей растворителей и с помощью цветных реакций и биотеста контролировали, в каку.о фракцию ингибитор перешел в наибольшем количестве. Для этих целей удобно использовать сопутст-34 [c.34]

Граник растирал листья в 0,5 М растворе глюкозы. Он получил вещество хлоропластов, состоящее из целых и распавшихся на части хлоропластов. Менке [92], дроизводивший растирание под водой, получил небольшую порцию, состоящую из бодее иди менее неноврежденных хлоропластов (см. табл. 49). Он не сомневается, что вещество хлоропластов, полученное коагуляцией, содержит все составные части хлоропластов вместе с 15% цитоплазмы. Момг мертс [93], и Бот [113] утверждают, что они подучали препараты, целиком состоявшие из свободных гранул. Однако в этих фракциях, содержащих, как предполагалось, чистые гранулы, концентрация хлорофилла не превышает, а иногда и ниже концентрации хлорофилла в веществе хлоропластов в целом. Это показывает, что при фракционировании не происходит разделения гранул и стромы [106] . [c.370]

Общее количество вещества хлоропластов в листьях можно определить или непосредственно взвешиванием фракций, полученных из известного количества листьев, иди косвенно. Косвенный метод применили Нейш [97] и Менке [106]. Они экстрагировали хлорофилл (или каротиноиды) из флоккудированной фракции хлоропластов и из соответствующей массы целых листьев зная, что первоначально все пигменты заключены в хлоропластах, они вычислили общее количество вещества хлоропластов, сравнивая концентрацию пигментов в этих двух экстрактах. Полученные результаты приведены в табл. 45 и 46. [c.370]

Пероксидаза присутствует главным образом в воднорастворймой фракции зеленых листьев [105]. Любименко [74] допускает связь между активностью пероксидазы листьев и образованием и разрушением хлорофилла (см. главу XV). [c.382]

Зейбольд и Эгле сочли эти результаты доказательством того, что практически весь хлорофилл в листьях находится в нефлуоресцирующем состоянии (вероятно, связан с белком) малая же доля пигмента растворена в липоидной фазе и поэтому способна флуоресцировать. Они полагали, что при высушивании фракция хлорофилла, обычно присутствующая в липоидной фазе, переводится в водно-коллоидное состояние, тогда как при нагревании хлорофилл сначала экстрагируется из липоидной фазы в коллоидно-белковую фазу, что приводит к исчезновению флуоресценции, но позднее возвращается в липофильное вещество (в связи с денатурацией белков и плавлением липоидов) и вследствие этого опять начинает флуоресцировать. Метцнер [49] также приписывал вспышку флуоресценции при нагревании плавлению [c.229]

Применение водноорганических растворителей является единственным эффективным методом экстрагирования хлорофилла и других пигментов из клеток. В этом случае вода действует на белковую фракцию системы хлоропласта, а органический растворитель— на липоидпую фракцию, включающую пигменты. Выделенные из [c.385]

Концентрация хлорофилла определялась также при помощи анализа вещества хлоропластов, изолированного приемами, описанными в главе XIV. В веществе хлоронластов шпината Гранин [60] нашел 16% хлорофилла (на сухой вес) данные других анализов несколько ниже. Менке [71] нашел 7,6—8,3% хлорофилла в центрифугированной фракции хлоропластов из листьев шпината и 5,3—6,4% — в осажденном веществе хлоропластов , которое он поэтому считает смешанным с 15% цитоплазмы (см. стр. 369). Смит анализировал тот же самый материал и получил 8% хлорофилла в сухом веществе хлоропластов Latyrus и Spina ia Бот нашел всего 4—6% хлорофилла. [c.414]

Таким образом, двойная связь образуется между С (10) и С (9). Она обусловливает напряжение в циклопентанонном кольце, в связи с чем это кольцо подвергается разрыву при омылении. Предполагается, что в бурой фазе лрисутствует щелочная соль энольной формы. Если щелочь сейчас же экстрагировать, взболтав бурый эфирно-спиртовый раствор с водой, хлорофилл может регенерироваться из эфирной фракции и остается неизмененным. Таким образом, первая стадия фазовой пробы обратима, по после возвращения зеленого цвета реакция не может идти обратно. Но, может быть, возможны некоторые специальные методы, с помощью которых хлорины могут быть превращены в форбины. Хотя с химической точки зрения фазовую пробу можно объяснить как результат энолизации хлорофилла, все же возникают известные трудности в интерпретации изменения окраски. Спектр бурой фазы неизвестен, но не может быть сомнения, что главная красная полоса поглощения хлорофилла или отсутствует, или значительно менее интенсивна. На основании того, что мы знаем о наличии этой полосы у хлоринов и форбинов, не приходится ожидать, что она должна исчезнуть до тех пор, пока три хромофорных фактора — конъюгированная система двойных связей, гидрированное ядро IV и атом магния — остаются нетронутыми. Энолизация боковой цени вряд ли может влиять на спектр в такой степени. Можно предположить, что во время бурой фазы происходят какие-то изменения с двумя водородными атомами в ядре IV. Может быть, эти атомы переходят из положении 7. и 8 в положения 9 и 10, создавая таким образом таутомерное равновесие между структурами [c.465]

У большинства водорослей, по-видимому, нет гран, но ламеллы собраны у них в небольшие группы (по 2—8 ламелл в каждой). Исключение в этом смысле составляют красные водоросли, у которых все ламеллы расположены поодиночке [117]. Хлоропласты водорослей, как и хлоропласты высших растений (фото X), окружены тонкой двойной мембраной. У сине-зеленых водорослей ламеллы обычно находятся не в хлоропласте, а тянутся вдоль клеточной стенки или поперек клетки [14, 223]. При делении клетки образующаяся перегородка делит их пополам [223]. На электронной микрофотографии сине-зеленой водоросли Зупескососсиз сейогит Кальвин и Линч [54] наблюдали круглые частицы диаметром около 220 нм. Такой же величины частицы были видны и в осадке, полученном в результате Центрифугирования при 36 000 В этой фракции обнаруживался весь хлорофилл и все каротиноиды. Авторы полагают, что частицы, о которых идет речь, аналогичны гранам. [c.16]

НИЗКИЙ оптический дихроизм хлоропластов может объясняться именно этой недостаточно строгой ориентацией. Парк и др. [251—253] определили молекулярный состав квантосом, исследуя разрушенные хлоропласты шпината. Для зеленых ламеллярных структур диаметром от 2000 до 80 нм, полученных центрифугированием при постепенно возрастающих скоростях, отношение хлорофилла к азоту было довольно постоянным. Крупные структуры были, по-видимому, лишены гран, тогда как фракция более мелких частиц содержала граны. Эти результаты служат доказательством равномерного распределения хлорофилла по всей ламеллярной структуре хлоропласта. Было высказано предположение, что обычно наблюдаемая флуоресценция одних только гран объясняется более высоким содержанием ламеллярных структур. В квантосомах были обнаружены небольшие количества трех переходных металлов — железа, марганца и меди, причём концентрация марганца оказалась наиболее низкой. Марганец необходим для выделения кислорода при фотосинтезе. Учитывая это. Парк и Пон [253] рассчитали молекулярный вес наименьшей единицы в ламелле, которая, очевидно, еще могла бы осуществлять фотосинтез, т. е. частицы, соответствующей одному атому марганца. Он оказался равным 9,6-10 . Позже [251] расчеты были проведены с учетом данных об объеме квантосом (полученных путем измерений на электронных микрофотографиях), а также результатов определений эффективной плавучей плотности разрушенных ламеллярных структур в ультрацентрифуге. Было обнаружено, что молекулярный вес квантосом равен 2-10 , что соответствует двум атомам марганца. Данные о молекулярном составе квантосом представлены в табл. 1. Мембрана толщиной 10 нм содержит 50% липида и 50% белка. Следовательно, с учетом разницы в плотности (1,0 1,4) можно считать, что на долю липида приходится около 6,5 нм толщины мембраны, а это согласуется с представлением о существовании двойного липидного слоя. [c.35]

Действием ультразвука, механическим разрушением, обработкой детергентами из хлоропластов удается выделить фракции частиц, отличающиеся по размерам, а главное, по содержанию пигментов, марганца, меди, цитохрома, дополнительных пигментов, по спектроскопическим характеристикам агрегатов хлорофилла и их фотохимической активности, по другим параметрам. Эти частицы исследователи относят к фрагментам хлоропластов, отвечающих комплексу элементов фотосистемы I или фотосистемы II (см. табл. на с. 31). Например, в более крупных частицах, сепарированных центрифугированием хлоропластов после обработки поверхностно-активными веществами, оказалось больше марганца, хлорофилла Ь, ксантофиллов, их модельные реакции отвечали фотосистеме II. Только в них присутствовали ксанто-филы, виолаксантин и зеаксантин, обратимые реакции эпоксиди-рования-дезэпоксидирования которых ранее связывали с выделением кислорода. [c.30]

Значение этой ориентированной фракции хлорофилла пока еще непонятно скорее всего она связана с процессом превращения световой энергии, а не с процессом ее поглощения. Некоторые наблюдаемые при фотосинтезе явления, которые характерны для твердого состояния или электронных явлений (длительное высвечивание, образование неспаренных электронов, стабилизация фотонродуктов при очень низких температурах, фотопроводимость и т. д.), по-видимому, связаны с процессами, которые происходят после концентрации световой энергии в улавливающих центрах, а не до того. Как излагалось в предыдущем разделе, эти процессы зависят от жесткой связи участников реакции. Это особенно справедливо для сложного механизма фотохимического образования кислорода. [c.558]

ДХММ, которая ингибирует выделение кислорода и вторую (но не первую) фотореакцию (разд. II, И), вызывает увеличение выхода флуоресценции при всех интенсивностях — даже если фотореакция I функционирует, например, когда происходит восстановление НАДФ аскорбатом вместо воды. Этот факт находится в соответствии с данными исследования спектров возбуждения флуоресценции, согласно которым дополнительные пигменты и связанная с ними фракция хлорофилла а (которая сенсибилизирует фотосистему II), во много раз более эффективно индуцируют флуоресценцию хлорофилла а, чем пигмент, связанный с фотосистемой I (разд. III, А). [c.566]

Следовательно, по крайней мере при комнатной температуре, испускание света пигментной системой I очень мало. Очевидно, кванты, не использованные для фотохимической реакции в этой системе, теряются путем безызлучательных переходов. Возможно, эта потеря происходит в длинноволновой фракции хлорофилла С700, которая является предпоследним участником цепи (фиг. 222). Этот пигмент флуоресцирует только при низкой температуре и ответствен за полосу испускания при 700 ммк. [c.566]

ДЛЯ н-алканов биогенного происхождения. На хроматограмме другой фракции можно видеть ряд выступающих острых пиков мы с полной уверенностью определили их как изопреноиды, подтвердив результат Дж. Камминза и У. Робинсона. Особенно заслуживает внимание большое содержание фитана — углеводорода, производного боковой цепи хлорофилла. Окисленные аналоги стеранов и тритерпанов (27—30 атомов углерода в молекуле) и высокомолекулярные к-алканы (29—31 атом углерода) — типичные компоненты воскового налета листьев и пыльцы наземных растений на основании этого можно сделать вывод, что такие растения принимали [c.208]

Смотреть страницы где упоминается термин Хлорофилл фракция: [c.102] [c.641] [c.117] [c.78] [c.172] [c.290] [c.220] [c.272] [c.627] [c.375] [c.376] [c.380] [c.211] [c.27] [c.12] [c.78] [c.461] [c.462] [c.560] [c.564] [c.567] [c.212]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология