Сборка ППК из HS-субъединиц

Фактически биосинтез белков хлоропластов является результатом взаимодействия между геномами ядра и пластид. Так, некоторые белки пластид образуются в результате сборки субъединиц, синтезированных в цитоплазме, и субъединиц, синтезированных в строме. Биосинтезу этих белков способствует также свет. Его роль в первую очередь заключается в подаче сигнала, который инициирует и стимулирует эти синтезы. [c.238]

В процессе сокращения субъединицы чехла перестраиваются, образуя структуру из 12 колец большего размера, каждое из которых состоит из 12 субъединиц . Происходит своеобразное взаимное проникновение субъединиц (интеркаляция). Строго определенная направленность и необратимый характер этой структурной перестройки отличают укорочение отростка фага от процесса сокращения мышцы. Вполне возможно, что в чехле фага белковые субъединицы находятся в нестабильном высокоэнергетическом состоянии и запасенная в процессе сборки энергия используется затем для реализации процесса сокращения. [c.329]

Построение четвертичной структуры ферментов — это только один пример процессов полимеризации, зависящих в основном, если не всецело, от образования слабых химических связей между субъединицами или протомерами. При сборке сократимых элементов мышцы нз мономерных единиц О-актина образуется фибриллярный белок Р-актин (рис. 100, Л). [c.318]

Как видно из рис. 100, , сборка активного полимерного миозина из субъединиц (состоящих в свою очередь из 5 полипептидных цепей) также чувствительна к давлению. В отличие от полимеризованного актина (Р-актина) полимер миозина стабилизирован главным образом полярными взаимодействиями. При образовании водородных связей объем возрастает примерно на 3—7 см /моль. В этом случае увеличение объема при сборке полимера будет достигать около 300 см /моль — столь большой величины, что высокие давления должны будут сильно благоприятствовать мономерному состоянию. Следовательно, нити миозина, образующиеся при большом давлении, должны быть короче обычного, что опять-таки наглядно подтверждается при прямом электронно-микроскопическом исследовании мышц придонных рыб. [c.319]

Данные по биогенезу мембран также не подтверждают концепцию строения мембраны из субъединиц. В этом случае сборка мембраны должна была бы быть одноэтапным процессом, в то время как в действительности сборка мембраны происходит в несколько этапов вначале создается липидная основа мембраны, а далее присоединяется белковый компонент. [c.378]

В большинстве случаев не существует очевидной корреляции между локализацией и функциями белков. Белки 308-субчастицы безусловно не кодируются в каком-либо порядке, отражающем их сборку в субъединицу. В то же время локализация группы белков 508-субчастицы, кодируемых rif/Ll 1-оперонами, проявляет корреляцию с порядком сборки, при котором L7/L12, L10 и L11 могут быть связанными. В этом случае белки, синтезируясь, могут объединяться, образуя некую субчастицу. [c.202]

Также были обнаружены и мутации по ядерным генам, препятствующие образованию всех перечисленных комплексов. В мутантах по генам органелл и ядерным генам сборка комплексов осуществляется неправильно, так что некоторые субъединицы, по-видимому, отсутствуют. Это указывает на то, что сборка каждого из таких комплексов с образованием его обычной связанной с мембраной формы-сложный процесс, при котором отсутствие одного компонента может препятствовать сборке других. На практике это приводит к тому, что сложно связать мутации по ядерным генам с определенными субъединицами. Кроме того, имеется ряд мутаций по ядерным генам, препятствующих сборке комплекса, но, по-видимому, не затрагивающих отдельные субъединицы. Это может означать, что имеется несколько кодируемых ядерными генами продуктов, необходимых для сборки, но не входящих в состав комплекса в его окончательном виде. [c.284]

Сборка капсида вокруг генома происходит у нитевидных вирусов и фагов, содержащих одноцепочечную РНК. Наиболее хорошо охарактеризованным примером может служить вирус табачной мозаики (ВТМ). Его сборка начинается с двухцепочечной шпильки, находящейся в последовательности РНК. Из этого центра нуклеации процесс продолжается в двух направлениях вдоль РНК-до тех пор, пока не достигает концов. Одна структурная единица капсида представляет собой двухслойный диск каждый слой содержит 17 идентичных субъединиц белка. Диск образует кольцевую структуру, которая при взаимодействии с РНК приобретает спиральную форму. Как видно на рис. 28.1, внутри белковой оболочки РНК скручена в виде спирали. [c.345]

Биологические структуры часто образованы путем соединения похожих друг на друга субъединиц, таких как аминокислоты или нуклеотиды, в длинную повторяющуюся цепь (разд. 2.4.5). Если все субъединицы одинаковы, то соседние субъединицы в цепи будут соединены друг с другом только одним способом их взаимное расположение будет таково, что энергия контакта между ними окажется минимальной. Каждая субъединица при этом расположена точно так же, как соседние, так что субъединица 3 будет входить в субъединицу 2, а субъединица 2 - в субъединиц 1 и т. д. Поскольк) сборка субъединиц в виде прямой линии явление очень редкое, то обычно образуется спираль - регулярная структура, напоминающая виггтовую лестницу, как показано на рис. 3-3. В зависимости от направления закручивания различают спирали правьте и левые (рис. 3-4). Направление спирали не изменится, если спираль перевернуть, но изменится при зеркальном отражеггии. [c.115]

Самосборка полисом Сборка субъединиц рибосом осуществляется поэтапно. Вначале последовательно встраиваются белки, спе ифичные для каждой субъединицы с участием структур [c.320]

Представляется, что совместное клонирование генов rm является условием необходимым, но недостаточным для положительного исхода эксперимента. После их попадания в реципи-ентную клетку встает вопрос как об экспрессии этих генов вообще, так и (в случае удовлетворения этого условия) о первоочередном проявлении защитной функции метилазы в отношении ДНК до воздействия на нее рестриктазы. Предположительно последнее реализуется путем опережающей экспрессии гена метилазы. Возможные механизмы, обеспечивающие выполнение этого условия рассмотрены в главе 9 (часть I). Формально, в случае одновременной экспрессии обоих генов гш, возможен и другой путь предотвращения гибели клетки. Для этого необходимо, чтобы метилаза опередила действие рестриктазы на субстрат. В качестве одного из возможных факторов играющего роль в опережающем проявлении активности метилазы приводятся данные о том, что рестриктазы в отличие от первого фермента являются гомомультимерными белками. Предполагается, что время необходимое для сборки субъединиц в активную форму белка в некоторых случаях может оказаться достаточным для модификации ДНК ферментом, который не обладает четвертичной структурой и сразу после его синтеза может взаимодействовать с субстратом ("286]. [c.189]

Как мы уже отмечали, субъединицы оболочек икосаэдрических вирусов и некоторых ферментов могут быть квазиэквивалентньши. Эта особенность ответственна за спирализацию жгутиков бактерий, она же лежит в основе некоторых интересных структурных особенностей вируса табачной мозаики. Белковые субъединицы вируса могут быть уложены либо в спираль с числом субъединиц на один виток, равным 16,3 (рис. 4-7), либо в плоские кольца из 17 субъединиц каждое [36а]. При этом конформационные различия очень малы. Кольца способны диме-ризоваться, однако крупных агрегатов они не образуют. Удивительно, что димерные кольца не обладают диэдрической симметрией. Все субъединицы в них ориентированы одинаково, но находятся в двух разных конформациях. Есть предположение, что такие диски являются промежуточной структурой при сборке вирусной частицы. Согласно рентгеноструктурным данным, внутренние участки нвазиэквивалентных субъединиц диска играют роль своего рода ловушек, ожидающих момента, когда в состав вируса включится РНК. После этого диски меняют конформацию и образуют завиток , инициируя рост спиральных вирусных частиц [36а]. Эти и многие другие интересные данные позволили предположить, что квазиэквивалентность белковых субъединиц в сочетании с их способностью менять свою конформацию лежит в основе многих биологических явлений. [c.295]

В связи с биосинтезом рибосом интересно упомянуть важную особенность этого процесса, имеющую прямое отношение к самосборке надмолекулярных структур. Рибосомные РНК эукариот транскрибируются в виде единого предшественника, так называемой 45S РЖ, содержащей в своем составе полные нуклеотидные последовательности для трех из четырех рибосомных РНК эукариот, а именно 28S, 18S и 5,8S РНК. Сборка нуклеопротеидной структуры начинается на этой единой полинуклеотидной цепи и приводит к образованию единого предшественника рибосомы, уже содержащего большую часть из числа примерно 70 рибосомных белков, входящих в зрелые рибосомные частицы. В них содержатся также некоторые дополнительные белки, в конечной структуре отсутствующие и, по-видимому, нужные на промежуточных этапах сборки. Только после этого происходит первая фаза процессинга рибосомных РНК, приводящая к формированию предшественников рибосомных субъединиц. Незрелые субъединицы выходят на определенном этапе их формирования из ядрышка и ядра в цитоплазму, где они проходят заключительные фазы процессинга и превращаются в зрелые рибосомы. На этом примере видно, что для правильной сборки сложных нукле-432 [c.432]

Вирус табачной мозаики (рис. 5.1) представляет собой полый цилиндр длиной 3000 А, с внутренним диаметром 40 А и внешним диаметром 180 А. Каждый вирус ВТМ содержит 2200 белковых субъединиц, расположенных в виде правой спирали, в которой на один виток спирали приходится 16 1/3 субъединиц. Цепь РНК, длиной 6600 нуклеотидов, располагается также в виде спирали между последовательными витками белковой спирали. Самосборка ВТМ in vitro из белка и РНК начинается ср связывания двойного диска белка ВТМ с участком молекулы РНК, отстоящим от конца молекулы РНК примерно на 750 нуклеотидов (см. ниже). Образовавшийся кусочек белково-нуклеиновой Спирали служит затравкой для последующей конденсации белковых субъединиц совместно со спиралью РНК в цилиндрическую спиральную структуру ВТМ (см, рис. 5.1). Электронно-микроскопические исследования показывают, что соседние витки белковой спирали на внешнем радиусе цилиндра ВТМ соприкасаются плотно, а на внутреннем радиусе несколько отходят друг от друга. При самосборке капсида ВТМ цепь РНК протягивается сквозь полость цилиндра и укладывается изнутри в зазор между последовательными витками белковой спирали. При этом участок цепи РНК, примыкающий к 3-концу нуклеиновой кислоты, остается не закрытым белковой оболочкой, а для построения капсида используется участок РНК, прилегающий к 5-концу нуклеиновой кислоты, который последовательно протягивается через внутреннюю полость цилиндра ВТМ. Авторы [5] предполагают, что участок РНК длиной 750 нуклеотидов, прилегающий к З -концу нуклеиновой кислоты, используется (при сборке кап- [c.92]

Рис. 17-21. Пентамерная молекула IgM. Пять субъединиц соединены дису р.фидными связями. Как полагают, сборку пентамера инициирует единственная J-цепь, связанная ди-сульфидными мостиками с двумя тяжелыми ц-цепями.

На ДНК как на матрице может синтезироваться не только новая ДНК, но и РНК — процесс, направляемый ДНК-зависимой PH К-полимеразой. Репликация РНК на ДНК протекает по тем же законам, что и репликация ДНК, с той лишь разницей, что в молекуле РНК место Т занимает У. Синтез информационной РНК (мРНК, матричная РНК), последовательность оснований в которой комплементарна последовательности оснований в исходной молекуле ДНК, представляет собой первый этап в процессе биосинтеза белка. Этот этап называют транскрипцией. Процесс сборки примерно двадцати различных аминокислот в определенной последовательности при синтезе белковой молекулы называется трансляцией, так как в этом случае последовательность оснований мРНК транслируется в соответствующую последовательность аминокислот. Процесс трансляции осуществляется на рибосомах. Это рибонуклеопро-теидные частицы с молекулярной массой 2,7 млн., состоящие из двух субъединиц с молекулярной массой 0,9 и 1,8 млн. Несколько рибосом могут [c.69]

После активации РНК-полимераз, трансляции информационных РНК в исходные белковые субъединицы и сборки из надлежащих субъединиц голоферментов, каждый из которых разместится в клетке надлежащим образом, организм будет располагать еще одним уровнем регуляции — механизмами, регулирующими активность нового набора ферментов. Как мы уже отмечали, путь, ведущий к образованию аммиака, совершенно четко ответвляется от пути, ведущего к синтезу мочевины. Эти два пути конкурируют между собой самым непосредственным образом из-за общего субстрата, НН , и косвенным образом из-за глутамата. Распределение азота глутаминовой кислоты между обоими путями, несомненно, тщательно регулируется. Детали этой регуляции сейчас еще только выясняются однако полученные данные позволяют уже рассмотреть в этом аспекте свойства КФС-1, глутаматдегидрогеназы и глутаминсинтетазы — трех ферментов, которые занимают в этом участке метаболизма столь важные стратегические позиции, что регуляция их активности играет первостепенную роль в управлении уреотелией. [c.178]

Рибосомы состоят, как правило, из двух частиц — субъединиц, отличающихся по скоростям седиментации (зеётеп-1ит — латинское — оседание), их называют 305- и 505- субъ-единицами. Рибосомы являются своего рода конвейерами, на которых происходит сборка белка из соответствующих деталей — аминокислот. Однако в рибосомы должны поступать аминокислоты не как таковые, а предварительно подготовленные к сборка. Прежде всего аминокислоты активируются, взаимодействуя с аденозинтрифосфатом и образуя амино-ациладенилаты, общая формула которых приведена ниже. [c.132]

Макролидный антибиотик эритромицин действует, вероятно, очень сходно с хлорамфениколом, но 09 связывается с 505-субъединицей рибосомы значительно прочнее (он может вытеснять хлорамфеникол) Стрептомицин (и. по-видимому, некоторые иные антибиотики) присоединяется к рибосоме я нарушает процесс считывания информации с молекулы информационной РНК при этом возникают и т мaтичe киe ошибки и вместо одних (нужных) аминокислот начинают включаться другие аминокислоты получаются белки с совершенно Иными свойствами и микроорганизм оказывается нежизнеспособным. Пуромицин (антибиотик, содержащий остаток 6-диметиламинопурина и обладающий антибактериальным и некоторым противоопухолевым действием) специфически подавляет саму стадию сборки аминокислот, стадию образования пептидов. Он отрывает от рибосом незаконченные пептидные цепи, вытесняя концевые транспортные РНК. [c.133]

Предположение о том, что железо в виде внутриклеточного гидратированного полимера оксида железа (П1) диаметром 70 А промотирует образование свободных субъединиц было выдвинуто Залтманом с сотр. [108]. Такой механизм только в том случае согласуется с образованием in vivo апоферритина, если последний распадается, а затем вновь образуется вокруг ядра i[109]. Изменчивость размера и формы железосодержащих ядер ферритина заставляет усомниться в том, чтобы такие неправильные объекты контролировали сборку белковой оболочки [109]. Кроме того, если это единственный механизм, которым стимулируются биосинтезы, он должен требовать значительного предварительного накопления железа в клетке. [c.322]

Процесс разборки рибосомных частиц является обратимым, т. е. в определенных условиях можно осуществить in vitro самосборку рибосомных частиц, причем каждый этап этого процесса протекает спонтанно. Так, инкубация 23 S рибосомальной РНК со структурным белком В бо в определенных условиях приводит к РНП-частицам 28 S, которые в свою очередь при взаимодействии с белком А-П и A-I подвергаются сборке в субъединицы 50 S через стадию 36 S—43 S РНП-частиц [c.465]

Поскольку известно, что отросток фаговой частицы устроен довольно сложно, полагали, что его сборка из различных белковых субъединиц — процесс настолько сложный, что его невозможно исследовать детально с помощью имеющихся экспериментальных методов. Однако в 1965 г. Эдгар и Вуд сделали совершенно неожиданное открытие, показавшее, что сборка отростков Т-четных фагов и их присоединение к уже существующей фаговой головке, заполненной ДНК, может происходить спонтанно in vitro. Для таких экспериментов Эдгар и Вуд получали концентрированные лизаты клеток Е. oli, зараженных различными генетически дефектными мутантами Т-четного фага (природу этих мутантов мы рассмотрим позднее). Ни в одном из этих лизатов не содержалось ин--фекционных частиц фага, так как в условиях, в которых осуществляли заражение, каждый из мутантов утрачивал способность к синтезу какого-то определенного компонента фагового отростка. Однако при смешивании некоторых лизатов получали значительный урожай инфекционных, структурно зрелых фаговых частиц это объясняется, по-видимому, тем, что каждый из лизатов обеспечивал фаговую частицу тем структурным компонентом отростка, которого не было в другом лизате. В результате огромной работы по изучению способности лизатов комплементировать друг с другом таким образом Эдгару и Вуду удалось детально показать морфогенетическую последовательность последней стадии процесса созревания фаговых частиц (фиг. 136). [c.269]

В свете этих данных стали понятны ранние наблюдения Г. Шрамма, показавшего, что обработка слабой щелочью, снимающей положительные заряды основных аминокислот, приводит к расщеплению частиц ВТМ иа составляющие белковые субъединицы и потере инфекционности. Дальнейшее исследование этого явления привело X. Френкель-Конрата и Р. Вильямса к открытию, что при восстановлении нейтрального значения pH в растворе, содержащем смесь белковых субъединиц и очищенную РНК ВТМ, не только восстанавливается исходная структура вирусных частиц, но и вновь появляется способность заражать растения табака (фиг. 229). Этот эксперимент, так же как и кристаллизация ВТМ за 20 лет до этого, наделал много шума, т. к. он был воспринят как удачная сборка живой молекулы из неживых составных частей in vitro. Менее сенсационный аспект этого открытия заключался в следующем. Было получено веское доказательство важнейшего положения молекулярной генетики,— что вторичная, третичная и четвертичная структуры белка определяются первичной структурой полипептидной цепи и что образование сложных макромолекул ярных объединений происходит путем самопроизвольной сбор- [c.464]

КИ бэлее простых субъединиц. Таким образом, эта работа предвосхитила открытие злачлгель ш бэлее сложного процесса самопроизвольной сборки отростка Т-чег11ых. фагов, сделанного Эдгаром и Вудом (см. гл. XII). [c.465]

Эти признаки еще не были воспроизведены полностью во фракционированной системе реконструкции, но некоторый успех в идентификации отдельных компонентов был достигнут. Из ооцитов Xenopus выделен белок сборки. Это пентамер, содержащий идентичные субъединицы по 29000 дальтон. Это белок, преобладающий в ооцитах, и локализован он в нуклеоплазме. Антитела, полученные против этого белка, реагируют с белками нуклеоплазмы многих эукариот. Следовательно, можно предположить, что этот белок соответствует эволюционно какой-то универсальной функции, закрепленной в процессе эволюции. Он был назван нуклеоплазмином. [c.372]

Смотреть страницы где упоминается термин Сборка ППК из HS-субъединиц: [c.353] [c.246] [c.343] [c.56] [c.143] [c.353] [c.327] [c.53] [c.54] [c.55] [c.461] [c.152] [c.311] [c.114] [c.93] [c.135] [c.178] [c.320] [c.47] [c.412] [c.426] [c.464] [c.204] [c.65] [c.65]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология