Буфер мочи

Концентрация фосфатных ионов в тканях, и особенно в крови, незначительна и поэтому буферная емкость их невелика. Следует, однако, учесть, что нз организма с мочою выделяется довольно значительное количество фосфатов (первичных н вторичных) и они составляют главный буфер мочи pH мочи варьирует в больших пределах и в норме колеблется между 5 и 7. При образовании избыточного количества кислот в организме с мочою выделяются преимущественно первичные фосфаты. Наоборот, при избытке в организме щелочи с мочой выводятся вторичные и даже третичные фосфаты. [c.208]

Фосфатный буфер имеет наибольшее значение в таких биологических жидкостях, как моча и соки пищеварительных желез. Благодаря белкам все клетки и ткани организма обладают определенным буферным действием. В связи с этим попадающее, например, на кожу человека небольшое количество кислоты или щелочи довольно быстро оказывается нейтрализованным. [c.82]

Основания также связываются буферами крови и выделяются с мочой в виде главным образом одно- и двухзамещенных фосфатов. [c.100]

Обсуждение. По этой простой методике анализа белковых гидролизатов можно определять 23 соединения, включая обычные аминокислоты. Однако если эти аминокислоты содержатся в физиологических жидкостях, таких, как плазма крови, моча, гомогенаты тканей, то для полного анализа требуется более сложная методика. При одноколоночном методе анализа отпадает необходимость регенерации колонки и уравновешивания смолы буфером. [c.70]

Цвет и мутность. Когда с помощью индикаторов определяют рн растворов, имеющих собственный цвет, как это имеет место, например, при определении pH мочи или экстрактов овощей, то необходимо как-то компенсировать эффект наложения цветов. Можно поместить в штатив рядом две пробирки одну — с контрольным раствором, содержащим буфер плюс индикатор, а другую— с неизвестным раствором, к которому добавлен индикатор. Теперь, еслн сзади контрольной пробирки поставить пробирку с неизвестным раствором без индикатора, а сзади второй пробирки — пробирку с одним только буфером, то можно грубо скорректировать разницу в цвете индикатора (рис. 4.7). Штатив с пробирками нужно установить против яркого света и затем смотреть на свет по очереди сразу сквозь две пробирки. Этот прием позволяет более точно сравнивать неизвестный и контрольный растворы. С его помощью может быть произведена также поправка на мутность раствора. [c.240]

Вносят в дистилляционную колбу 5 мл исследуемой мочи и 0,5 мл серной кислоты, соединяют колбу с установкой для дистилляции. Ведут перегонку с паром со скоростью 10 мл дистиллята в минуту. Отбирают точно 50 мл дистиллята в мерный цилиндр. Из этих 50 мл берут 10 мл и помещают в мерную колбу на 25 мл. Добавляют 2,5 мл боратного буфера, 1 мл хромогенного реактива и доводят бидистиллированной водой до метки. Перемешанную пробу оставляют на час, избегая прямого солнечного освещения, после чего фотометрируют. [c.39]

И. X. применяется для разделения катионов металлов, напр, смесей лантаноидов и актиноидов, 2г и НГ, Мо и W, КЬ и Та последние разделяют на анионитах в виде анионных хлоридных комплексов в р-рах соляной и плавиковой к-т. Щелочные металлы разделяют на катионитах в водных и водно-орг. средах, щел.-зем. и редкоземельные металлы-на катионитах в присут. комплексонов. Большое значение имеет автоматич. анализ смесей прир. аминокислот на тонкодисперсном сульфокатионите.в цитратном буфере при повыш. т-ре. Аминокислоты детектируют фотометрически после их р-ции с нингидрином или флюориметрически после дериватизации фталевым альдегидом. Высокоэффективная И. X. (колонки, упакованные сорбентом с размером зерен 5-10 мкм, давление для прокачивания элюента до 10 Па) смесей нуклеотидов, нуклеозидов, пуриновых и пиримидиновых оснований и их метаболитов в биол. жидкостях (плазма крови, моча, лимфа и др.) используется для диагностики заболеваний. Белки и нуклеиновые к-ты разделяют с помощью И. X. на гидрофильных высокопроницаемых ионитах на основе целлюлозы, декстранов, синтетич. полимеров, широкопористых силикагелей гидрофильность матрицы ионита уменьшает неспецифич. взаимод. биополимера с сорбентом. В препаративных масштабах И. х. используют для вьщеления индивидуальных РЗЭ, алкалоидов, антибиотиков, ферментов, для переработки продуктов ядерных превращений. [c.264]

Ход анализа. 5 мл исследуемой мочи подкисляют 0,5 мл серной кислоты и перегоняют с водяным паром в 100-миллилитровый сосуд. Отбирают 0,5 мя дистиллята, смешивают его с 0,5 мл буфера, добавляют 2 мл свежеприготовленного хромогенного реактива и 2 мл воды. Перемешивают и оставляют на час при комнатной температуре в темноте. [c.196]

Полярографический метод, основанный на измерении высоты каталитических волн, был предложен также для определения цистина в гидролизатах белка б°-збз цистина и белка в моче , белка в цереброспинальной жидкости , белка в инсулинезее, 367 дисульфидных и сульфгидрильных групп в природных веществах , белков в элюате после хроматографирования белковых препаратов вэ. Пенициллин в свежеприготовленных растворах (в аммиачно-кобальтовом буфере) не дает каталитической волны, но через некоторое время каталитическая волна появляется . 371 Бензилпенициллин восстанавливается полярографически при рН=4,5, образуя две волны . [c.53]

Белки мочи анализируют практически теми же методами, что и белки сыворотки. Описанные выше основные типы распределения белков можно различить с помощью любого электрофоретического метода, дающего достаточное разрешение белков плазмы, например с помощью электрофореза в агарозном геле или на ацетате целлюлозы. Можно также применять электрофорез в полиакриламидном геле в буфере с ДСН, так как при клубочковой протеинурии в моче преобладают белки со значительно более высокой молекулярной массой, чем при канальцевой протеинурии [1149]. [c.364]

Антигены количественно определяют путем смешивания пробы сыворотки, плазмы, цереброспинальной жидкости или мочи с суспендированными в буфере латексными частицами диаметром 0,8 мкм, на которые нанесены антитела. Антигены из пробы агг- [c.223]

Для приготовления геля с высоким содержанием мочевины ее добавляют во все маточные растворы. При растворении мономеров до Г =4 О концентрацию мочевины приходится ограничивать значением 2 —ЗМ. Зато маточный раствор буфера можно приготовить на 1 ОМ моче вине и такой же концентрации раствор ее использовать для доведения до расчетного объема вместо воды. [c.51]

Белок Октагалогенсульфофтален, полипропиленгликоль, буфер, смачиватель А I 0-100 Моча [c.237]

Ход анализа. Во внешний цилиндр чашки Конвея вносят 1 мл мочи (мочу предварительно разводят 1 200), 0,5 мл фосфатного буфера (pH 6,5—6,6) и 0,5 мл раствора уреазы (1 часть соевой муки в течение 18 часов экстрагируют 5 частями воды и центрифугируют цеитрифугат сливают и к нему добавляют V20 объема уксуснокислого буфера pH 5,0 через [c.205]

В работе Хираты и сотр [17] описана аналогичная пленочная ячейка объемом 0,15 мкл с рабочим электродом, изготовленным из прокаленного под давлением пирографита Авторы применили эту ячейку для определения метаболитов тирозина и триптофана в моче Разделение проводилось на микроколонке длиной 60 м, заполненной частицами пористого силикагеля (60 мкм) Разделение проводили при малой объемной скорости (1 мкл/мин) В качестве подвижной фазы использовали 0,2 ]Sf ацетатный буфер (pH 4,0) Искомые метаболиты детектировались путем измерения окислительного тока при потенциале рабочего электрода 1,00 В относительно насыщенного каломельного электрода [c.114]

Рис 4-17 Селективное детектирование метаболитов катехоламина в моче двух здоровых людей (а б) с применением вольамперометрического детектора с последовательно расположенными электродами [24] (с разрешения авторов) А анодный сигнал Б катодный сигнал Потенциалы (относительно Ag/Ag l) анодный +0 90 В катодный -0 05 В Колонка 154 мм х 0 5 мм (внутр ди ам) неподвижная фаза кремнезем модифицированный ОДС (5 мкм) по движная фаза метанол/фосфатный буфер (О 1 моль/л pH 3 6) содержащим [c.118]

Р-Нафтохинон-4-сульфокислота, применявшаяся Фолиным [98, 99] для анализа аминокислот в моче и крови, обладает умеренной реакционной способностью [100]. При реакции с аминогруппой желтая окраска, свойственная реагенту, очищенному по методу Фолина [98], переходит в желтовато-коричневую. В ходе реакции происходит арилирование аминогруппы с отщеплением сульфогруппы реагента. Определение проводят в несколько стадий [100] вначале инкубируют без доступа света реакционную смесь, включающую раствор белка, бикарбонатный буфер (pH 8,8), диоксан и раствор НХС в 50%-ном метаноле, а затем добавляют уксусную кислоту и диоксан. Далее определяют разницу в величине поглощения при 480 нм рабочего и контрольного раствора, не содержащего белка Аб48о = 3800 М см Ч При инкубации контрольный раствор приобретает интенсивную окраску, однако он почти полностью обесцвечивается при последующем подкислении уксусной кислотой. Окраска, свойственная производным по аминогруппе, не исчезает при подкислении. Присутствие диоксана до и после подкисления предотвращает осаждение модифицированного белка. В табл. 3 сопоставлены результаты модификации аминогрупп ряда белков с помощью НХС и некоторых других реагентов. [c.360]

Этим свойством буферных систем также широко пользуются при исследованиях. Например, измерение pH неразведенной мочи колориметрическим способом встречает б ольшие затруднения вследствие того, что моча сама имеет интенсив1ную окраску. Интенсивность этой окраски настолько велика, что ее нельзя скомпенсировать вышеуказанным способом в камоараторе Уолполя. Но моча представляет собой фосфатный буфер, и, пользуясь этим обстоятельством, можно избавиться от естественной окраски мочи разведением.. Разводя мочу в 10—20 раз, сводим окраску на нет, а затем уже добавляем соответ- [c.177]

Полученные по обоим способам цифры обычно довольно точно отвечают количеству одноосновного фосфата, но, если моча содержит много органических кислот, часть их тоже оттитровывается. Титрование с фенолфталеином, однако, не совсем правильно, так как pH перехода фенолфталеина в окрашенное состояние лежит по сравнению с pH крови в более щелочной области, а для того, чтобы учесть экономию оснований (и выведение избыточных кислот), следовало бы титровать мочу от ее pH до pH крови. Это обстоятельство учтено в методе Ван-Слейка—Пальмера, где титрование ведется до pH 7,4 в присутствии имеющего эту реакцию фосфатного буфера (приготовление этого буфера см. определение pH крови по Кёллену — Хаукинсу). [c.318]

Определение. Осаждение и извлечение общих порфиринов. В центрифужную пробирку отвешивают 0,5 г кальций ацетата, добавляют Ю мл мочи, время от времени тщательно перемешивают и через два часа центрифугируют, добавив сначала 4—5 капель эфира. Осадок промывают, тщательно перемешав, 10 мл фосфатного буфера и снова центрифугируют. Буфер сливают, а порфирин извлекают из осадка н. КОН. Прибавляют по 4 мл КОН, размешивают стеклянной палочкой и центрифугируют 5 минут. Отстой собирают в мерный цилиндр. Извлечение повторяют до тех пор, пока щелочное извлечение не перестанет давать спектр в слое 4 см. Обычно нужно 3—4 извлечения. Щелочные извлечения подкисляют НС1 и доливают до черты, В растворе определяют общие порфирины, сравнивая с 1%-ным раствором порфирина, убавляя толщину слоя, пока полосы поглощения не будут одинаковой интенсивности в пробе и стандарте (или сравнивают интенсивность флюоресценции стандарта и пробы в флюорометре или же под черной ла.мпой — см. стр. 93). [c.332]

Изучая методом Бреннера и др. [23] аминокислоты мочи, Опиенска-Блаут и др. [34] определили величины Rf для 33 аминокислот в трех растворителях (табл. 17.1). Кроме указанных в таблице растворителей эти авторы опробовали большое число. специальных растворителей. Разделение групп лейцина и валина проводилось смесью фенол—лг-крезол—боратный буфер при pH 9,3 (1 1 1). Для основных аминокислот использовалась смесь ацетон—пиридин—н-бутанол—вода—диэтиламин [c.481]

Фосфатный буфер имеет наибольшее значение в таких 1юлогических жидкостях, как моча и соки пищеварительных желез. [c.110]

Кроме буферных растворов, в которых производились измеропия сурьмяными электродами с целью выяснить воспро1гз]и)димость и постоянство потенциалов последних, были произведены измерения pH в таких объектах, как гумииовая кислота, моча, раствор белка и гель желатины в фос-( атиом буфере. [c.111]

Большое значение для сохранения постоянства pH крови и тканей организма имеют выделительные системы организма, функция которых регулируется центральной нервной системой. Выше уже указывалось на значение удаления углекислого газа при дыхании. Следоват.ельно, выделительная функция легких играет роль в удалении излишка углекислого газа из плазмы крови, а отсюда — в сохранении емкости бикарбонатного буфера. Еще более важная роль принадлежит выделительной функции почек. Почки выделяют с мочой различные вещества. При избыточном образовании и накоплении в организме органических кислот, последние выделяются из организма частично в свободном o тoя ши, но главным образом в виде аммонийных солей. В виде аммонийгюй соли выделяется также с мочой серная кислота. Интересно при этом отметить, что в почках происходит нейтрализация кислот, доставляемых к ним кровью, аммиаком, отщепляющимся от глютамина (подробнее см. стр. 493). [c.209]

Ход анализа. 1 мл исследуемой мочи помещают в пробирку с притертой пробкой и добавляют 0,4 мл хлорной кислоты. Пробирку помещают на 10 мин в кипящую воду для гидролиза фенольных конъюгатов и затем быстро охлаждают под краном до комнатной температуры. Добавляют 4 мл эфира, закрывают пробкой и 5 раз переворачивают для экстракции фенола оставляют до разделения слоев. Дальнейший анализ удобно проводить на фарфоровой пластинке для капельного анализа. В лунку пластинки помещают 0,2 мл боратного буфера, затем 0,1 мл эфирного экстракта и 0,05 мл или 2 капли реактива Джибса. Смесь в пределах 3 мин окрашивается в синий цвет интенсивность окраски пропорциональна содержанию свободного и связанного фенола в моче. Интенсивность оценивают по пятибалльной системе (—, , +, ++, + + +). Иногда появляющееся преходящее пурпурное окрашивание смеси в расчет принимать не следует. Оно исчезает к моменту посинения. [c.40]

Крезол вместе с другими фенолами перегоняют из исследуемой мочи с паром и затем нитруют. Продукт нитрования крезола — 1-метил-3,5-динитро-4-гидроксибензол — восстанавливается на ртутном капельном электроде в виде двух ступеней. Помимо нитрованного крезола, в смеси присутствуют нитрофенолы, также восстанавливающиеся при полярографировании. Полярограмма смеси в щелочном буфере дает три волны, имеющие потенциалы полуволн при —0,6 в, —0,75 в и —0,95 в относительно насыщенного каломельного электрода. Для аналитического определения нитрокрезола используется только первая волна другие нитрофенолы в этой области не восстанавлива-лотся и определению не мешают. Описываемый метод разработала Вегдегоуа-Р1ьегоуа и др. (1954). [c.204]

Оба соединения устойчивы в цитратно-фосфатном буфере при pH 2,2—8,0 в течение 6 ч, а при pH 7 — при нагревании на водяной бане в течение 30 мин, так что затруднений при извлечении этих соединений из биологического материала не возникает. При однократном введении с пищей меченного в нафталиновом цикле соединения самкам крыс через 4 дня выводилось с мочой 78% метки и с калом — 5,2%. Выделение метки происходило быстрее всего в течение первых суток и по существу заканчивалось через 48 ч. В сравнимых условиях с мочой выводилось 90% метки из С-а-нафтола и только 67% метки из а-нафтилглюкозида, меченного в углеводной части. Приблизительно 19% метки выводилось в виде исходного соединения — неизменного глюкозида. Введение метки в углеводный остаток показало, что приблизительно 50% введенного глюкозида предварительно расщепляется, а выделяющийся при этом а-нафтол конъюгирует и выводится из организма в виде глюкуронида и сульфата. Кроме того, часть а-нафтола выделяется в неизменном виде. Только 1% глюкозида окисляется до соответствующего глюкуронида [222]. [c.102]

Фосфатный буфер состоит из смеси кислой соли 1ЧаН2Р04 и основной соли Ма2НР04. Эти соли оказывают на кислоту или щелочь буферное действие, как это происходит в системе угольная кислота — бикарбонат. Всякий избыток как кислого, так и основного фосфата, образовавшийся в крови, быстро выделяется почками. Величина pH мочи тесно связана с фосфатной буферной системой, поскольку многие кислотные или щелочные продукты обмена веществ выделяются с мочой в виде солей фосфорной кислоты. [c.396]

Ультразвуковой анализ хориогонадотропина человека. Смешивают 1 мл образца (мочи или буферного раствора) со 100 мкл реагента, приготовленного на 0,05 М натрий-фосфатном буфере, pH 7,2, и содержащего в 1 л 0,1 моль хлорида натрия 0,25 г тритона QS-44 2,5 мг конъюгата антител с пероксидазой. Погружают в эту смесь индикаторную бумагу, воздействуют ультразвуком в течение 5 мин, переносят бумагу в проявитель (приготовленный на 0,05 М натрий-фосфатном буфере, pH 6,5,- и содержащий в 1 л 0,1 моль хлорида натрия 2 г бычьего сывороточного альбумина 300 мг 4-хлорнафтола 0,25 г тритона QS-44), инкубируют 10 мин при комнатной температуре и измеряют отражательную способность, как указано выше. [c.134]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология