Культура, рост бактерий

К настоящему времени открыто очень много самых различных (и химически и биологически) антибиотиков, поэтому невозможно предложить какую-то универсальную систему для их хроматографии. Для обнаружения классических антибиотиков разработаны были в свое время химические цветные реакции, но обычно их обнаруживают методом биоавтографии. При разработке и идентификации новых антибиотиков стал традиционным метод определения их хроматографических спектров (профилей) посредством биоавтографии. Если установлено, что определенная среда проявляет свойства антибиотика по отноще-нию к какому-либо бактериальному штамму, то эту среДу или экстракт из нее хроматографируют в серии выбранных растворителей и подвергают хроматограммы (в виде полосок) био-автографическому обнаружению (прижимают полоски к пленке с культурой и определяют зоны, в которых подавляется рост бактерий). Значения Rf пятен соединений, проявляющих свойства антибиотика, измеряют во всех растворяющих системах и строят кривую зависимости Rf от используемой системы (на оси ставят номера систем). Соединяя нанесенные точки, получают ломаную линию, которую и называют хроматографическим спектром или профилем. Этого обычно достаточно для получения полной хроматографической характеристики или для идентификации исследуемого антибиотика. Некоторые авторы используют до 14 растворителей для построения хроматографического спектра. В качестве примера приведем перечень систем, исполь- [c.139]

Скорость роста бактерий. Показателем окисления углеводорода или битума микроорганизмами является рост культуры бактерий на материале, который служит единственным источником углерода. Это обоснованный показатель, так как рост может происходить только тогда, когда микроорганизм окисляет подложку. С ростом микроорганизмов их количество возрастает и среда мутнеет. Можно легко наблюдать за ростом организмов путем их подсчета через различные промежутки времени или путем. измерения помутнения (рис. 5.1 и 5.2). Подсчет или измерение помутнения не дает достаточной информации о том, какие биохимические процессы протекают в данной среде. Следует также учесть неизбежные ошибки при подсчете бактерий. Организмы могут быть извлечены из среды после завершения роста или на различных его стадиях, а среду подвергают анализу для определения промежуточных и конечных продуктов процесса микробиологического распада. [c.180]

Аэрация. Всем облигатным аэробам в качестве акцептора электронов необходим молекулярный кислород. Для бактерий, растущих на агаре или в тонких слоях жидкости в присутствии воздуха, кислорода обычно вполне достаточно. В жидких средах при большом объеме жидкости аэробные бактерии могут расти только на поверхности, так как в более глубоких слоях по мере удаления от поверхности условия приближаются к анаэробным. Для нормального роста аэробных микроорганизмов в глубоких слоях жидкой культуры требуется аэрация. Микроорганизмы способны использовать только растворенный кислород. В то время как минеральные соли и органические вещества можно добавлять к среде в концентрациях, обеспечивающих рост бактерий на протяжении нескольких часов и даже дней, с молекулярным кислородом этого еде- [c.181]

С начала 1970-х гг. среди виноделов стало модным вносить в сусло подготовленные культуры яблочно-молочных бактерий, не дожидаясь завершения спиртового брожения. Это позволяло ускорить процесс спиртового брожения с уменьшением образования побочных продуктов, свойственных молодому вину. Существенные различия в начале и завершении брожения молодых красных вин даже при внесении таких подготовленных культур продолжают быть предметом изучения, особенно в тех регионах, где содержание этилового спирта в вине составляет 12-13% об. Поскольку в настоящее время общепризнанно, что при дрожжевом брожении в сусле имеется дефицит питательных веществ и что в него вносят добавки, то исследования сосредоточены в основном на влиянии этого дефицита на замедление роста бактерий и образование побочных продуктов брожения. [c.168]

В настоящее время наиболее прогрессивным признан проточный метод культивирования микроорганизмов, который обеспечивает непрерывную подачу в ферментер как питательной среды, так и посевного материала. Размножение микроорганизмов и биосинтез фермента регулируют при использовании этого метода по мере поступления питательной смеси в ферментер. Такой ферментер представляет собой вращающийся трубкообразный реактор, через один конец которого в него поступает питательная среда и культура микроорганизмов, а из другого — выводятся ферменты, продукты жизнедеятельности и бактериальная масса. Основное достоинство метода — возможность длительное время поддерживать в автоматическом режиме рост культуры микроорганизма. Например, культура ацетонобутиловых бактерий находилась в таком реакторе в состоянии непрерывного размножения в течение 200 суток (И.Д. Иерусалимский с сотр., 1986). [c.78]

В среду добавляют кукурузный экстракт (30-70 г/л), содержащий молочную и пантотеновую кислоты, усиливающие рост бактерий. Пантотеновую кислоту, стимулирующую также синтез витамина, рекомендуют вносить s сред> дополнительно. Бактерии культивируют при 30°С, поддерживая pH на уровне 6,5 - 7,0 путем введения (NH4)0H. Ферментацию производят в ферментерах на 500 л, содержащих 340 л среды, инокулированных 7 л посевного материала. В первые 80 ч культура растет под небольшим давлением и при слабом перемешивании (без аэрации), в следующие 88 ч включают аэрацию (2 м ч) и перемешивание. Возможны некоторые вариации в культивировании. Витамин В,, сохраняется в клетках бактерий, поэтому проводят его экстракцию 1) выделение витамина из клеток и превращение его в цианкобаламин, 2) выделение неочищенного продукта ( 80% чистоты), который можно использовать в животноводстве.З) дальнейшую очистку до уровня 91 - 98% ( для медицинских целей) [9]. [c.48]

Как правило, скорость биохимических реакций удваивается при повышении температуры на каждые 10—15° в диапазоне 5—35° С (рис. 3.17). При температуре выше 40° С активность мезофильных бактерий резко падает и начинается рост термофильных культур. Термофильные бактерии активно действуют в диапазоне 45—75° С (оптимальная температура — около 55° С). Этот более высокий температурный диапазон не используется при очистке сточных вод, так как рабочую температуру трудно поддерживать на таком высоком уровне, а также вследствие того, что термофильные бактерии более чувствительны к небольшим изменениям температуры. Особо опасен интервал [c.85]

Рис. 9.4. Накопительные культуры сульфатредуцирующих бактерий. Рост после инокуляций среды сероводородным илом. А. Среда содержит лактат и сульфат железный гвоздь обеспечивает достаточно низкий окислительно-восстановительный потенциал (в результате катодной поляризации). Б. Доказательство использования молекулярного водорода сульфатредуцирующими бактериями пробирка Дёрхема, заполненная Н2, перед инкубацией плавает, а после инкубации засеянной среды оказывается на дне. В. Рост бактерий в закупоренной бутыли в присутствии малых количеств органического вещества за счет восстановления сульфата и анаэробной коррозии железа. Г. Накопление сульфатредуцирующих бактерий в двойном сосуде Зёнгена, Сосуд II заполняют средой, содержащей лактат и сульфат затем впускают в него Н2, и часть жидкости переходит в сосуд I (новые уровни показаны пунктирными линиями) в течение двухдневной инкубации при 30°С значительная часть Н2 потребляется.

Широкое распространение бактериостатических и бактерицидных агентов ясно показывает, что бактерии восприимчивы к действию различных химических веществ, которые в зависимости от кх природы либо ингибируют рост бактерий, либо убивают их. Широко известным примером ингибитора бактериального роста является фенол, а хлор — наиболее известный и широко используемый химический бактерицидный агент. Присутствие ингибиторов в бактериальной культуре может быть либо преднамеренным, либо непреднамеренным, и именно последний случай имеет отношение к очистке загрязненных стоков. Непреднамеренное присутствие ингибирующих соединений в процессе биологической очистки сточных вод проистекает от появления ингибирующих загрязнений (субстратов), образования интермедиатов-ингибиторов и высвобождения соединений-ингибиторов при клеточном лизисе. [c.96]

Накопительную культуру сульфатвосстанавливающих бактерий (СВБ) получали аналогичным образом в элективной питательной среде Постгейта "С". Проявление роста СВБ в виде почернения среды за счет выделения сероводорода и образования сульфида [c.139]

Подготовленное сырье освобождают в декантаторе от взвешенных частиц и непрерывно подают в нижнюю часть ферментера (метантенка) емкостью 4200 м . Одновременно в ферментер поступает посевной материал культуры микроорганизмов, предварительно выращенный в специальных аппаратах. Для выращивания продуцента требуются облигатно анаэробные условия, ибо даже следы кислорода подавляют рост бактерий. При создании анаэробных условий в среду подают диоксид углерода или газы, вьщеляющиеся в процессе ферментации. Ежедневно из метантенка отбирают 25 — 30 % объема среды. Продукт ферментации стабилизируют, подкисляя соляной или фосфорной кислотой до pH 6,3 —6,5 и добавляя 0,2—0,25 % сульфита натрия, что предотвращает разрушение витамина при тепловой обработке, особенно существенное в щелочной среде. В дальнейшем отобранная часть культуральной жидкости дегазируется, упаривается в вакууме кон- [c.56]

Постоянно контролируя содержание СОг и изменение pH, получают информацию о метаболизме и характере роста бактерий в культурах. Для определения СОг используют электрод фирмы Орион (модель 95-02) и измерительный прибор с погрешностью отсчета не хуже ОД мВ. [c.35]

Среди различных штаммов микроорганизмов, используемых в технологии очистки почвы, сточных и природных вод от органических, в том числе и нефтяных загрязнений, большой популярностью пользуются различные виды штаммов бактериальной культуры Rhodo o us [118, 128, 142]. При этом для повышения эффективности размножения и роста бактерий, а соответственно, для ускорения биодеградации нефтяных углеводородов указанную культуру вносят совместно с источниками азота и фосфора. [c.194]

Как и у других электронных методов, наличие усиления сигналов позволяет значительно увеличить разрешающую способность, которая ограничивается в этих случаях лишь достигнутым соотношением сигнал/шум. Поэтому под разрешающей способностью метода дисперсионного анализа можно понимать также его способность передавать тонкие детали распределения, например, моды (вершины) полимодального распределения. Это имеет большое значение, в частности, для биологии и медицины, так как позволяет обнаружить наличие нескольких популяций клеток при исследовании патологических эритроцитометрических кривых, динамики роста бактерий и одноклеточных водорослей, клеток в культурах тканей и др. [c.66]

Эпифитными называют бактерии, живущие на поверхности растений — листьях, стволе, корнях — и для своего развития использующие различные выделения растений. В Институте микробиологии им. А. Кирхенштейна АН ЛатвССР выделены активные культуры эпифитных бактерий, стимулирующих образование корневой системы растений, ускоряющих их рост и таким образом увеличивающих урожай культурных растений. Установлено, что эти эпифитные бактерии синтезируют витамины группы В, гетероауксин и другие полезные растениям вещества. [c.127]

Такие сельскохозяйственные культуры, как кормовые злаки, кукуруза и люцерна, широко используются в качестве корма для скота, поэтому очень важно обеспечить правильные условия их хранения в течение многих месяцев. Традиционно для этого применяют природные молочнокислые бактерии, для которьгх растительный материал служит субстратом при синтезе молочной и уксусной кислот. Эти кислоты подавляют рост других микроорганизмов, способствуя сохранению кормовой растительной массы (силоса). Если молочнокислые бактерии присутствуют на свежем растительном материале в небольшом количестве, нужно добавить бактериальный посевной материал (обычно La toba illus plantanim). К сожалению, эта мера оказывается малоэффективной в том случае, когда растительная культура содержит недостаточное для поддержания роста бактерий и производства молочной кислоты количество водорастворимых углеводов. [c.294]

Рост бактерий и дрожжей в культуре приводит в основном к образованию более или менее равномерно мутной суспензии клеток, имеющей вид тонкой эмульсии типа сливок в курином бульоне. pH такого раствора в конце наиболее энергичного роста микробов (к этому времени большая часть питательной среды бывает израсходована) может быть выше (pH 8) или ниже (pH 3) в зависимости от буферной емкости и природы входящих в состав раствора компонентов. Так, кукурузный экстракт, содержащий сложные (белковые) источники азота, будет иметь более высокое значение pH, чем среда, полученная из аммиака, глюкозы и других простых составляющих. Запах ее может изменяться от приятного дрожжевого (некоторые дрожжи) или приятно землистого (некоторые виды Streptomy es) до различной степени неприятных (например, запаха тухлой капусты). [c.219]

Так называемый подтверждающий анализ проводят для подтверждения или отрицания присутствия колиформ в пробе, предварительный анализ которой дал положительный результат. При этом используют одну из двух процедур, показанных на схеме на рис. 3.5. Проволочную петлю применяют для пересева колоний из лактозной трубки с положительным результатом после 24- или 48-часовой инкубации в бродильную трубку, содержащую бульон из бриллиантовой зелени, лактозы и желчи. Если рост бактерий с выделением газа происходит в пределах 48 ч при 35°С, присутствие колиформ подтверждено. Если газ не выделяется, анализ считается отрицательньш. Другая методика проведения подтверждающего анализа заключается в штриховом посеве культуры из пробы с положительным предположительным анализом на среду Эндо или ЭМГ в чашках Петри с помощью стерильной проволочной петли. Инокулированные чашки подвергают инкубации в течение 24 ч при 35°С. Колонии бактерий, развивающиеся на поверхности твердых сред и отличающиеся зеленым блеском, считаются типичными колиформными ко- [c.66]

Методику анализа, схематически показанную на рис. 3.7, нельзя использовать для непосредственной изоляции колиформ из воды, но ее применяют как подтверждающую после предположительного анализа. Сначала лроязводят посев замеренного объема пробы в бродильные трубки, содержащие лактозу или лауриново-триптозный бульон. Трубки, в которых наблюдается рост бактерий с выделением газа спустя 24 или 48 ч, используют для инокуляции культуры в среду, содержащую бульон ЕС. В этой среде пробу подвергают инкубации в водяной ванне при температуре 44,5 0,2°С, погружая трубку до верхнего уровня среды. Из-за жестких требований к температурному режиму, необходимому для проведения анализа на фекальные колиформы, стандартные термостаты, обычно используемые в бактериологических анализах, неприемлемы. Рост с выделением газа говорит о присутствии фекальной колиформной группы если же газ не выделяется, то это свидетельствует об отсутствии последней. [c.69]

В природных смешанных культурах морских бактерий в лабораторных условиях отмечена еще большая скорость логарифмической фазы роста этих бактерий, чем Pseudomonas [43]. Для подсчета бактерий на морском берегу, загрязненном нефтью, была разработана техника с использованием скоростного гомогенизатора в сочетании с нетоксичными эмульгаторами и пеногасителями [82]. С помощью этого метода было установлено, что пляжи, загрязненные нефтью, содержат гораздо больше нефтьокисляющих бактерий, чем незагрязненные пляжи [29]. [c.144]

Ни ке мы приводим наиболее специфичный и убедительный эксперимент, результаты которого свидетельствуют в пользу важнейшей роли NH в фиксации азота. Скорость роста культур азотфиксирующих бактерий на безазо-тистой среде обычно ограничивается скоростью фиксации. Поэтому не удивительно, что в такой среде накапливается очень мало NHJ. При определенных условиях культивирования образование а-кетокислот, являющихся акцепторами NHJ, ограничивает рост С. pasteurianum, и тогда NHJ накапливается. Если к культуре, растущей в таких условиях, добавлять Nj% то накапливающийся NHJ содержит значительно большее количество N , чем любое другое соединение, выделенное из этих культур (табл, 72). [c.598]

Нами установлено, что рост указанных видов бактерий почти полностью подавляется, и питательная среда остается прозрачной при концентрации раствора выше 5-10 M. При ЫО М рост бактерий подавляется примерно вдвое ио сравнению с контролем. Более низкие концентрации ТБОА ие оказывают заметного влияния на рост культур, правда, установлена не ясно выраженная стимуляция роста культур разбавленными до 10 — 10 М растворами ТБОА. [c.99]

По жирнокислотному составу изучены и другие типы микроорганизмов [235], которые образуют различающиеся хроматограммы. Используя жирнокислотный состав в качестве диагностического критерия, прослежено изменение бактериальной массы с возрастом культуры бактерий Es heri hia oli, штамм К-12. На рис. 70 показана кривая роста бактерий и хроматограммы реакционной массы после гидролиза и метилирования [c.223]

ЧТО В ОДНОЙ фазе развития культура может иметь специфические жгутиковые антигены (специфическая фаза), а в другой — групповые антигены (групповая фаза). Любая из данных культур такого организма может либо полностью состоять из организмов, находящихся в какой-либо одной из фаз, либо представлять собой смесь организмов, находящихся в разных фазах. Обычно микроорганизм, находящийся в определенной фазе, сохраняет эту фазу в ряде генераций, однако нсегда может возникнуть рост бактерий, находящихся в другой фазе. Фактически антигены каждой фазы могут выявляться у различных типов, хотя специфические антигены, как правило, обнаруживаются у небольшого числа типов [29], Столь сложные антигенные свойства Salmonella, если их игнорировать, могут легко стать источником ошибки. [c.132]

Другим новым методом количественного определения аминокислот является микробиологический метод. Для этой цели используются различные культуры молочнокислых бактерий, культура Ьеисопоз1ос тезеп1его1йе8 и некоторые штаммы Иеигозрога. Интенсивность роста культуры определяется по мутности бактериальной суспензии, по количеству образующейся молочной кислоты или путем взвешивания мицелия [64—66]. Одну из модификаций микробиологического метода представляет метод определения аминокислот по количеству углекислоты, образующейся в результате ферментативного декарбоксилирования аминокислот бактериальными препаратами. Таким путем можно определить тирозин, гистидин, лизин и глутаминовую кислоту [67]. Для количественного определения какой-нибудь аминокислоты микробы высеваются на синтетическую среду, содержащую все необходимые аминокислоты и факторы роста, за исключением исследуемой аминокислоты. [c.34]

Не все сопутствующие микроорганизмы оказывают стимулирующее действие на рост бактерий, окисляющих метан. Так, в искусственной смеси культур с Ps. aeruginosa или Mi ro o us mazei наблюдается угнетение роста других видов бактерий. [c.266]

Источником фосфора при культивировании газоокис-ляющнх микроорганизмов могут служить различные соли фосфорной кислоты. Есть предположение, что фосфаты принимают участие в процессе окисления углеводородов и совершенно необходимы для роста бактерий. Оптимальной концентрацией фосфатов в среде является 0,1—0,5%. При культивировании на средах с пропаном и м-бутаном хороший рост наблюдается при концентрации 0,05%, дополнительное введение в среду фосфатов заметно стимулирует накопление культурой биомассы. [c.276]

Лучшие результаты наблюдаются при перемешивании — скорость роста бактерий повышается. Для некоторых культур газоокисляющих микроорганизмов рекомендуется не постоянное, а периодическое перемешивание. [c.278]

Для осаждения казеина этим способом хороню обезжиренное молоко (обрат) оставляют п чанах для самоскисания при температуре 25—30° С. Иногда прибавляют к молоку чистую культуру молочнокислых бактерий, которые ускоряют процесс скисания и препятствуют росту гни.лостных бактерий, или приливают вместо культуры молочнокислых бактерий небольшое количество кислой сыворотки. [c.99]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология