Кровь цитрата

Коэффициент активности кальция в сыворотке крови значительно ниже, чем в стандартном растворе равной ионной силы и концентрации, вследствие связывания большой части ионов этого элемента белком и образования недиссоциированных комплексов в растворе. В основном Са + связывают три аниона — бикарбонат, фосфат, цитрат. В физиологических растворах уменьшение активности Са + обусловлено в основном бикарбонатом. Распределение кальция во внеклеточной и внутриклеточной средах очень неоднородно. Во внеклеточной жидкости помимо ионизированного кальция имеется кальций, связанный белком и находящийся в виде хелатов. На внешней поверхности клетки кальций связан с функциональными группами мембраны и мукопротеинами — в общей сложности в этих компонентах сосредоточено около 90% общего кальция клетки. [c.496]

Так, калия ацетат применяется при отеках сердечного происхождения, как солевое диуретическое средство кальция лактат и кальция глюконат обладают действием подобно хлориду кальция, натрия цитрат создает щелочной резерв крови. [c.185]

Для приготовления кровяной среды к 10 мл крови кролика или барана добавляют 2 мл 5%-го цитрата натрия, разводят I 4 дистиллированной водой и разливают в пробирки. [c.213]

Из вены берут 2 — 3 мл крови и смешивают ее с 2 — 3 мл 2%-го цитрата натрия. Полученную после центрифугирования плазму удаляют и микроскопируют осадок. [c.230]

Перед посевом 8—10 мл крови разводят в 5 —6 раз ИХН с цитратом натрия (1 мл 4%-го цитрата натрия на 10 мл крови) и центрифугируют [c.346]

Микроскопия. Микроскопируют нативный препарат, мазок и толстую каплю крови. При отрицательном результате применяют метод обогащения — смесь 10 мл крови с 1 мл 3,8%-го раствора цитрата натрия центрифугируют в течение 10 мин при 1000 — 1500 об/мин, надосадочную жидкость отсасывают в центрифужную пробирку, а из осадка готовят нативные и окрашенные. Затем повторно центрифугируют надосадочную жидкость в течение 20 мин и из осадка снова готовят препараты, которые фиксируют и окрашивают по методу Романовского — Гимзы. Аналогичным образом окрашивают мазки из осадка спинномозговой жидкости, пунктатов лимфатических узлов и грудины. [c.360]

Кровь исследуют для обнаружения микрофилярий. Берут ее из пальца или мочки уха (несколько капель или 2 — 6 мл) и помещают в центрифужную пробирку с анти коагулянтом (5%-й раствор цитрата натрия). Кровь в пробирке центрифугируют, сыворотку сливают, эритроциты гемолизируют 20%-м раствором этанола или замораживанием, готовят препараты, окрашивают и микроскопируют их. [c.381]

Влияние цитрата натрия и гепарина на удаление амберлитом кальция из крови и сыворотки [492]. [c.269]

При интратрахеальном введении радионуклида Ре в виде нерастворимого оксида железа, он медленно и в незначительных количествах всасывается из легких. Через 30 суток в легких остается почти такое же количество Ре (61,2 %), какое было обнаружено через 1 ч после введения (75,3 %). Растворимые соединения железа (цитрат) вначале сравнительно быстро всасываются из легких в кровь, и через 2 сут. в легких обнаруживается всего 12,8 % от введенного количества. После этого срока дальнейшее выведение оставшегося железа происходит медленно. Через 30 сут. в легких остается еще 9,2 %. Такая задержка обусловлена образованием в легких комплексных соединений железа с тканевыми белками [1]. [c.270]

Общий объем смеси должен в 10 раз превышать первоначальный объем крови. Окраска коагулята в течение 10 мин изменяется от розовой до темно-коричневой, и к этому времени белок крови выделяется в осадок. Избыток оксалата или цитрата может помешать протеканию этого процесса. В этом случае к анализируемому раствору добавляют по каплям 2 н. серную кислоту, энергично перемешивая смесь и давая раствору постоять несколько минут после каждого добавления кислоты последнюю добавляют до тех пор, пока не появится темно-коричневая окраска. [c.103]

Растворяют таблетку гидроокиси натрия в никелевом Тигле ёмкостью 25 мл в нескольких каплях воды. Пипеткой помещают в тигель 1 мл крови и смешивают с раствором щелочи. (Пробы крови для анализа хранятся без свертывания после добавления 0,5%-ного раствора цитрата натрия.) Смесь осторожно выпаривают досуха на горячей плитке. Добавляют в тигель 2 г таблетированной гидроокиси натрия и нагревают на горячей плитке или горелке до разложения анализируемого вещества. Эту операцию желательно выполнять в вытяжном шкафу в связи с появлением неприятного запаха. После того как прекратится пенообразование и получится подвижная жидкость, тигель помещают в муфельную печь, имеющую температуру 600°. После прекращения выделения пузырьков тигель вынимают из печи и осторожно добавляют несколько миллиграммов перекиси натрия. Снова ставят тигель в муфель на несколько минут и затем снова добавляют перекись и так поступают до тех пор, пока при добавлении перекиси реакция не будет протекать. Перевертывают тигель набок, чтобы смыть со стенок непрореагировавшее вещество. Когда окисление закончится, вынимают тигель из печи и дают плаву остыть на стенках тигля. Наполняют тигель на две трети водой и растворяют плав. Переносят раствор в стакан емкостью 100 мл. Частично нейтрализуют гидроокись натрия, добавляя 7 лгл 6 н. соляной кислоты. Кипятят раствор 10 мин для разложения перекиси. Фильтруют раствор через бумажный фильтр ватман № 42 в колбочку и разбавляют до 50 мл. [c.210]

Для оценки смачивания поверхностей кровью используется краевой угол и угол наклона поверхности (см. 10), при котором происходило скатывание капли жидкости В качестве испытуемых поверхностей применяли гладкие полированные пластинки, на которые наносили капли цитратной крови, плазмы и сыворотки. Цитрат-ная кровь представляет собой раствор, содержащий 0,5 см цитрата на 10 смЗ крови. При определении угла скатывания применяли капли жидкости одинаковой массы, равной примерно 0,15 г. Для сравнения изучали смачивание испытуемых поверхностей водой. Показатели, характеризующие смачивание твердых материалов водой и биологическими жидкостями, приведены в табл. XI, 6. [c.372]

Имеется также указание на увеличение активности щелочной фосфатазы (оптимум рН=8—10) в крови при рахите. Вероятно, наиболее интересными для понимания механизма нарушений в обмене при рахите являются данные о том, что витамин В увеличивает выделение цитратов с мочой при различных условиях эксперимента в основе этого явления, по-видимому, лежит увеличение синтеза лимонной кислоты. [c.147]

В отсутствие ионов Са превращения протромбина в тромбин не происходит, а кровь, стабилизированная добавлением, например, оксалата натрия или цитрата натрия, связывающих ионы кальция, не свертывается. [c.468]

Белки плазмы. — Центрифугирование крови, обработанной цитратом или гепарином для предотвращения свертывания, [c.655]

В первую очередь следует назвать применение катионитов в качестве антикоагулянтов для удаления кальция из плазмы при стабилизации крови [612, с. 307 631]. В отличие от известных стабилизаторов, которые вводят непосредственно в кровь (цитраты, оксалаты, ЭДТА и др. комплексообразователи), катионит после контакта с кровью отделяют от нее. Заслуженное признание в ме-дрщинской практике получил катионит КУ-2 (Ма-форма). В последнее время для стабилизации крови используют фосфат и другие производные целлюлозы [632]. [c.389]

Кровь с антикоагулянтом (3,8 %-ный раствор цитрата натрия в соотношении кровь цитрат — 9 1) необходимо центрифугировать при 3000 об/мин на центрифуге МР МУ -ЗбО в течение 10 мин, Плазму и верхний слой лейкоцитов аккуратно отобрать пастеровской пипеткой и удалить. Эритроциты три раза промыть охлажденным раствором, содержащим 0,145 моль/л НаС1 в 0,02 моль/л трис-НС1 буфере (pH 7,6 при 20 °С), каждый раз осаждая клетки в том же режиме (при 3000 об/мин в течение 10 мин). Мембраны эритроцитов получают с помощью гипоосмотического гемолиза их раствором, содержащим 10 ммоль/л ЭДТА в 10 ммоль/л трис-НС1 буфере (pH 7,6 при 20 С). Для этого один объем отмытых эритроцитов быстро и энергично перемешать с 20 объемами охлажденной до +4 С гемолизирующей среды и выдержать при этой температуре в течение 15 мин. Гемолизат [c.231]

Сбор плазмы позволяет получать большие объемы с меньшим гемолизом. Большие объемы плазмы у овец и других крупных животных лучше получать с помощью мешочков для переливания крови с антикоагулянтом, которые можно заполнять в асептических условиях. Для малых объемов крови цитрат (3,8%) или ЭДТА (2%) добавляют в шприц или бутыль в объеме 10%. Шприцы и флаконы с антикоагулянтом необходимо охладить на льду. Немедленно после взятия крови ее центрифугируют (2500 об/мин, 4 °С, 20 мин), предварительно охладив ротор. Для получения сыворотки к плазме добавляют 2 1мл 10%-ного безводного СаСЬ на каждые 10 мл цитрата или 1,6 >мл 2%)-ного раствора хлорида кальция на [c.91]

Кровяная плазма, полученная по описанной выше методике, представляет собой жидкость, слегка окрашенную каротиноидамн, и содержит следующие белки альбумины (растворимы в 5%-ном солевом растворе), липопротеины, фибриноген и протромбин. Из цельной крови без защитных добавок при стоянии через несколько минут выделяются хлопья в результате превращения растворимого глобулярного фибриногена в н< растворимый нитевидный белок—фибрин, нити которого образуют ячеистую структуру сгустков. Это превращение происходит под влиянием протромбина и ионов кальция. Центрифугирование свернувшейся крови приводит к отделению смеси фибрина и красных кровяных тел. Надосадочная жидкость представляет собой кровяную сыворотку, которая отличается от плазмы тем, что не содержит фибриногена. Витамин К является антигеморрагическим агентом, так как он снижает концентрацию протромбина. Цитрат и гепарин предупреждают свертыванис крови, связывая ионы кальция. [c.670]

Для предупреждения свертывания крови применяют натрия цитрат кислый двузамещенный QHeOjNaj 1,5 Н 0, слабо кислой реакции, представляющий собой белый порошок, легко растворимый в воде, [c.164]

Противосвертывающее действие связано с переходом содержащегося в крови кальция в цитрат кальция, что приводит к связыванию свободных ионов последнего. [c.164]

Тест на наличие плазмокоагулазы (реакция плазмокоагуляции). Кровь, взятую стерильным шприцем из сердца кролика, помещают в 5 % стерильный раствор натрия цитрата, отсасывают плазму, разводят 1 5 0,9% стерильным раствором натрия хлорида изотоническим и разливают по 0,5 мл в стерильные пробирки. В каждую пробирку помещают 1 петлю суточной культуры стафилококка и инкубируют при температуре от 30 до 35 °С в [c.199]

Выяснено, что паратгормон участвует в регуляции концентрации катионов кальция и связанных с ними анионов фосфорной кислоты в крови. Как известно, концентрация кальция в сыворотке крови относится к химическим константам, суточные колебания ее не превышают 3-5% (в норме 2,2-2,6 ммоль/л). Биологически активной формой считается ионизированный кальций, концентрация его колеблется в пределах 1,1-1,3 ммоль/л. Ионы кальция оказались эссенциальными факторами, не заменимыми другими катионами для ряда жизненно важных физиологических процессов мышечное сокращение, нервно-мышечное возбуждение, свертывание крови, проницаемость клеточных мембран, актгшность ряда ферментов и т.д. Поэтому любые измененния этих процессов, обусловленные длительным недостатком кальция в пище или нарушением его всасывания в кишечнике, приводят к усилению синтеза паратгормона, который способствует вымыванию солей кальция (в виде цитратов и фосфатов) из костной ткани и соответственно к деструкцгп минеральных и органических компонентов костей. [c.263]

Фактор IV (ионы Са ). Известно, что удаление из крови ионов Са (осаждение оксалатом или фторидом натрия), а также перевод ионов Са в неионизированное состояние (с помощью цитрата натрия) предупреждает свертывание крови. Следует также помнить, что нормальная скорость свертывания крови обеспечивается лишь оптимальными концентрациями ионов Са . Для свертывания крови человека, декальцинированной с помощью ионообменников, оптимальная концентрация ионов Са определена в 1,0—1,2 ммоль/л. Концентрация ионов Са выше и ниже оптимальной обусловливает замедление процесса свертывания. Ионы Са играют важную роль почти на всех фазах (стадиях) свертывания крови они необходимы для образования активного фактора X и активного тромбопластина тканей, принимают участие в активации проконвертина, образовании тромбина, лабилизации мембран тромбоцитов и в других процессах. [c.601]

Эффективность добавки различных солей неодинакова. По данным Махата [42], исследовавшего высаливающую способность при 60 °С сульфата аммония, хлорида натрия, карбоната калия, хлорида аммония и цитрата натрия, степень повышения концентрации этилового спирта в равновесном паре колеблется в пределах от 2 до 8 раз и наилучшие результаты достигаются с карбонатом калия. Все же применять высаливание, по мнению Махата [42], следует чрезвычайно осторожно и только при необходимости (когда концентрация спирта менее 100 мг/л). Добавление минеральных веществ может привести к свертыванию крови и непостоянству коэффициента распределения. [c.125]

Весьма эффективен и перевод труднорастворимого вещества в растворимый комплекс с помощью комплексообразователей натрий-ЭДТА, цитраты и др. Комплексные соединения в ряде случаев позволяют создать более высокую концентрацию действующего вещества в плазме крови, чем инфузионная доставка в буферном растворе. [c.346]

В ходе фармакологических исследований было установлено, что абсорбция висмута из ранитидин-цитрата висмута составляет менее 1 % вводимой дозы висмута как у здоровых добровольцев, так и у пациентов с язвой желудка и двенадцатиперстной кишки. Скорость абсорбции ранитидина и висмута достаточно быстрая, пик их уровней в плазме крови обычно колеблется в пределах 1—3 ч и 15—60 мин соответственно. Основная часть висмута проходит через желудочно-кишечный тракт в неизменном виде [418]. [c.307]

Тест на наличие плазмокоагулаэы (реакция плазмокоагуля-ции). Кровь, взятую стерильным шприцем из сердца кролика, помещают в 5 % -ный стерильный раствор натрия цитрата, отсасывают плазму, разводят 1 5 0,9 %-ным стерильным раствором натрия хлорида изотоническим и разливают по 0,5 ил в стерильные пробирки. В каждую пробирку помещают 1 петлю суточной культуры стафилококка и инкубируют при температуре от 30 до 35 °С в течение 4—6 ч. Если в течение этого времени не наблюдают свертывание плазмы, реакцию плазмокоагуляцин считают отрицательной. Обязательно наличие двух контролей 1) контроль [c.338]

Для проведения исследований берут 15 —20 мл сыворотки крови (менее предпочтительно — 10—12 мл крови с добавлением цитрата натрия, 3 1) по 50— 100 мл рвотных масс, промывных вод желудка, кала, мочи 25 — 50 г остатков пищевых продуктов, с которыми связывают возникновение заболевания. Все материалы отбирают до введения лечебно-профилактической противоботу-линической сыворотки. У трупа исследуют кровь, кусочки печени, кишечника, содержимое желудка и кишечника, головной и спинной мозг. Консервы перед исследованием выдерживают 10 — 12 сут в термостате, после чего асептически отбирают 50—100 г, эмульгируют и центрифугируют пробу (в надосадочной жидкости определяют токсин, в осадке — С. botulinum). Пробы рыбы или мяса отбирают из глубины после обработки их поверхностей спиртом. [c.196]

Среда Роджерса представляет собой ИХН с добавлением 8 % цитрата натрия. Среду разливают в маленькие пробирки по 1 мл и стерилизуют. В каждую пробирку засевают по 0,5— 1,0 мл исследуемой крови. Лептомонадные формы лейшмании появляются на 3 —4-й день инкубации при 22-25 С. [c.347]

Соли ЛИМОННОЙ кислоты называются цитратами. Цитрат натрия применяется для консервации донорской крови. Противосвер-тывающее действие основано на том, что цитрат натрия связывает участвующие в процессе свертывания ионы кальция в нерастворимый цитрат кальция. [c.326]

Последовательность операций при выполнении анализа. 1. Несколько капель крови, необходимой для эксперимента, берут из жаберной артерии рыб канюлей шприцем или меланжером. Место укола необходимо предварительно подсушить фильтровальной бумагой, иначе кровь под влиянием накожной слизи свернется. Затем кровь выливают в пробирку с физиологическим раствором (0,85%-ным водным ЫаС1) и цитратом натрия (0,1 мл, 0,1 N НагС204 на 0,9 мл крови). Кровь пригодна для эксперимента в течение 30—40 мин., не более. [c.89]

Установлено, что при попадании соединений Ат в органы дыхания человека при различных аварийных ситуациях радионуклид в течение нескольких недель переходит в кровь и затем на длительное время задерживается в печени и скелете. При ингаляции или интратрахеальном введении животным растворимых соединений "Ат (нитрат, хлорид, цитрат) радионуклид сравнительно быстро резорбируется из легких в кровь. При этом через 32 суток у собак в легких остается 16 %, а у крыс — 5 % от введенного количества. После хронической ингаляции выведение "Ат из легких происходит в 5 раз медленнее, чем при однократной ингаляции. Кинетика выведения из легких нерастворимых соединений " Ат (оксиды) практически не отличается от кинетики выведения его растворимых соединений [94]. Установлено, что резорбция Ат из ЖКТ происходит медленно. Из растворимых соединений наиболее низкая величина всасывания из ЖКТ характерна для нитрата и хлорида — (0,45-ь1,00) 10 , а максимальное значение имеют комплексные соединения америция, которые в меньшей степени, чем простые соли, гидролизуются в ЖКТ. Для цитратного комплекса уровень всасывания достигает 5 10, для химически стабильного комплекса с диэтилентриаминопентаацетатом (ДТПА) — 2 %. Наименьшая резорбция из ЖКТ отмечена для оксида Ат — 1-10" %. Всасывание "Ат в 5-10 раз выше, чем Ри, если радионуклиды поступили в ЖКТ в виде растворимых соединений. [c.296]

Таким образом, химические свойства этого элемента обуславливают определённый подход к получению препаратов с его радиоактивными изотопами, который заключается в следующем. Если в составе препарата радионуклид находится в форме комплексного соединения, достаточно устойчивого, чтобы предотвратить гидролиз металла, но уступающего по прочности комплексу индия с трансферрином, то такой препарат обусловит быстрое накопление радионуклида в крови, и этот радионуклид будет оставаться в комплексе с белком до полного распада. Данные свойства использованы в технологии получения препарата Цитрин, Тп . Индий образует с цитрат-ионом (С11 ) устойчивые комплексные соединения (логарифм константы устойчивости равен 10,58 для комплекса 1пС11 и 6,17 для комплекса 1пНС11+ [Ю]). Использование при приготовлении препарата смеси лимонной кислоты и цитрата натрия, обладающей определённой буферной ёмкостью, позволяет получать стабилизированное значение pH препарата. [c.395]

Поливинилхлорид. Мономер токсичен. Непластифицированный и нестабилизированный полимер считают нетоксичным. Среди пластификаторов, к-рые легко мигрируют из поливинилхлорида, нередко увлекая за собой остаточный мономер и стабилизаторы, наиболее токсичны три-о-крезилфосфат и дибутилфталат, наименее — себацинаты и цитраты, перспективные для применения в медицинских марках поливинилхлорида. Показана возможность использования поливинилхлорида, стабилизированного ди- и триоктилпроизводными олова, в изделиях службы крови при условии их кратковременного контакта с кровью и при строгой регламентации количества стабилизаторов. Полимеры, стабилизированные соединениями свинца, не разрешены для использования в изделиях пищевого и медицинского назначения, а также в материалах для водоснабжения. При экспериментальном изучении вытяжек из поливинилхлоридных материалов, предназначенных для изготовления одежды и обуви, выявлены их раздражающее действие на кожу, а также признаки общетоксич. действия. [c.184]

С целью подавления каталитического влияния металлов на процессы окисления жиров предложено применение эффек тивных инактиваторов металлов. Добавка лп.монной и фосфорной кислот, лецитина, танина, сорбита, сахаров и других веществ уменьшает каталитическое влияние металлических примесей аскорбиновая кислота оказалась неактивной [36]. Лимонная кислота является одним из наиболее сильных маскирующих комплексообразователе1т применяемых для предотвращения выпадения гидроокисе ) элементов в щелочных растворах. В биологии и медицине ее солп применяются в качестве стабилизатора свертывания крови благодаря способности связывать ионы кальция. Предложен механизм действия цитрата натрия на металлы [37] [c.93]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология