Основные красители для микроскопии

Для этой цели особенно широко используются основные красители. В цитохимии ДНК незаменимой является классическая реакция Фельгена. За последнее время все более широкое применение находят методы люминесцентной микроскопии и ауторадиографии НК. [c.130]

ОСНОВНЫЕ КРАСИТЕЛИ ДЛЯ МИКРОСКОПИИ [c.53]

Фиксированные по Боуэну препараты лучше всего окрашиваются разведенными растворами основных красителей. Подходят для этого 0,01%-ные растворы кристаллического фиолетового, тионина или метиленового синего, которыми прокрашивают в течение 1—5 мин. Точное время окрашивания определяют в предварительных экспериментах. Для окрашивания цитоплазматических включений могут применяться другие красители (разд. 3.3.11). Основные красители прокрашивают богатую рибосомами цитоплазму преимущественно в хорошо сохранившихся, фиксированных по Боуэну клетках нуклеоплазма не окрашивается, она негативно выявляется точно так же, как и при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Описанный способ фиксации не годится для окраски нуклеоплазмы по Гимзе, даже после обработки рибонуклеазой или кислотного гидролиза. [c.49]

Как показывает световая микроскопия, цитоплазма плазматических клеток базофильна, т. е. обладает сродством к основным красителям. Это свойство цитоплазмы объясняется присутствием в ней больших количеств РНК, обеспечивающей синтез антител на рибосомах шероховатого ЭР рис. 2.20). С помощью электронного микроскопа в плазматических клетках можно наблюдать параллельные ряды шероховатого ЭР рис. 2.21). Эти клетки редко появляются в кровотоке, составляя не больше 0,1% циркулирующих лимфоцитов. В норме плазматические клетки встречаются только во вторичных лимфоидных органах и тканях, и, кроме того, их довольно много в красном костном мозге. Антитела, образуемые одной плазматической клеткой, обладают одной антигенной специфичностью и принадлежат к одному изотипу иммуноглобулинов. Их можно вы- [c.30]

Применение. В микроскопии в качестве витального красителя и красителя для ботанических и гистологических исследований. В аналитической химии как кислотно-основной индикатор (переход окраски при pH. = 3,8—5,4 от желтой к сине-зеленой). [c.71]

Волокна исследовали при помощи оптической микроскопии и рентгенографических методов. Кроме того, были изучены механические свойства, электрическое сопротивление, плотность и способность к поглощению воды И дисперсных красителей. В этом разделе описывается техника проведения опытов, приводятся результаты и обсуждается их значение. Кроме того, по мере выявления основных особенностей структуры волокон были проведены опыты с целью уточнения структурных данных или для проверки некоторых гипотез о структуре волокон. Эти опыты и дальнейшее обсуждение структуры волокон представлены в следующем разделе. [c.88]

Большинство красителей, применяемых в микроскопии, — основные. В табл. 2.10 приведены значения кЯр красителей, которые часто используются при биологических, бактериологических и [c.53]

Для крашения целлюлозных волокон применяют прямые, кислотные, основные, прямые с последующей обработкой катионами, сернистые, кубовые, оксидационные черные (из анилина или производных дифенила), азокрасители, образующиеся на волокне проявляющиеся красители, прямые с последующей обработкой формальдегидом или солями металлов, пигменты и активные красители. Вискозу, окрашенную в массе, обычно идентифицируют исследованием поперечного среза волокна под микроскопом (см. 2.3). [c.395]

Шерсть — имеется в виду главным образом овечья шерсть и шерсть некоторых пород коз (например кашмирских, ангорских и горных). Руны шерсти разбираются по сортам, и каждое руно затем сортируется по качеству волокна, толщине и другим признакам. Длина шерстяного волокна составляет от 2,5 до 40 см, диаметр от 0,01 до 0,07 мм. Обычно наиболее короткие волокна являются более тонкими, а длинные более грубыми. Шерстяное волокно содержит шерстяной пот (калиевые соли органических кислот) и жир (шерстяной жир, ланолин) эти примеси удаляются при отварке теплым мылом и раствором карбоната натрия. Под микроскопом шерстяное волокно представляет собой цилиндр с чешуйчатой поверхностью, на которой чешуйки направлены в одну сторону, что до некоторой степени напоминает рыбью чешую. Чешуйчатая поверхность играет роль при валке и при адсорбции красителей. Под роговой оболочкой имеется слой, состоящий из удлиненных клеток веретенообразной формы, так называемый корковый слой, который является основной частью высококачественных тонких шерстяных волокон. Наиболее глубоко расположенный сердцевинный слой, состоящий из больших круглых клеток, преобладает в грубых шерстях и совсем отсутствует в некоторых тонких шерстях. В шерсти имеются и более грубые волокна диаметром 0,07—0,2 мм, у которых сердцевинный слой развивается настолько, что волокно перестает содержать корковый слой. Такие волокна при крашении обнаруживаются в виде светлоокрашенных или совсем неокрашенных вкраплений в смеси с нормальными волокнами, хотя оба волокна адсорбируют почти одно и то же количество красителя очевидно, причина заключается в том, что волокна с большим сердцевинным слоем отражают и рассеивают большее количество света. [c.302]

Дисперсный желтый 3 — смесь красителя (40%) со вспомогательными веществами, порошок. Основная масса частиц при просмотре под микроскопом имеет размеры до 2 мкм, в поле зрения встречаются частицы до 5 мкм, а в пробе единичные агрегаты размером до 14 мкм. [c.240]

Прежде чем рассматривать поведение синтетических волокон при крашении, необходимо остановиться на основных принципах процесса крашения. Несмотря на то, что эти принципы были разработаны в основном на базе исследования натуральных волокон, они все же должны быть применимы в большей или меньшей степени и ко всем новым волокнам. Крашение заключается в том, что текстильное волокно погружают в раствор красителя при определенной температуре (обычно берут водный раствор). Для облегчения крашения в раствор добавляют электролиты, кислоты и другие вещества. Волокно поглощает краситель с определенной скоростью до тех пор, пока, наконец, не устанавливается равновесие между красителем, адсорбированным на волокне, и красителем, оставшимся в красильной ванне. Разумеется, скорость крашения и установление равновесия зависят от выбранного красителя и от вида окрашиваемого волокна. Срезы волокон, взятые па различных стадиях процесса крашения, показывают, что в равновесном состоянии волокно бывает равномерно окрашено по всему поперечному срезу, т. е. крашение не ограничивается только наружной поверхностью волокна. На первых стадиях волокно окрашивается концентрическими слоями, а сердцевина остается неокрашенной. Проникновение красителя внутрь волокна можно проследить при помощи микроскопа. Таким образом, очевидно, что в процессе крашения краситель диффундирует в вещество волокна. [c.463]

Будучи чрезвычайно малыми по размерам, животные клетки к тому же бесцветны и прозрачны следовательно, открытие их основных структур стало возможным благодаря разработке набора красителей в конце XIX столетия Именно красители обеспечили достаточный контраст для наблюдения субклеточных структур. Сходная ситуация наблюдалась в начале 40-х годов нашего столетия, когда изобретение мощного электронного микроскопа потребовало новых методов сохра- [c.172]

Миелиновая ткань имеет консистенцию жира и для невооруженного глаза белую окраску (как в белом веществе головного мозга). Б световом микроскопе такие волокна при обработке их обычными липидными красителями имеют вид черных структур. С миелином, извлеченным различными приемами фракционирования клетки (рис. 4.6), проведены биохимические исследования. Они показали, что миелин состоит приблизительно на 80% из липидов и на 20% из белка один из основных липидов —холестерол, а такие вещества, как цереброзиды и фосфолипиды, содержатся также в разных тканях и у разных видов животных в разных количествах. Рентгеноструктурный анализ показывает, что миелин состоит из единиц, повторяющихся с периодом около 18 нм. В электронном микроскопе его легко узнать по чередованию светлых и темных слоев с периодом около 18 нм, который, если сделать поправку на сморщивание ткани при обработке, соответствует двойной толщине сжатой плазматической мембраны. [c.101]

Элюенты 1—3 пригодны для разделения Бисмарка коричневого (С1 21000) и других основных азокрасителей. Трифенилметановые красители Малахитовый зеленый (С1 Основный зеленый 4 С1 42000 ХСК, т. 4, с. 120) и Метиловый фиолетовый (С1 Основный фиолетовый 1 С1 42535 ХСК, т. 2, с. 822, т. 4, с. 122) можно хроматографировать с элюентом 4. Для Астра фуксина В (С1 Основный фиолетовый 14 С1 42510), Родамина В (С1 Основный фиолетовый 10 С1 45170 ХСК, т. 2, с. 859) и Родамина 60 (С1 Основный красный 1 С1 45160 ХСК, т. 2, с. 861 т. 4, с. 112, 116) подходит система 5. Элюент 7 можно использовать для разделения Родамина В, Малахитового зеленого. Кристаллического фиолетового (С1 Основный фиолетовый 3 С1 42555 ХСК, т. 4, с. 123), Метиленового голубого (С1 Основный синий 9 С1 52015 ХСК, т. 2, с. 907) и Виктория синего В (СГ Основный синий 26 С1 44045 ХСК, т. 2, с. 825 4, с. 125) на предметных стеклах микроскопа. Растворители 8—10 применяли для распознавания основных красителей ксантенового ряда, например Акридинового красного ЗВ (С1 45000 ХСК, т. 2, с. 853), Пиронина О (С1 45005 ХСК, т. 2, с. 852), Родамина 5 (С1 Основный красный 11 СI 45050 ХСК, т. 2, с. 853), Родамина О (С1 Основный красный [c.52]

В качестве наполнителя для аминопластов чаш,е всего применяют сульфитную целлюлозу. Содержание в исходной сухой целлюлозе а -целлюлозы должно быть не ниже 88%, а гемицеллюлозы — не выше 11—12% смол, экстрагируемых эфиром, не более 0,7—0,8% и экстрагируемых смесью спирта и бензола 1—1,2% золы 0,3%, лигнина 0,3%, влаги от 3 до 12%. Сорность целлюлозы, обусловленная непроваренными кусочками древесины и кострики, должна быть не более 200 кусочков на 1 м целлюлозного листа. Сульфитная целлюлоза должна быть хорошо и ровно отбеленной. О степени и ровности отбелки можно судить, рассматривая под микроскопом волокна целлюлозы, окраш енные основным красителем. Так как оксицеллю-лоза интенсивно окрашивается основными красителями, то под микроскопом можно заметить повреждение отдельных волокон гипохлоритом кальция. [c.68]

В период между делениями, называемый интерфазой, хромосомы практически неразличимы в световом микроскопе как обособленные структуры, хотя материал, из которого они состоят, окрашивается некоторыми основными красителями и потому назван хроматином. На этой стадии хромосомы представляют собой клубок длинных тонкщс нитей. Непосредственно перед делением ядра они закручиваются в гораздо более компактные и более интенсивно окрашивающиеся струкгуры, которые короче, толще и более обособлены друг от друга. На рис. 23.1 представлена фотография хромосом человека в клетке, находящейся на стадии метафазы. Мож- [c.142]

Методы окрашивания могут быть теми же, что и для препаратов, фиксированных по Боуэну. Как и в том случае, цитоплазма окрашивается основными красителями, такими, как тионин, а нуклеоплазма не окрашивается. Однако нуклеоплазма имеет вид более узких пятен, чем при фазово-контрастной микроскопии живых клеток. Фиксированные OSO4 препараты пригодны для окрашивания нуклеоплазмы по Гимзе либо после гидролиза рибонуклеазой (100 мкг/мл в 1 мМ MgS04 в течение 30 мин), либо после гидролиза кислотой. Последний метод состоит из следующих стадий. [c.51]

Хромосомы. Во время деления клетки в ней видны в обычный световой микроскоп хорошо окрашивающиеся основными красителями небольшие тельца. Впервые их наблюдал в 1888 г. немецкий ученый В. Вальдейер и назвал и хромосомами (от греч. hroma — цвет и soma — тело). Длина хромосом колеблется от 0,2 до 50 мкм, а диаметр от 0,2 до 2 мкм. [c.30]

Вследствие этого в условиях данной реакции определение базофилии является более предпочтительным, чем применение реактива Шиффа. Вслед за окислением надмуравьиной кислотой в течение 24 ч при 25°С срезы помет щают в 5-10 М раствор метиленового синего, забуфе-ренный глициновым буфером до pH 2,8, заключают под покровное стекло в дистиллированной воде и сразу исследуют под микроскопом. Хорошие результаты достигаются путем окрашивания основными красителями альциа-новым синим и астрасиним (растворенными в 2 н. НзЗО . [c.82]

Ядро было открыто в 1833 г. Р. Броуном в клетках тычиночных нитей традесканции. Впоследствии его подробно изучали под световым, а затем и под электронным микроскопом. В классической цитологии при изучении ядра выделяют в качестве составной части хроматин. Этим термином определяют участки, способные окрашиваться основными красителями и дающие положительную реакцию Фёльгена на ДНК. Под электронным микроскопом в ядре растительной клетки можно различить конденсированный и диффузный хроматин, что отражает характер упаковки хромосомных фибрилл. Более активен в функциональном отношении диффузный хроматин. Ядерный сок ие окрашивается [c.129]

Неотетразолий хлористый [ ] является одним из основных реактивов в ассортименте красителей для микроскопии [3] и применяется главным образом в гистохимии [4]. [c.14]

Оксазиновые красители являются основными или протравными хромовыми красителями, ценными для ситценабивного производства, поскольку они разрушаются окислителями, например хлоратом, и могут быть при необходимости обесцвечены. Их использование как красителей в текстильной промышленности уменьшилось, однако некоторые из них применяются для окрашивания животных тканей для микроскопии, например яркий крезиловый голубой (С.1.51010) (95) и нильский голубой 2В (С.1.51185) (96). Краситель (96) и некоторые его аналоги исследованы в качестве ингибиторов роста опухолей. Они очень активны против туберкулеза у мелких грызунов, однако слишком токсичны для медицинского применения. Оксазиновые красители и феноксазоны применяют также как аналитические реагенты, например как специфические осадители ионов и редокс-индикаторы. [c.590]

Наилучшие результаты получены при при.менении красителя коричневого основного, ранее неизвестного в качестве гасителя люминесценции. Коричневый основной дает черно-коричневый фон ири люминесцентной микроскопии, устойчив к действию ультрафиолетовых лучей, хорошо связывается с фильтром, равномерно его окрашивает, не разрушает материал фильтра. Гасящие свойства не распространяются на флуорохромируемые объекты. Разработанный способ гашения люминесценции мембранных фильтров позволяет обрабатывать фильтры заранее и длительно их хранить в темноте (Т. 3. Артел-го-ва, Л. Е. Корш, 1973). [c.95]

Применение. В обычной микроскопии для бактериологических, ботанических, гистологических целей для окрашивания ядер в качестве составной части красителя Вейгерта для окрашивания эластичной ткани [1, 2] в виде карбол-фуксина (1 г основного фуксина, 5 г фенола, 10 мл этилового спирта, 100 мл дистиллированной воды) для выявления кислотоустойчивых липофусцинов по Цилю — Нильсену для приготовления цветных питательных сред по Эндо для дифференцирования кислотоустойчивых бактерий в сочетании с индигокармином и пикриновой кислотой для множественной окраски обзорных препаратов. В электронной микроскопии для гистохимического выявления ацетилхолинэстеразы [3]. В аналитической химии в качестве индикатора (переход окраски от желтой к красной в интервале pH 1,0—-ЗД). [c.427]

Применение. В микроскопии для цитологических, энтомологических и гистологических исследований и в качестве витального красителя. Как составная часть реактива Нейссера для окрашивания бактерий. В флуоресцентной микроскопии как дополнительный краситель, В аналитической химии в качестве кис-< лотно-основного индикатора. [c.435]

Применение. В гистохимии в качестве красителя для выявления основных и кислых белков в кислых растворах при pH 1,4—2,1 нуклеиновые кислоты окрашиваются в.синий цвет, а основные белки —в красный цвет [Пирс, 79, 290] при окрашивании депарафинированных срезов в ортофосфорной или лимонной кислоте ядер ный хроматин окрашивается в темно-синий со стальным оттенком цвет, а ацидофильные тканевые компоненты —в различные оттенки красного цвета [Пирс, 708]. В микроскопии для выявления алюминия, отложения которого окрашиваются в розоЕГ й или красный цвет [Пирс, 874]. В аналитической химии реактив на алюминий и фториды. [c.455]

Такие осадки содержат около 0,6% нитрата, соосажден-ного в форме нитрата свинца. Более того, свежий осадок содержит небольшое количество основного сульфата свинца. Осадок имеет микрокристаллическую структуру и быстро осаждается на дно сосуда. Микрофотография (рис. 1,а, ув. 450) показывает, что кристаллы плохо сформированы и определить внешнюю поверхность путем измерения при помош и микроскопа трудно. Для того чтобы определить эту поверхность, мы применяли краситель, который адсорбировался на поверх -ности осадка (рис. 1, б). Было найдено, что для этой цели очень удобен шерстяной фиолетовый краситель 4 BN (Национальная Анилиновая Компания) [2]. [c.99]

В большинстве работ, посвященных изучению структуры мембран, основное внимание уделено исследованию их микропористости [1, 3-5]. Для выявления микроканалов, в которых содержится раствор электролита, мембраны электролитически заполняли металлическим серебром, после чего срез мембраны фотографировали на э11ектронном микроскопе [3]. Блок [1] для этой цели использовал метод поверхностных реплик. Гомогенность мембран как на макроскопическом, так и па микроскопическом уровне Блок исследовал с помощью ионных красителей, способных взаимодействовать с ионогенными группами ионита [2]. Однако он указывал на возможные ошибки в полученных картинах распределения противоионов и их источники, которыми могли быть сорбция красителя волокнами армирующего материала и вероятность ситового эффекта из-за большого размера ионов красителя. [c.249]

Впоследствии Кольтгофф с сотрудниками (1941 г.) показали на примерах исследования старения осадков хромата свинца, хлорида и бромида серебра, что оствальдовское созревание является одним из основных типов старения осажденных частиц. Его действие проявляется лишь в определенных условиях. Так, например, коагулированный бромид серебра в отличие от коллоидного не претерпевает оствальдовского созревания. Однако при избытке ионов ВГ в маточном растворе наблюдается ярко выраженное оствальдовское созревание. О нем свидетельствует уменьшение поверхности и числа частиц осадка, определяемые с помощью электронного микроскопа и по адсорбции красителя (метиловый фиолетовый) осадком. Адсорбция красителя на поверхности частиц предотвращает или подавляет оствальдовское созревание, как и рекристаллизацию частиц стареющего осадка. [c.67]

В то время как журнал, в котором Мендель опубликовал свои результаты, пылился на полках приблизительно 120 библиотек (о которых нам известно, что они его получали), к проблеме механизма наследственности подобрались с другого конца. Примерно за 30 лет до опубликования статьи Л1енделя уже установилось понятие о клетке как об основной единице живого. Что же касается различных элементов, из которых построена клетка, то они были обнаружены только во времена Менделя в результате усовершенствования конструкции микроскопов и применения красителей, специфически окрашивающих различные компоненты клетки в характерные для них цвета. Первым достижением науки о структуре и функции клетки — цитологии — было открытие того, что клетка состоит из двух разных областей — центрального ядра и периферической цитоплазмы. Ядро отграничено от цитоплазмы ядерной мембраной. Затем было обнаружено, что ядро само состоит из двух морфологически различных частей гранулярной области, хроматина, который и нтенсивно окрашивается определенными красителями, и ядрышка, к оторое этими красителями не окрашивается. Что касается цитоплазмы, тов ней были обнаружены хорошо различимые органеллы, такие, как ц ентриоли и вакуоли. В результате к концу XIX в. было выяснено общее строение клетки в том виде, как она изображена на фиг. 4. [c.18]

Основным прибором цитологических исследований является световой микроскоп, до сих пор не утративший своего значения при изучении клетки. Существуют самые разнообразные модели световых микроскопов. Для каждого способа микроскопирова-ния необходимы свои методы приготовления препаратов. При изучении клетки под световым микроскопом многие ее структурные компоненты остаются незамеченными. Кроме того, при этом методе исследования живую клетку приходится обычно фиксировать (умерщвлять), дифференцированно ее окрашивать для выделения отдельных структур, что позволяет получить постоянные препараты хорошего качества, на которых отчетливо видно строение растительной клетки Однако в некоторых случаях фиксирующие агенты (спирт, кислоты, формалин, соли металлов) и красители могут исказить истинную картину клеточной структуры, заменив ее артефактами (структуры, созданные фиксирующим веществом). Б этом случае наряду с постоянными препаратами следует параллельно изучать живые клетки. Последние чаще всего окрашивают нейтральными красителями — цитоплазму, янусом зеленым — митохондрии, метиленовым синим — комплекс Гольджи. Используют и некоторые другие красители, сравнительно легко проникающие в живые клетк й. [c.7]

Жгутики изучают в световом микроскопе с помощью окраски по Лефлеру. Для этого материал фиксируют оксидом осмия, на короткое время погружая в абсолютный спирт, и оставляют высохнуть. Затем добавляют несколько капель красителя (смесь 100 мл 20%-ного водного раствора танина, 50 мл насыщенного водного раствора Ре304 и 10 мл насыщенного спиртового раствора основного фуксина) и нагревают над пламенем горелки, не доводя до кипения, до появления пара. После ополаскивания дистиллированной водой препарат в течение 10 мин докрашивают карболфуксином (100 мл 5%-ного водного раствора свежеперегнанного фенола и 10 мл насыщенного спиртового раствора фуксина основного смесь отстаивают в течение 48 ч, фильтруют и [c.22]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология