Протеины, определение воды

Так, если взять раствор белка в воде и коагулировать его определенным образам, получается начальная степень мутности прибавив затем в другую порцию раствора протеина фермент (например пепсин) и произведя по истечении некоторого времени и в атом растворе коагуляцию, сравнивают его при помощи особого прибора — нефелометра с первой коагулированной пробой. Ведя аналогично наблюдения над последующими пробами, подвергшимися различному по времени воздействию фермента, можно по изменении мутности проследить ход гидролитического расщепления протеина. [c.19]

Сорбенты широкого применения дополняют сорбентами для решения специализированных задач разделение энантиомеров (хиральные), нуклеотидов, катехоламинов, нуклеозидов, гидрофильных и гидрофобных протеинов, биополимеров, в том числе олигонуклеотидов, вирусов, РНК и других аминокислот анализ сахаров, определение анионов в воде, полициклических ароматических углеводородов (РАН) в питьевой воде, биологически активных экстрактов. [c.238]

Содержание сырого протеина (общего белка) в дрожжах во всех странах определяют по методу Кьельдаля или по одной из многих его модификаций. Наиболее распространенная пропись метода Кьельдаля приводится ниже. Метод основан на определении количества азота, содержащегося в белке дрожжей. Дрожжи обрабатывают серной кислотой при нагревании в присутствии сернокислой меди в качестве катализатора и сернокислого натрия как водоотнимающего вещества. Органические вещества окисляются до углекислого газа и воды. Азот, освобождающийся при разрушении органических веществ, восстанавливается до аммиака, который связывается серной кислотой в сернокислый аммоний. Реакции продолжаются более 16 ч. Образовавшийся сернокислый аммоний разлагают щелочью, выделяется аммиак, который отгоняют в титрованный раствор серной кислоты (или в раствор борной кислоты), и ее избыток оттитровывают раствором щелочи. Содержание сырого протеина в дрожжах находят как произведение количества азота, найденного в аммиаке, умноженное на эмпирический коэффициент 6,25. [c.227]

Ход анализа. В стакан или в колбу вместимостью 750 мл помещают 2 г исследуемых дрожжей, прибавляют 480 мл воды, 1 г пепсина и 10 г 25%-ной соляной кислоты, хорошо перемешивают и ставят в термостат на 24 ч. Затем смесь фильтруют через складчатый фильтр (фильтрат должен быть прозрачным) и осадок на фильтре промывают дистиллированной водой. Фильтр с осадком переносят в колбу Кьельдаля, прибавляют 20 мл серной кислоты плотностью 1,84 г/см проводят минерализацию и определение аммиака, как описано на с. 229. Параллельно в пробе дрожжей определяют содержание сырого протеина. [c.230]

Для разложения проб при определении серы в моче рекомендован реагент на основе нитрата меди [5.1078]. Упаривают досуха 10 мл мочи и 5 мл реагента Бенедикта (200 г нитрата меди, 50 г хлората калия в 1 л воды) и остаток нагревают до красного каления. Чтобы предотвратить протекание очень бурной реакции, предложен реагент несколько иного состава 250 г нитрата меди, 250 г хлорида натрия, 100 г нитрата аммония на 1 л воды [5.1079]. С этим реагентом получены хорошие результаты при разложении проб мочи, растений, различных органических соединений [5.1080—5.1082] и плохие — при разложении протеинов [5.1082, 5.1083], биологических материалов [5.1059, 5.1084] и метионина [5.1085]. Рекомендуется универсальный реагент 25 г нитрита меди, 10 г нитрата аммония, 25 г хлорида натрия, 100 мл воды, 3 мл насыщенного раствора карбоната натрия, pH = 7,2 [5.1086]. [c.208]

Определение БЭВ по разности между 100 и суммой воды, золы, клетчатки, жира и протеина даст только приблизительное представление о питательной ценности исследуемого корма. [c.274]

Азотистые соединения включают амиды, анилиды, амины, алкалоиды, протеины, аминокислоты (рассмютрены вместе с кислотами), карбаматы или уретаны (рассмотрены со сложными эфирами), лактамы, циангидрины, нитрилы, нитро-, нитрозо- и азосоединения, азолы, оксимы, гидразины, гидроксамовые кислоты, аминоспирты, изоцианаты, пурины или диуреиды, амидины и производные циановой кислоты. Число методов, применимых для определения воды в органических азотистых соединениях, весьма ограниченно. Иногда применимы химические методы, основанные на гидролизе хлорангидридов или ангидридов кислот. Однако они непригодны для перечисленных веществ (особенно для аминов и амидов), которые вступают в реакцию аци-лирования или в присутствии которых ацидиметрическое определение конечной точки затруднено. (Для всех аминов, за исключением низших, может быть применен метод Смита и Брайанта [26] с хлористым ацетилом, характеризующийся сравнительно мягкими условиями.) Для специального случая с анилином описаны методы, основанные на появлении точки помутнения [45-47]. [c.127]

Крэнстон и Томпсон [13] разработали ионообменный метод определения меди в молоке. Подкисление молока хлорной кислотой до pH < 3 обеспечивает переход меди в состояние свободных ионов Сп " и осаждение протеина, причем жиры переходят в творожистый осадок. Профильтрованный раствор пропускают через колонку, заполненную сульфокатионитом в Н-форме. Медь, наряду с другими катионами, поглощается в колонке. После нромывки водой (бидистиллат) катионы элюируют ЗМ НС1. Затем э.люат упаривают досуха, и медь определяют полярографически. [c.284]

Моча. Магний в моче можно определить после непосредственного разбавления ее водой в отношении 1 50 [22, 68, 275]. Для определения кальция образцы мочи разбавляли раствором хлорида лантана [68, 275]. Поскольку присутствие ш,елочных металлов вызывало некоторое увеличение абсорбции, а содержание натрия и протеина в моче изменялось в широких пределах, Цеттнер и Зелигсон [28] рекомендовали определять кальций путем осаждения его в виде оксалата с последующим повторным растворением в НС1. [c.153]

Сера встречается в растениях как составная часть протеинов и определенных защитных веществ, особенно в семенах, как, например, в горчичных маслах и их глюкозидах [13, 22, 23]. Во время гниения растений в болотах сернистые соединения протеина быстро разрушались, причем большое количество серы выделялось в виде сероводорода. Часть его улетала в атмосферу, а часть растворялась в болотной воде, где могла соединяться с растворенными солями железа или могла быть унесенной или сорбированной органическим углеобразующим материалом. [c.73]

В работе [21] указано, что концентрация II в морской воде 2,8-10 г л определена методом перлов. Предложен метод определения урана по флуоресценции его раствора в концентрированной кислоте [22, 23]. Для определения микроколичеств урана в биологическом материале рекомендуется предварительно, до люминесцентного определения, осаждать его протеином в виде уранонротеинового комплекса [22]. [c.164]

Свойства. Кислотный краситель триаминотриарилметанового ряда. Мелкокристаллический порошок. Не растворим в холодной воде, мало растворим в горячей воде и этиловом спирте. С кОнц. серной кислотой дает оранжево-красный раствор, окраска которого при разбавлении переходит в васильковую. Водный раствор красителя под действием NaOH приобретает фиолетовую окраску. Обладает способностью образовывать с белками интенсивно окрашенные комплексы, что обусловило его использование для количественного определения протеина в исследуемых объектах. Максимум в спектре поглощения раствора красителя в 0,01 М цитратном растворе при pH = 3,0 лежит при 555 нм, протеиновый же комплекс характеризуется менее широким пиком при 549 нм. Применение. В качестве красителя для гель-электрофореза [1, 2]. [c.188]

Общий объем жидкости в организме также можно определить по разбавлению инъецированного вещества подобно определению объема плазмы или внеклеточного объема. Для этого используется антипирин или Ы-аце-тил4-аминоантипирин [18—20]. Точность этого метода, однако, также снижается из-за метаболического изменения строения, связывания антипирина протеинами плазмы и аналитического предела обнаружения антипирина. Идеальным средством определения жидкости в организме является вода, меченная тритием (Н 0) [21—23]. [c.320]

Определение по окраске иода. Анализируемый раствор взбалтывают с иодатом серебра. В результате образования Ag l выделяется эквивалентное хлорид-иону количество иодат-ионов. После удаления избытка Ag-JOg центрифугированием в раствор вводят KJ или NaJ, которые окисляются до элементного иода. Выделившийся иод определяют фотометрическим методом или но его собственному поглощению при 350 нм [1021], или по поглощению иод-крахмального соединения, абсорбцию которого измеряют нри 615 нм [743]. Этим способом определяют до 180 мкг хлорид-иона с точностью, характерной для соответствующего титриметрического метода [743]. Мешают все ионы, взаимодействующие с ионом серебра. Иодат серебра был использован для определения хлорид-ионов в биологических объектах после предварительного разрушения протеинов [886] и в природной воде [1021]. [c.59]

Первые попытки применения поверхностных плёнок для этих целей принадлежат Гортеру и Гренделю Ч Они определили количество жирного вещества в красных кровяных шариках по площади, занятой этим веществом при его растекании на воде, и нашли, что оно присутствовало в количестве, достаточном для покрытия приблизительно удвоенной площади поверхиости шариков. Этот же метод они применяли для определения протеина 2. Позднее Уайатт с сотрудниками 3 исследовал растекание различных веществ на воде, как меру количества гидрофильных групп на изолирующих прокладках электрических кабелей поскольку окисление углеводородов в этих прокладках является основной причиной ях порчи, эта величина может служить количаствзнной мерой негодности кабелей. [c.136]

Важно отметить, что абсорбция протонов, в результате которой шерстяное волокно приобретает катионоидную активность и способность к притяжению анионов красителя, не является необходимой стадией процесса крашения кислотными красителями. Существуют такие кислотные красители, которые субстантивно абсорбируются волокном при значениях pH, превышающих изоэлектриче-скую точку шерсти. Субстантивность кислотных красителей к щерсти меняется в широких пределах, так же как субстантивность красителей к целлюлозе. Была установлена зависимость между молекулярными весами ряда органических кислот и их сродством к шерсти. 53 в то время как абсорбция такого красителя, как Оранжевый G (анилин -> G-кислота мол. вес 452), образующего истинный раствор в воде, очень сходна с абсорбцией соляной кислоты, коллоидальный краситель Полярный желтый R (пиразолоновый краситель с п-толуолсульфонилэфирной группой в молекуле мол. вес 832) абсорбируется при 100° не более чем в количестве 140 миллиэквивалентов на 100 г шерсти. S Несмотря на то, что определенную роль могут играть механические факторы, например отношение размера молекул красителя к диаметру пор в аморфной области шерстяного волокна, все же можно считать, что природа протеина или смеси протеинов, образующих кератин, определяет возможность непосредственного связывания молекул красителя шерстью под действием сил Ван-дер-Ваальса или водородных связей. [c.1482]

Так определяют общее содержание углерода (неорганического и органического). Неорганический углерод может быть определен отдельно обработкой пробы несколькими каплями концентрирован- ной серной кислоты. Определение производят совершенно так же, при помощи того же прибора. Чистоту реактивов следует проверить проведением контрольного определения. При применении указанного метода полное окисление проб газогенераторных сточныч. вод продолжается 30—40 мин. от начала кипения. При определении углерода протеинов и жиров городских сточных вод смесь нужно кипятить не менее 1 часа. [c.245]

Бактерицидный и вирулицидный эффект озонирования. Впервые в 1891 г. Охмюллер на основе практических исследований показал, что озоном можно уничтожать бактерии тифа и холеры. Механизм воздействия окислителя состоит в разрушении бактерий путем инактивации бактериальных протеинов, т. е. диффузией через мембрану клетки в цитоплазму с поражением жизненных центров. На эффективность бактерицидного действия озона в большей или меньшей степени оказывают влияние следующие параметры pH, температура, наличие взвешенных и растворенных органических веществ, концентрация окислителя. Устойчивый бактерицидный эффект наблюдается в широком интервале pH (от 5,6 до 9,8) и температуры (от О до 37 °С). Наличие взвешенных веществ в обрабатываемой воде ограничивает возможности дезинфектанта, так как в большинстве случаев взвешенные частицы являются защитниками бактерий, адсорбируя последние на своей поверхности. В отношении влияния на бактерицидный эффект растворенных органических веществ и концентрации озона единодушного мнения нет. Некоторые исследователи являются сторонниками той позиции, что дезинфицирующее действие озона проявляется лишь при его определенной остаточной (или избыточной) концентрации в воде, когда уже окислены растворенные органические загрязнения. Другие полагают, что обеззараживающий эффект наблюдается одновременно с окислением озоном органических веществ. Довольно трудно допустить, что озон осуществляет атаку выборочно сначала на растворенные органические примеси, а потом на бактерии, которые по сути также являются органическими веществами. Однако эффективная инактивация микроорганизмов наблюдается чаще именно в момент появления остаточного озона при концентрациях его, близких к О, —0,4 мг/л. [c.30]

Средний результат нескольких определений показывает, что 60 г-экв красителя связаны с 10 г желатины, т. е. количество красителя в этом комплексе значительно больше, чем в комплексе, соответствующем /-полосе. Растворимость в воде этого Я-ком-плекса также больше, чем у последнего. Была исследована возможность появления /-полос под влиянием некоторых других протеинов. Разбавленные растворы яичного альбумина вызывали появление отчетливой /-полосы в растворе 3,3, 9-триэтил-4,5,4,5-дибензотиакарбоцианинбромида, но клейковина или казеин не вызывали никакого эффекта. 1%-ный раствор крахмала вызывал [c.317]

В результате 10 определений было найдено 8,09 + 0,04% воды в протеине — трипсине [6]. Содержание воды в неидентифициро-ванном протеине по данным Мак-Кинни и Холла [32] составляло 11,1+0,00% значение, найденное методом перегонки с хлороформом, было равно 10,95 + 0,15%, а методом высушиванЖ в сушильном шкафу — 10,9 + 0,00%. Было установлено, что образец цианамида содержал 0,02 + 0,00% воды, а меламин — 0,05 + + 0,00% [8]. В нафтилизоцианате и дифенилнитрозамине было обнаружено при первоначальном анализе 0,007 + 0,001% и соответственно 0,086 + 0,003 % воды, а после добавления 0,82 и 1,51% воды [8] — 0,83 + 0,01% и соответственно 1,62 + 0,02%. При анализе нитрометана были получены следующие значения 0,94 + 0,02% воды при прямом титровании и 2,05 + 0,03% после добавления воды общая концентрация воды во втором случае, согласно вычислению, была равна 2,03% [8]. [c.131]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология