Работа t. Определение pH буферного раствора

Буферные растворы (или просто буферы) представляют собой такие растворы, которые содержат в определенном отношении слабую (или средней силы) кислоту и сопряженное основание. Эти растворы обладают очень важным свойством в некотором интервале поддерживать постоянным pH раствора при его разбавлении или добавлении небольших количеств кислоты или основания. Каким же образом работает буфер Пусть например, имеется аммиачный буфер, который состоит из эквивалентных количеств соли аммония и аммиака. В водном растворе для отдельных компонентов буфера устанавливаются равновесия [c.387]

Работа 24. Буферные растворы, определение буферной емкости [c.96]

Пептиды и белки обладают сильным избирательным поглощением в области 210—220 нм. Однако при этом нельзя работать в буферных растворах, включающих карбонил со держащие соединения. Еще более чувствительным является определение пептидов при 192—194 нм, однако при измерении в этой области можно использовать лишь водные растворы фторидов щелочных металлов. По этой причине спектрофотометрическое определение белков в области ниже 210 нм используется крайне редко (лишь в специальных случаях ГПХ). По чувствительности определение белков при 210 нм сопоставимо с колориметрическим методом Лоури, Например, сывороточные белки определяли в концентрации 2 мкг/мл [79]. Поглощение при 210 нм характерно для пептидной связи, и, следовательно, белки имеют одинаковые коэффициенты экстинкции (табл. 35.8). [c.457]

В лабораторной практике и в ряде технологических процессов встречается необходимость проведения работы в растворах, способных сохранить pH практически постоянным, не изменяющимся от разбавления раствора и от добавления к нему некоторых количеств (в определенных пределах) сильных кислот и оснований. Такие растворы существуют и получили название буферных растворов или буферных смесей. [c.83]

Работа 8. Определение буферной емкости растворов методом потенциометрического титрования [c.317]

Определение р/Сд в буферных растворах с известным значением pH обеспечивает меньшие погрешности результатов эксперимента из-за меньшего влияния углекислого газа воздуха, выщелачиваемых из стекла примесей и т. п. Однако при работе в буферных растворах необходимо вводить поправки на активность (см. раздел 6.1), которые являются тем менее достоверными, чем больше ионная сила раствора. Поэтому многие исследователи предпочитают отказаться от использования буферных растворов и проводить определение рКа в серии растворов исследуемого вещества, содержащих сильную одноосновную кислоту (основание). Термодинамическую константу р/Са в таких случаях находят экстраполяцией р/Са на нулевую концентрацию добавленной сильной кислоты (основания) или эквивалентными расчетными приемами [232,233]. [c.150]

Всегда нужно помнить, что в ходе анализа первоначально установленная величина pH раствора может измениться. Навык в правильном определении pH раствора при работе на фильтровальной бумаге легче всего приобрести, работая с буферными растворами, величина pH которых строго постоянна. И далее, определяя pH исследуемого раствора, желательно параллельно ставить аналогичный опыт образования пятна в буферном растворе с тем же значением pH, что предполагается в исследуемом растворе. [c.90]

Последовательность выполнения работы. 1. Приготовить 10 растворов слабой кислоты с различными значениями pH. Для приготовления растворов в 10 чистых и сухих пробирок пипеткой налить по 3 мл раствора кислоты. В каждую пробирку добавить по 7 мл буферного раствора с определенным значением pH. 2. Рассчитать концентрацию кислоты в растворах. 3. Снять спектры поглощения всех полученных растворов. Толщина поглощающего слоя 1 см. [c.76]

РАБОТА № 16. ИНДИКАТОРЫ. ОПРЕДЕЛЕНИЕ pH СРЕДЫ, БУФЕРНЫЕ РАСТВОРЫ [c.79]

Последовательность выполнения работы. Работу выполнять на приборах УМ-2, СФ-4, СФД-2, СФ-5, СФ-16, СФ-26, СФ-10 или СФ-14. Приготовить десять растворов слабой кислоты с одинаковой концентрацией, но разными значениями pH. Для приготовления растворов градуированной пипеткой на 5 мл в десять пробирок налить по 3 мл раствора кислоты. В каждую пробирку добавить из градуированной пипетки на 10 мл по 7 мл буферного раствора с определенным значением pH. Рассчитать концентрацию кислоты в полученных растворах. [c.82]

Работа 1. Определение pH буферного раствора [c.659]

РАБОТА 5. ОПРЕДЕЛЕНИЕ pH РАСТВОР. БУФЕРНЫМ [c.217]

Методика спектрофотометрического определения констант ионизации заключается в получении зависимости оптической плотности серии образцов с одной и той же концентрацией исследуемого-соединения в буферных растворах от pH при выбранной длине вол-вы Я. В результате получают набор дискретных значений оптической плотности при различных pH, из которых графически или расчетом определяют искомую константу, ионизации К (точнее р/С= Методика требует приготовления большого числа растворов исследуемого соединения и работы с достаточно концентрированными буферными растворами. Одновременное определение оптической плотности и величины pH раствора невозможно. Зависимость оптической плотности от pH дискретна, а увеличение числа экспериментальных точек связано с большим расходом веществ и затратами труда. [c.277]

Потенциал асимметрии меняется со временем и поэтому влияет на водородную функцию стеклянного электрода, однако большим и внезапным изменениям он не подвержен. В принципе, он может рассматриваться как некоторая константа измерительного прибора. Именно поэтому стеклянный электрод перед измерением pH исследуемого раствора предварительно калибруют по стандартным буферным растворам, pH которых известен. В силу особенностей стеклянного электрода, а точнее мембраны, он требует определенного хранения и ухода. Для получения наиболее точных результатов новые или оставшиеся сухими электроды перед употреблением следует вымачивать в течение 1...2ч или даже оставлять в растворе на всю ночь. При этом электроды, предназначенные для измерения в растворах, где pH меньше 9, могут быть вымочены в воде или фосфатном буферном растворе (рНб,81). Электроды, которые употребляются исключительно в шелочных растворах, необходимо вымачивать в буферных растворах с большим значением pH. При работе необходимо следить, чтобы рН-чув-ствительный конец электрода не подвергался сильным механическим воздействиям. Стеклянные электроды нельзя погружать в хромовокислые растворы или в растворы других дегидратирующих агентов. [c.256]

По вопросу влияния ионизационных помех в пламени на определение натрия единого мнения нет. В ряде работ отмечено взаимное влияние натрия и калия, причиной которого является смещение равновесия ионизации [419, 938, 991]. Показано, что при введении сульфата калия в качестве буфера в растворы хлорида натрия в пламенах ацетилен—воздух и пропан—воздух повышается интенсивность излучения натрия (использован пламенный фотометр фирмы К. Цейсс [326]. Предложено уравнение, учитывающее влияние ионизации при определении интенсивности излучения натрия в зависимости от концентрации натрия [1244]. Отмечено взаимное влияние калия и натрия в пламени аммиак—воздух и аммиак—кислород [419]. Рассмотрены преимущества низкотемпературного пламени водород—воздух в снижении ионизационных помех [1107]. Отмечено, что литий стабилизирует равновесие ионизации атомов натрия и что интенсивность излучения натрия не изменяется в присутствии элементов с низким потенциалом ионизации [324]. В то же время авторы работы пришли к выводу, что при определении натрия в пламени ацетилен—воздух сульфат калия не является буферным раствором. Расчетным методом показано, что при концентрации натрия в растворе 10 —10 М равновесие ионизации натрия в пламени смещено влево [401]. Логарифм константы ионизации равен —11,38 и —9,0 в пламенах светильный газ—воздух (1970 К) и ацетилен—воздух (2360 К) соответственно. [c.119]

В зависимости от типа приборов электрофорез на бумаге обычно длится от 4 до 16 ч. Если используется общераспространенный буферный раствор Михаэлиса, то белки сыворотки дают 5 четко разграниченных фракций. После фиксации полоски бумаги можно легко обработать красителями, специфичными для белков, липо- или гликопротеидов. Окрашенные полоски можно хранить или, разрезав на участки, элюировать для фотометрического определения каждой фракции. Электрофорез на бумаге хорошо себя зарекомендовал в повседневной работе клинической лаборатории. [c.12]

Наиболее по.пный ряд индикаторов, предложенный Серенсеном для работы с буферными растворами, содержит 18 индикаторов и охватывает интервал pH от 0,1 до 12,7. Во многих случаях для определения pH вполне достаточно набора меньшего количества индикаторов (табл. XVHI.9). [c.467]

Сущность работы. Определение основано на титровании раствора соли никеля стандартным раствором ЭДТА с индикатором -мурексидом в среде аммиачного буферного раствора. [c.94]

Сущность работы. Определение основано на титровании свинца стандартным раствором ЭДТА в среде ацетатного буферного раствора в присутствии ксиленолового оранжевого. [c.95]

Выполнение работы. Для определения буферной емкости по кислоте налить в колбу емкостью 25 мл по 5 мл 0,2 М растворов СНзСООН и Hs OONa. В другой колбе приготовить контрольный раствор смесь 1 мл 0,2 н. СНзСООМа и 9 мл 0,2 н. СН3СООН. В обе колбы внести по 5 капель метилового оранжевого и рассчитать pH полученных растворов по (ХП.1). Исследуемую смесь оттитровать соляной кислотой до получения одинаковой окраски с контрольным раствором. Окраску сравнивать на фоне белого экрана. [c.194]

Работа 5. Определение термодинамических функций реакции, проте кающей в окислительно-восстановительном элементе Работа 6. Определение термодинамических функций реакции окис ления — восстановления методом потенциометрического титрования Работа 7. Определение pH образования гидроксидов металлов Работа 8. Определение буферной емкости растворов методом потен циометрнческого титрования. ........ [c.494]

Разработка метода определения опиатов на основе латексной агглютинации. На основе полученных реагентов - антител к опиатам и конъюгата морфина меченого латексом, был разработан метод для выявления опиатов в биологических жидкостях организма с использованием латексной агглютинации. Для этого непосредственно перед работой разводили латексный конъюгат до 1% концентрации буферным раствором. Специфичные антитела против опиатов разводили в плашке, используя серию двойных последовательных разведений. Для проведения опыта в микрокамеры с коническими лунками вносили по 10 мкл сыворотки каждого разведения и быстро добавляли равную аликвоту раствора латекса, модифицированного морфином или конъюгатом морфин-овальбумин. В качестве контроля использовш1и лунку, в которую не добавляли антитела. Интенсивность реакции агглютинации оценивали через 1 час по 4-крестовой схеме [2]. Из полученных результатов выбра1ш условия для проведения реакции ингибирования. Для этого использовали концентрацию антигена на латексе 100 мкг/мл и 50 мкг/мл, а разведения сыворотки соответствовали 1 16, 1 32 и 1 64, Морфин вносили в лунки после серии пятикратных разведений в интервале концентраций от 500 мкг/мл до 200 нг/мл, В каждую лунку вносили 7 мкл антиопиатной сыворотки, 7 мю1 раствора морфина соответствующей концентрации и 7 мкл раствора латекса. Контрольные [c.202]

Для создания определенного pH и поддержания на необходимом уровне готовят соответствующий буферный раствор. Если это возможно, то буферный раствор подбирают таким образом, чтобы его функциональная группа была похожа на функциональную группу образца. Так, ацетатный буферный раствор приемлем для анализа карбоновых кислот, фосфатный — для люирования нуклеотидов. Большое значение имеет чистота буферного раствора, так как он не должен детектироваться выбранным детектором, что особенно важно при работе в режиме градиентного элюирования. Чистота буферного раствора зависит от фирм-производителей, и даже разные партии одной фирмы могут различаться по составу. Каждая новая партия буферного раствора тестируется двумя холостыми хроматографическими опытами перед использованием. Второй опыт показывает, существуют ли вещества, отложившиеся в колонке в процессе регенерации или в течение последних стадий предыдущего градиента. Хотя большинство разделений проводят в водных буферных растворах, иногда добавляют органический растворитель (метанол, этанол) в количестве 3-10% для повышения селективности и улучшения растворимости образца. При этом концентрация растворителя не должна быть велика, чтобы не выдать осаждения буферной соли, о чем будет свидетельствовать появление течи в системе и увеличение сопротивления в колонке. [c.38]

Иная ситуация имеет место при проведении эксклюзионной хроматографии в водных средах. Из-за специфических особенностей многих разделяемых систем (белки, ферменты, полиэлектролиты и др.) и разнообразия применяемых сорбентов существует очень много вариаций состава подвижной фазы для подавления различных нежелательных эффектов [34, 35]. Общими приемами модификации является добавка различных солей и применение буферных растворов с определенным значением pH. В частности, поддержание рН=<4 дает возможность подавить слабую ионообменную активность силикагелей, обусловленную присутствием на их поверхности кислых силанольных групп. Требуемая ионная сила подвижной фазы достигается при концентрации буферного раствора 0,05-0,6 М оптимальную концентрацию подбирают экспериментально. Для предотвращения ионообменной сорбции катионных соединений наиболее часто используют такой активный модификатор, как тетраметиламмонийфосфат при рН=3. Однако при разделении некоторых белков могут проявляться гидрофобные взаимодействия, в свою очередь осложняющие эксклюзионный механизм разделения. Те же эффекты иногда проявляются и при работе с дезактивированными гидрофильными сорбентами. Для их устранения к растворителю добавляют метанол. Иногда в водную подвижную фазу вводят полярные органические растворители, полигликоли, кислоты, основания и поверхностно-активные вещества. [c.48]

Влияние катионов и анионов. Осаждение оксихинолината алюминия из ацетатного буферного раствора не избирательно, не мешают в значительных количествах лишь Mg, Ве, ш,е-лочные и щелочноземельные металлы. Бы. ю проведено много исследований с целью найти способы маскирования мешающих элементов. Особенно много работ по определению алюминия в растворах, содержащих железо. Попытки осаждать железо и алюминий фракцион-но ири различных pH не дали удовлетворительных результатов [747]. [c.36]

Множество широко применяемых интерфейсных систем для ЖХ-МС позволяет работать в широком диапазоне полярности исследуемых веществ и использовать потоки частиц для ионизации неполярных и средней полярности веществ, термораспылительную и химическую ионизацию при атмосферном давлении для определения полярных соединений, проточную бомбардировку быстрыми атомами и электрораспылительную ионизацию для сильнополярных, ионных и высокомолекулярных веществ. За исключением проточного варианта ББА, все эти устройства работают при скоростях потока от 0,2 до 1 мл/мин со всеми растворителями, обычно используемыми в обращенно-фазовой хроматографии, и летучими буферными растворами, такими, как ацетат аммония. Далее мы обсудим устройство интерфейсных блоков ЖХ-МС, схематичное изображение которых приведено на рис. 9.4-8. [c.280]

Осциллополярографическому определению фурфурола на твердом электроде посвящена работа [197]. При полярографическом исследовании метилвинилкетона [198] установлено, что этот мономер в буферных растворах образует в зависимости ст pH одну или две волны, а на фоне 0,1 М раствора КС1 — полярографическую волну с 1/2 = —1,42 В. Будешинский с соавт. [199] предложили методику полярографического определения метилвинилкетона в частично заполимеризованной массе, причем при сравнении различных методов авторы подчеркивают большую надежность полярографического метода благодаря его специфичности. Разработано амперометрическое количественное определение п-фурфурилиденбензтиазолил-2-сульфенамида в технических продуктах [200]. Полярографическое определение винилацетата в эмульсиях поливинилацетата описано Гейтцем [20Г. [c.136]

В уже упоминавшейся работе Турьяна с сотр. [241] представлен полярографический метод определения элементной серы (ингибитор термополимеризации) в смесях 2-метил-5-эти-нилпиридина и 2-метил-5-винилпиридина (фон — ацетатный буферный раствор в этаноле pH = 7,2). Чувствительность метода 5 10 % продолжительность определения 40 мин точность не ниже 10% (отн.). Возможно также определение серы в хлоропреновом латексе (Ульбрехтова и Крешков) и других системах, применяющихся в производстве резин. [c.178]

Предназначается для определения pH и окислительновосстановительных потенциалов. На передней панели прибора (рис. 57) находится шкала 1, градуированная в единицах pH и мВ. Включают прибор в сеть 220 В с помощью сетевого шнура ручкой 4 включают питание, при этом загорается контрольная лампочка 9 со светофильтром. В правой части панели установлены два переключателя 6 я 7 для включения прибора на род работы и на требуемый предел измерения соответственно. Потенциометры (переменные сопротивления) Ей (2) и 5 (3) служат для настройки прибора по буферным растворам. Переключатель 5 (Размах) для измерения pH в узком и широком диапазонах. Переменное сопротивление 8 служит для компенсации и изменения характеристик электродной системы при изменении температуры буферного раствора. Отсчитывают показания прибора в широком диапазоне pH (—1—14) по нижней шкале 1 при установке переключателя 5 Размах) в положение 15рН] на любом из узких диапазонов — по верхней П1кале 1 при соответствующем положении переключателя 7 Пределы измерения). Переключатель 5 устанавливают при этом в положение ЗрН. [c.268]