Буферные растворы применение

Применение буферных растворов в качественном анализе. Буферные смеси широко используются в аналитической химии, например, при проведении реакций окисления — восстановления при осаждении нерастворимых солей многих катионов и анионов, требуют,их соблюдения определенных знамений pH, как, напрнмер, осаждение сульфидов, гидроокисей, карбонатов, хроматов, фосфатов II по многих других случаях. [c.201]

Однако наиболее часто применяют ион-парную хроматографию на обращенной фазе, при которой в качестве подвижной фазы используют водный буферный раствор и органический растворитель, смешивающийся с водой, обычно метанол или ацетонитрил. В подвижную фазу добавляют противоион, заряд которого противоположен заряду молекулы, а в качестве сорбента используют силикагель с химически привитой фазой, обычно Се или i8. Иногда разделение осуществляют с применением несмешиваемой с водой механически удерживаемой фазы, например, бутанола. При разделении на обращенной фазе более стабильной, чем механически удерживаемая фаза, водные образцы могут непосредственно вводиться в колонку, что особенно важно для анализа биологических образцов. При этом нет необходимости в предварительной очистке, так как гидрофильные компоненты мгновенно вызываются из колонки. Градиентное элюирование проводят, изменяя концентрацию противоиона в подвижной фазе или меняя полярность растворителя. При изменении концентрации противоиона, который остается в неподвижной фазе, изменяется сила растворителя, а при изменении pH подвижной фазы изменяется селективность разделения. [c.75]

Рассмотренные три способа не могут дать удовлетворительного результата, если ионы очень мало различаются по свойствам и поглощаются ионитом почти одинаково. В этом случае эффективного разделения можно достичь, применяя метод ионообменной хроматографии с комплексообразователем, дающим с разделяемыми ионами комплексные соединения различной прочности. -Рассмотрим суть этого метода на примере разделения ионов редкоземельных элементов с применением лимонной кислоты в качестве комплексообразователя. Разделяемым катионам дают поглотиться в верхней части катионитовой колонки (сульфокатионит в ЫН4- или Н-формах). Затем через колонку пропускают растворы нитратного буферного раствора (лимонная кислота + гидроксид аммония), имеющие разные pH. При этом поглощаемые катионы образуют нитратные комплексные отрицательно заряженные анионы, прочность которых (и, следовательно, вымывание из катионитовой колонки) определяется pH и концентрацией цитратного буферного раствора. Так создаются условия для дифференциального вымывания поглощенных катионов. Чем прочнее образующийся комплексный анион, тем легче вымывается катион из колонки. [c.690]

Применение буферных растворов в химическом анализе [c.58]

IV. Органическое вещество, освобожденное от связей с подвижными формами полуторных окислов, переводится в растворимое состояние вторичной обработкой агрегата буферным раствором, примененным на втором этапе (II) анализа. Последующая интенсивность окрасок у некоторых почв превышает интенсивность первых окрасок. Количество обработок для выделения органического вещества при повторных — значительно меньше. Хотя органическое вещество при последующих обработках не переходит в раствор, но почва еще остается окрашенной, что указывает на неполноту снятия органического вещества. Агрегаты почвы часто после такой обработки все же не полностью распадаются на первичные частицы (минеральные зерна и глинистую плазму ). [c.16]

Измеряют pH приготовленного раствора, как указано в работе 22, с применением гальванического элемента, состоящего из индикаторного электрода, обратимого относительно ионов водорода, и электрода сравнения (см. рис. 10.2 и 10.3). Необходимо при этом помнить, что для измерения рН>8 хингидронный электрод не применяют. Измеренная и расчетная величины pH не должны расходиться более чем на 0,2 ед. Повторяют измерение pH 4—5 раз. К испытуемому раствору прибавляют 10 мл дистиллированной воды и после перемешивания раствора снова измеряют pH. Делают вывод относительно влияния разбавления на pH буферного раствора. [c.99]

Протекание аналитической реакции в растворе часто осложняется конкурирующими реакциями, в которые вступает один или несколько участников основного процесса. Это могут быть реакции взаимодействия катиона с компонентом буферного раствора, аниона слабой кислоты с протоном и т. д. В этом случае для расчета равновесий в растворе удобно использовать так называемые условные константы равновесия, которые относятся к фиксированной концентрации какого-либо компонента или компонентов раствора, например к постоянному значению pH. Условные константы равновесия связаны с концентрационными, или термодинамическими, простыми соотношениями. Практическое применение условных констант равновесия будет рассмотрено позднее. [c.27]

Необходимость применения буферных растворов, особенно для слабых ионитов, обусловлена тем, что даже ничтожное количество вытесненного Н" в случае небуферного раствора настолько резко изменит pH, что адсорбционное равновесие сильно сместится в пользу Н+, а следовательно, вытеснение Н-иона ионом Ва будет незначительным. По расчету, чтобы изменить равновесное значение pH от 5,5 до 6,5 для почвы при навеске в несколько граммов , потребуется несколько сот литров небуферного 0,1 н. раствора хлористого бария. [c.127]

Тизелиус воспользовался этим методом для обнаружения границ отдельных фракций белка, обладающим иным показателем преломления по сравнению с буферным раствором. Способ применения виден на схеме рис. 84. [c.135]

Таким образом, колориметрические и спектрофотометрические определения следует проводить в строго определенных интервалах значений pH раствора. Нужный интервал pH среды создается применением буферных растворов (см. книга 1, гл. I, 21). [c.246]

Иногда процесс протекает только по равновесию (204), минуя стадии (201) — (203). Однако при постоянных значениях pH и концентрации H L, которые создаются в определенном участке хроматографической колонки при применении буферных растворов, степень поглощения ионов металла зависит от константы стойкости Kml комплексного соединения и константы кислотной диссоциации Кн L органического комплексообразующего реагента. Связь между этими величинами наиболее удобно выразить через концентрационную константу равновесия (202) Кр. [c.243]

Применение флуориметрических методов требует использования очень чистых реагентов и воды. Дистиллированная вода должна быть очищена дополнительно с помощью ионитов. Реактивы должны быть по возможности самой высокой степени чистоты, или обычные реактивы нужно предварительно очищать. Буферные растворы рекомендовано очищать от примесей алюминия, пропуская через колонку с анионитом ЭДЭ-ЮП или активированным углем и использованием люмогаллиона для связывания алюминия. При применении оксихинолинового метода-буферный раствор встряхивают с хлороформным раствором оксихинолина. Все растворы надо хранить в кварцевой или полиэтиленовой посуде. [c.141]

Данквертс и др. , абсорбируя двуокись углерода щелочными растворами в насадочной колонне диаметром 10 см, установили, что результаты, полученные ими, согласуются с данными моделей Хигби и Данквертса. Результаты Ричардса и др. по абсорбции СОа буферными растворами в присутствии катализаторов в колонне того же диаметра согласуются с моделью Данквертса. Данные Таварес да Силва и Данквертса по абсорбции сероводорода растворами аминов в такой же колонне более согласуются с моделью обновления, чем с пленочной моделью (в этом случае между предсказаниями обеих моделей имеются существенные различия). Данквертс и Гиллхэм показали, что модель поверхностного обновления Хигби могла быть успешно использована для определения скорости абсорбции двуокиси углерода раствором NaOH в колонне диаметром 50 см. Все это говорит в пользу надежности применения моделей поверхностного обновления и свидетельствует о том, что методы, рассмотренные в этой главе,могут успешно применяться для установления влияния химической реакции на скорость абсорбции. Следует, однако, подчеркнуть, что в большинстве случаев данные для пленочной модели были бы почти такими же, что и для моделей обновления поверхности. [c.108]

Загрязнения, вносимые водой, обычно связанные, как установлено, с многоклеточной тканью животных, зачастую могут быть удалены иутем осторожного промывания или орошения образца буферным раствором такой же концентрации и состава, как и клеточные жидкости, который поддерживается ири температуре, соответствующей естественному окружению образца, Внутренние пространства могут быть дочиста промыты с помощью непрерывного внутреннего промывания. Если осторожное промывание оказывается недостаточным, тогда нужно использовать более бурное промывание с применением или без небольшого количества поверхностно-активного вещества. Если известен биохимический состав загрязняющего вещества, то может быть применена энзимная обработка. [c.225]

При переносе ИЭФ на узкие капилляры применение стабилизирующих гелей не является безусловно необходимым. Правда, ЭОП необходимо полностью подавить для того, чтобы сделать возможным образование градиента pH, иначе ЭОП быстро вынесет раствор амфолита из капилляра и сделает невозможным проведение фокусировки. Управлять ЭОП можно, как уже отмечалось в одной из глав, модифицируя поверхность капилляра. Понижать ЭОП для проведения фокусировки можно также, добавляя высоковязкие полимеры, например, метилцеллюлозу, для повышения вязкости буферного раствора. Преимущество последнего способа заключается в том, что зачастую для ИЭФ необходимо применять очень высокие значения pH, а ковалентное покрытие капилляра не может долго выдерживать сильнощелочные значения pH. [c.106]

Ограничения, связанные с необходимостью работать в зюлодном растворе и при отсутствии сульфат- и хлорид-ионов, отпадают, если, согласно Вилкинсу [59 (4)], избыток ЭДТА обратно титруют в присутствии перекиси водорода раствором соли меди с ПАН. Определение проводят в ацетатном буферном растворе. Применение кальцеина W в качестве флуоресцентного индикатора [59(9)] имеет преимущество перед применением ПАН и других цветных индикаторов, заключающееся в том, что можно определять большие количества титана, так как гашение флуоресценции в точке эквивалентности не перекрывается желтым фоном раствора. [c.200]

Типичное применение теории химической абсорбции основано на использовании данных о скорости массопередачн для оценки констант скорости довольно быстрых реакций. Это представляет особый интерес в катализируемых реакциях. Случаи такого типа могут быть найдены в серии статей Данквертса с сотрудниками [9—11] по каталитическому действию различных веществ на реакцию двуокиси углерода с водой. Скорость последней может увеличиваться иод действием катализаторов, так что реакция становится конкурентной с прямой реакцией между СО2 и ОН даже при довольно высоких значениях pH, таких, например, какие наблюдаются в буферных растворах. Джеффрейс и Буль [12] пришли к такому же заключению. В случае карбонизированных растворов амина величина pH настолько мала, что даже в отсутствие катализаторов реакция двуокиси углерода с водой значима (см. раздел 14.1). Неудивительно, что в этой реакции катализатор увеличивает скорость на порядки, как показано Астарита, Марруччи и Джойя [13], [c.164]

Образующийся меркаптид ртути восстанавливается в боратных буферных растворах при -0,55 В, что проявляется на вольтамперограммах в виде острого пика Чувствительность сигнала к изменению концентрации тиола достаточно высока, поскольку в этом случае по существу используется принцип инверсионной вольтамперометрии. Применение электронакоиления одного из продуктов ферментативной реакции позволяет значительно снизить нижнюю границу определяемых концентраций ингибиторов холинэстераз В некоторых случаях эта величина на несколько порядков меньше, чем в других электрохимических методах. [c.295]

Буферные растворы можно концентрировать или разбавлять в пределах 1 100. Их применяют для поддержания определен юго pH раствора. Анионы или катионы буферного раствора связывают ионы гидроксония или гидроксила, вводимые в раствор. Например, буферный раствор можно приготовить из смеси уксусной кислоты и ацетата натрия или из смеси гидроокиси аммония и хлорида аммония. Величина pH буферного раствора, приготовленного из смеси уксусной кислоты и ее соли, при изменении концентрации от 0,1 до 0,01 н. меняется только от 4,63 до 4,73. При том же разбавлении pH раствора НС изменится от 1 до 3, а в случае СН3СООН — от 2,86 до 3,86. Применение буферных растворов необходимо, когда реакцию нужно проводить при оптимальной [Н + 1 или [0Н 1. [c.58]

Ионы Zn(II) необратимо восстанавливаются из нейтральных и щелочных (иапример, из аммиачных буферных) растворов, что затрудняет его определение методами переменнотоковой полярографии. При подкисленин растворов степень обратимости возрастает и на фоне ряда кислот процесс восстановления протекает квазиобратимо, что значительно улучшает условия определения ионов 2п(П). В то же время в сильнокислых растворах потенциалы восстановления ионов цинка и водорода существенно сближаются, так что раздельное определение их методом постояннотоковой и дифференциальной импульсной полярографии делается невозможным. Поскольку ионы водорода восстанавливаются на ртути существенно необратимо, то при использовании метода синусоидальной перемениотоковой полярографии мешающее действие ионов водорода устраняется. В то же время в кислых средах необратимо происходит и восстановление кислорода, так что его сигнал на полярограмме не проявляется. В связи с этим применение переменнотоковой полярографии позволяет избежать продолжительной операции его удаления, упрощает конструкцию ячейки и оснащение рабочего места в полярографической лаборатории. [c.299]

Важнейшей областью применения электрофореза является анализ биоколлоидов, например анализ смесей белков в клиническом анализе. Белки, как амфотерные полиэлектролиты, обладают собственными зарядами, зависящим от pH среды. Регулируя значение pH, можно в широких пределах менять их подвижность и даже изменить направление движения в процессе электрофореза. Для каждого белка при определенном значении pH общее число положительных зарядов равно общему числу отрицательных зарядов. Эта иэоэлектрическая точка, при которой отсутствует движение частиц, является характерной величиной для определенного белка. Растворимость белка в этой точке минимальна. Подбирая соответствующие буферные растворы для установления определенной скорости движения и растворимости веществ, можно приспособить процессы электрофореза для решения разных проблем разделения веществ. Таким образом, электрофорез превосходит метод бумажной хроматографии. Кроме того, при помощи электрофореза, особенно при высоком напряжении, можно проводить разделение неионогенных веществ (например, сахар в виде боратного комплекса) [791. Методом электрофореза можно также определять изоэлектрические точки амфотерных веществ или заряды коллоидных частиц (по направлению движения). [c.387]

Поэтому при выборе, условий ироьоденпл ф014.) 1ег[)ических ре<1к-ций необходимо учитывать область поглоще 1ия анионсв, рекомендуя использование тех или иных вспомогательных реагентов (кислот, и е-лочей, компонентов буферных растворов). При применении экстракционно-спектрофотометрического метода для исследования процессов комплексообразования, разделения и определения многих элементов используются различные органические растворители. При выборе растворителей нужно учитывать их прозрачность в определенных участках спектра (табл. 5). [c.39]

Одним из самых важных применений электрофореза является использование его в анализе естественных смесей коллоидов, например белков, полисахаридов и нуклеиновых кислот, а также продуктов, полученных фракционной перегонкой. При электрофорезе между раствором белка и буфером в специальной У-образной трубке, снабженной электродами, образуется резкая граница, за движением которой можно проследить с помощью оптической шлирен-системы (разд. 11.10). Эти опыты обычно проводят при температуре 4° С, т. е. при максимальной плотности воды, так что температурный градиент в электрофоретической кювете, вызванный нагреванием током, сопровождается наименьшим градиентом плотности. Градиенты плотности горизонтально поперек кюветы стремятся вызвать конвекцию. На рис. 20.1 [1] показана электрофоретическая картина плазмы крови человека в буферном растворе (pH 8,6) диэтилбарбитурата натрия с ионной силой 0,10 (после 150 мин при 6,0 В/см и 1°С). Строится график зависимости градиента показателя преломления от расстояния в кювете (горизонтальная ось). Одна картина получена для той части кюветы, в которой белки опускаются вниз, а другая — для той части, где белки поднимаются вверх. Начальные положения границ указаны на рисунке тупыми концами стрелок. Различные виды белков представлены альбумином, аг, аг-, р-, у-глобу-линами и фибриногеном ф. Площадь под определенным пиком почти точно пропорциональна концентрации белка, дающего эту границу. Так, например, процент альбумина может быть получен делением площади пика альбумина на суммарную площадь всех пиков белков. е-Граница в спускающейся части и б-граница в поднимающейся части картины обусловлены не белковыми компонентами, а изменениями концентрации соли, которые возникают в опытах с обычным переносом вблизи начального положения границы. [c.603]

Однако даже применение точно приготовленных стандартных буферных растворов не гарантирует строгого количественного соответствия величины pH, измеренной электрометрйческим путем, действительной концентрации ионов водорода в растворе, если общая ионная концентрация его превышает определенный предел. [c.121]

Ранее изученные нами реакции осаждения ионов бария бихроматом кялия (см. гл. HI, 22, стр. 172) в присутствии смеси уксусной кислоты и ацетата натрия, отделение карбонатов бария, стронция и кальция от Mg " "-ионов в присутствии смеси. лорида аммония н гидроокиси аммония (см. гл. 1П, 19, . о,, 1б4 и 185) представляют собой примеры применения буферных растворов. [c.201]

Ряд неудобств (например, необходимость непрерывного пропускания водорода) ограничивает его применение. Во всяком случае, перед каждой серией измерений его необходимо проверять. Для этого определяют pH специально приготовленного буферного раствора 0,01 н. НС1 + 0,09 н. КС — раствор Вейбеля (рН = = 2,038) при 18° С или стан-рис. ь5. Водородный индикатор- дартнои ацетзтной буфернои [c.156]

Надуксусная [20, 211, надбензойная [22] и надтрифторуксусная [231 кислоты, перекись водорода с трех фтористым бором [24], кислота Каро [19], надмалеиновая кислота [251 и имеющаяся в продаже м-хлорнадбензойная кислота — все эти реагенты применяют в качестве окислителей. Из них особенно привлекательна надтрифторуксусная кислота. При применении этого реагента можно избежать переэтерификации сложного эфира кислотой, проводя реакцию в буферном растворе, например в кислом динатрийфосфате. Выходы в этой реакции получаются различные, но они могут составлять и 80— 90%. [c.313]

Иная ситуация имеет место при проведении эксклюзионной хроматографии в водных средах. Из-за специфических особенностей многих разделяемых систем (белки, ферменты, полиэлектролиты и др.) и разнообразия применяемых сорбентов существует очень много вариаций состава подвижной фазы для подавления различных нежелательных эффектов [34, 35]. Общими приемами модификации является добавка различных солей и применение буферных растворов с определенным значением pH. В частности, поддержание рН=<4 дает возможность подавить слабую ионообменную активность силикагелей, обусловленную присутствием на их поверхности кислых силанольных групп. Требуемая ионная сила подвижной фазы достигается при концентрации буферного раствора 0,05-0,6 М оптимальную концентрацию подбирают экспериментально. Для предотвращения ионообменной сорбции катионных соединений наиболее часто используют такой активный модификатор, как тетраметиламмонийфосфат при рН=3. Однако при разделении некоторых белков могут проявляться гидрофобные взаимодействия, в свою очередь осложняющие эксклюзионный механизм разделения. Те же эффекты иногда проявляются и при работе с дезактивированными гидрофильными сорбентами. Для их устранения к растворителю добавляют метанол. Иногда в водную подвижную фазу вводят полярные органические растворители, полигликоли, кислоты, основания и поверхностно-активные вещества. [c.48]

Приведенная иыше подробная методика в основном заимствована у Пальмера и Адамса . Имеются указания на то, что применение буферных растворов с целью обеспечить постоянство pH ведет к увеличению выхода фениларсиновой кислоты в этой реакции [c.503]

Расчеты суммарной жесткости и содержание иона кальция основаны на титровании стандартным раствором версената (натриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты). Применение различных буферных растворов и различных индикаторов позволяет отдельно рассчитать содержание кальция и, следовательно, содержание магния путем вычитания концентрации кальция из значения суммарной жесткости. Содержание сульфата кальция (нерастворенного) рассчитывается по результатам титрования с целью определения суммарной жесткости отфильтрованного разбавленного бурового раствора и исходного фильтрата бурового раствора. [c.125]

Если не применять в качестве буферного раствора уксуснокислый натрий, то выход дибромнда падает с 84 до 73%. Применение удвоенного против ука.чанного количества уксуснокислого натрия не улучшает результаты. При бро.мировании хатестерина п виде перемешиваемой суспензии в уксусной кислоте в присутствии буфера (в отсутствие эфира) прп 20° выход повысился до 89%, но из этого препарата при отщеплении брома был получен стерпн с низкой температурой плавления (145 147°), содержащий галоид (реакция Бейльштейна). [c.81]

Л тсд широко используется в аиалитинеской химии белков. Предпосылкой для этого является устойчивый, неподвижный градиент pH. Он достигается применением буферных растворов низкомолекулярных амфолнтов, которые обеспечивают высокую буферную емкость и разнообразные изоэлектрические точки. Они фокусярукугся в определенном месте в электрическом поле и передают свое значение pH окружению. [c.304]

Для ежедневной проверки конечной точки титрования к 50 мл растворителя добавляют 5 мл раствора метанитрофенола или, в случае применения буферного раствора тиофенола, 0,5 мл I н. раствора тиофенола и 2,8 мл 0,1 н. раствора едкого кали. Стакан с раствором устанавливают на титровальпый стенд, опускают в него электроды и включают мешалку. После перемешивания в течение 5 мин отмечают значение потенциала. Это значение потенциала принято за конечную точку титрования сильных оснований. [c.158]

Курс аналитической химии. Кн.1 (1968) -- [ c.200 ]

Аналитическая химия (1994) -- [ c.118 , c.319 ]

Курс аналитической химии Книга 1 1964 (1964) -- [ c.172 ]

Курс аналитической химии Издание 3 (1969) -- [ c.200 ]

Основы аналитической химии Издание 2 (1965) -- [ c.55 ]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология