Цветные реакции кислотных групп

Идентификация красителей на волокне основана на тех же общих принципах, что и идентификация их как таковых. И действительно, обе методики связаны друг с другом. Одним из основных признаков для открытия и характеристики красителя является взаимосвязь между красителем и волокном. Кроме того, применяя крашение волокна, соответствующего данному красителю, можно ээффективно отделить красящее вещество от неорганических примесей и веществ, не обладающих красящими свойствами. Цветные реакции и капельные пробы часто выполняются непосредственно на окрашенном волокне. Иногда приходится сгонять краситель с окрашенного текстильного материала (например, путем экстракции растворителя) и исследовать затем краситель как таковой. Экстракт в растворителе можно использовать непосредственно для наблюдения спектров поглощения. Однако в связи с идентификацией красителей на волокне возникает несколько специальных вопросов. В то время как при анализе красителя, как такового, обычно имеются достаточно большие количества для его всестороннего исследования, при анализе красителя на волокне часто в распоряжении исследователя оказывается всего несколько квадратных дюймов окрашенной или набивной ткани. В этих случаях необходимо использовать микрометоды и проявить большое умение и широкое знание процессов крашения, печати и ассортимента красителей. При этом первая стадия исследования должна состоять в определении природы волокна или смеси волокон в окрашенном текстильном материале (см. гл. VI), так как, зная природу волокна, можно направить исследование красителя по более определенному пути. Шерсть чаще всего бывает окрашена кислотными или кислотно-протравными красителями, шелк — кислотными красителями или прямыми красителями для хлопка, хлопок — субстантивными, азоидными, сернистыми и кубовыми красителями (в ситцепечатании к ним присоединяются хромирующиеся протравные и основные красители), вискоза и медноаммиачный шелк — теми же красителями, кроме сернистых. Для крашения ацетилцеллюлозы применяют определенную группу азокрасителей и антрахиноновых красителей. [c.1524]

Висмут образует малорастворимые феноляты при сравнительно высокой кислотности, при которой катионы, менее склонные к гидролизу, не могут дать фенолятов. 11аиболее важными реактивами на висмут являются фенолы с двумя соседними гидроксильными группами и 8-оксихинолин. Они образуют с висмутом характерные осадки, используемые для открытия, весового, объемного и колориметрического определений висмута и для его отделения от других элементов. Окись висмута в сернокислом растворе дает малоспецифичные цветные реакции с некоторыми фенолами и алкалоидами [857, 858]. [c.158]

В качестве органических реагентов, образующих с редкоземельными элементами прочные комплексные соединения, могут быть использованы описанные ранее реагенты, дающие с этими элементами цветные реакции [8]. В качестве ингредиентов соосадителей пригодны все те из реагентов, которые вследствие содержания кислотных групп способны соосаждаться тяжелыми катионами. [c.77]

НОСТИ цветных реакций. Эти попытки, однако, не имели достаточного основания, поскольку окраска, получаемая с белками, как правило, слабее окраски, получаемой с соответствующими белковыми гидролизатами. Это обусловлено, по всей вероятности, тем, что в белковой молекуле некоторые реактивные группы скрыты внутри глобулы и вследствие этого недоступны действию окрашивающего реагента (см. гл. VII). Поэтому для определения аминокислотного состава белка необходимо подвергнуть его полному гидролизу. Большинство аминокислот можно определить в кислотном гидролизате, однако некоторые аминокислоты обнаруживаются только после гидролиза белка гидроокисью бария (см. выше). Разделение смеси аминокислот представляет собой трудную задачу, так как аминокислоты являются амфолитами, растворимыми в воде и нерастворимыми в таких органических растворах, как спирт. Только иминокислоты пролин и оксипролин раство римы в этиловом спирте. Ввиду того что аминокислоты обладают сходными физико-химическими свойствами, их нельзя разделить фракционированием спиртом или нейтральными солями. Некоторые аминокислоты можно, однако, отделить путем осаждения их при соответствующих условиях. Например, растворимость цистина при нейтральной реакции и тирозина при слегка кислой реакции настолько мала, что при доведении реакции среды до соответствующего значения pH они почти полностью выпадают в осадок. Другие аминокислоты можно осадить специфическими реактивами. Однако ни один из этих методов не является полностью удовлетворительным в количественном отношении, так как все соответствующие осадки до известной степени растворимы. [c.31]

Кислотные свойства многоатомных спиртов не обнаруживаются обычными цветными индикаторами однако они обусловливают большую легкость образования соответствуюш,их солеобразных соединений — алкоголятов не только при действии щелочных металлов, но и при взаимодействии с гидратами окисей многих металлов, подобном реакции нейтрализации (см. опыт 124 и пояснение к опыту 40). Если в молекуле спирта имеются две соседние гидроксильные группы, то [c.102]

Фенольны.й гидроксил в этих кислотах может быть ацили-рован, алк 1лирован и обычно эти соединения дают цветную реакцию ари действии хлорного железа Кислотный характер фенолкарбоновых кислот проявляется в ряде нормальных реакций карбоксильной группы, например в образовании солей и сложных эфиров. Действие треххлористого или пятихлористого фосфора на фенолкарбоновые кислоты ке ограничивается образованием хлорангидридов галоидные соединения фосфора реагируют с фенольным гидроксилом с образованием сложных эфиров фосфорной или фосфористой кислоты. При более энергичном действии пятихлористого фосфора фенольный гидроксил может быть замещен хлором, хотя эта реакция не протекает гладко [c.284]

Скорость, с которой окисляются различные соединения, может быть различной. В каждом случае следует подбирать наиболее благоприятные условия, особенно при анализе еще не изученных соединений. Следует начинать с мягких условий, применяя йодную кислоту или перйодат в виде водного или слабокислого раствора при комнатной температуре, затем проводить реакцию при повышенных кислотности и температуре. Так как условия окисления для разных соединений различны, то, подбирая их соответствующим образом, может быть достигнута известная избирательность этой реакции. Реакция гликолей с йодной кислотой была использована также для определения концевых ненасыщенных групп и в соединениях, легко окисляющихся перманганатом до гликолей. Последние действием йодной кислоты превращаются в формальдегид, определяющийся по цветной реакции с хромотроповой кислотой. [c.165]

Авторы считают, что неспособность затрудненных фенолов к образованию межмолекулярных водородных связей обусловлена стерическими факторами по их менению, гидроксильные группы, зажатые между большими алкильными группами, физически не в состоянии подойти достаточно близко к гидроксильным группам соседней молекулы, чтобы образовать водородные связи. Однако вполне возможно, что главной причиной подавления молекулярной ассоциации затрудненных фенолов является их меньшая кислотность, и, вероятно, именно поэтому такие фенолы не обладают многими характерными для фенолов свойствами они не дают цветной реакции с хлорным железом, нерастворимы в щелочи и ацилируются лишь с очень большим трудом (Stillson, Sawyer, Hunt, 1945), Эта пониженная кислотность, по мнению автора, может I являться следствием стерического взаимодействия, поскольку большая группа в орто-положении, предотвращая достижение копланарности гидроксильной группы с бензольным ядром, не обеспечивает затрудненным фенолам возможности резонанса между такими структурами [c.228]

При комплексометрическом титровании в точке эквивалентности можно обнаружить мгновенное исчезновение титруемых ионов из раствора при помощи соответствующих индикаторов. Требования, предъявляемые к последним, заключаются в том, чтобы они обладали свойствами, аналогичными кислотно-основным индикаторам. В то время, как кислотно-основные индикаторы реагируют на изменение pH характерным изменением окраски, таким же образом так называемые комплексометрические индикаторы реагируют на изменение концентрации того или иного катиона. Поэтому им иногда присваивают название металлиндикаторы . Большинство аналитических реактивов, дающих цветные реакции с катионами, по многим причинам непригодны для этой цели. К ним предъявляются требования, которые заключаются в том, чтобы реакция ионов с индикаторами была достаточно быстра и обратима и чтобы образующийся продукт реакции был хорошо растворим в титруемой среде и отчетливо окрашен. Для этой цели пригодны вещества, способные обра.зовывать растворимые окрашенные комплексные соединения, имеющие другую окраску, чем само вещество. Поэтому такие основные комплексометрические индикаторы, как эриохром черный Т, пирокатехиновый фиолетовый и мурексид были в буквальном смысле слова изобретены для комплексометрии. В настоящее время уже известно большое число комплексометрических индикаторов, из которых большинство имеет исключительно характер комплексообразующих веществ и только в некоторых случаях обладает свойствами окислительно-восстановительных индикаторов. Некоторые из индикаторов можно считать универсальными , т. е. реагирующими с большинством катионов. Другие — почти специфическими , реагирующими с одним или с очень малой группой катионов. Такое деление индикаторов, более илн менее произвольное, и имеет относительное значение, поскольку обе группы индикаторов взаимно переплетаются. [c.284]

Для гистохимического и цитохимического обнаружения нуклеиновых кислот в живых клетках (обзоры и монографии — см. ) используют обычно характерное УФ-поглощение нуклеиновых кислот и специфические цветные реакции, основанные на высвобождении восстанавливающих групп остатков 2-дезоксирибозы при мягком кислотном гидролизе (реакция Фельгена для ДНК) или на способности полинуклеотидов образовывать комплексы с основными красителями (реакция Браше для РНК люминесцентные методы, основанные на взаимодействии с акридиновым оранжевым). Весьма существенным признаком, который позволяет надел<но идентифицировать вещество, дающее упомянутые выше реакции на срезе ткани, как ДНК или РНК, является исчезновение характерного УФ-поглощения или цитохимической реакции после обработки среза препаратами нуклеаз — ферментов, катализирующих расщепле- [c.28]

В слабокислых растворах все гидроксамовые кислоты реагируют с хлоридом железа (III) с образованием красного или фиолетового окрашивания. Эта цветная реакция вызывается наличием кислотной группы— ONHOH во всех гидроксамовых кислотах. Ион железа (III) образует с веш,еств ми, содержаш,ими эту группу, растворимые внутрикомплексные соли [c.318]

S. В их состав часто входит малое количество фосфора в виде Н3РО4 (протеиды), галоидов, металлов. Белки обладают свободными карбоксильными и (или) аминогруппами, в результате чего они амфотерны (обычно с преобладанием кислотного или основного характера, в зависимости от преобладания групп СООН или NH2 в молекуле). Поэтому белки растворимы также в кислотах и щелочах. Постепенно был открыт ряд цветных реакций иа белки, исторически сыгравших большую роль. Некоторые из этих реакций были общими для всех белков (или пептидов), например биуретовая реакция (фиолетовое окрашивание с щелочным раствором двухвалентной меди), нингидрин-ная реакция (свойственная аминокислотам и заключающаяся в возникновении фиолетовой окраски при обработке, смеси, содержащей а-аминокислоты, нингидрином — гидратом трикетогидриндена). Другие цветные реакции характерны для отдельных аминокислот, входящих в состав белка (например, ксантопротеиновая реакция — появление желтой окраски при нитровании азотной кислотой тирозина и т. д.). [c.654]

Исследование показало, что I (без кислотной группы в положении 3) также дает цветную реакцию со S . Следова- [c.63]

Амины нафталинового ряда. Восстановление кислотных, прямых и активных красителей, получающихся путем сочетания солей диазония с нафтол-, нафтиламин- и аминонафтолсульфокислотами, приводит к образованию нафталиновых производных, отличающихся в основном различным числом и положением амино-, гидрокси- и сульфогрупп. Идентификация этих соединений доставляет аналитикам наибольшее количество хлопот. Реакционная смесь после восстановления хлоридом олова (И) может быть освобождена от олова с помощью электролиза. Аминонафтол сульфокислоты, как правило, выделяют и охарактеризовывают посредством цветных реакций и путем превращения в характерные производные [6, 7]. Только некоторые из представителей этой группы аминов могут быть непосредственно идентифицированы с помощью бумажной хроматографии. Некоторые красители образуют характерные продукты при восстановлении хлоридом олова (И) при 180—200°С [13]. С целью идентификации некоторых 1,2-, 2,Ь [c.300]

Из других органических серусодерн ащих реагентов для определения рения применяют и-тиокрезол [52], 1-фенил-2-тиомочевину [29] и диэтил-дитиофосфорную кислоту [53]. Банковский и сотр. [541 предложили тиооксин по этому методу можно определять рений в присутствии 5000-кратных количеств молибдена. Цветная реакция протекает в 9 н. НС1. Б растворе с такой высокой кислотностью определению рения мешают метал.лы платиновой группы. Молярный коэффициент погашения хлороформного экстракта комплекса при 438 нм составляет 8,5-10 . С помощью тиооксина рений определяют в титановых сплавах [55]. [c.325]

Сложные эфиры, органические кислоты, амиды и ангидриды кислот можно легко перевести в гидроксамовые кислоты, реагирующие с хлоридом окисного железа в слабокислой среде с образованием красного или фиолетового окрашивания. Эта цветная реакция, по Файглю [7], вызывается наличием кислотной группы —СОЫНОН во всех гидроксамовых кислотах. Ион железа, вероятно, образует с веществами, содержащими эту группу, растворимые внут-рикомплексные соли. [c.106]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология