Глюкоза в питательной среде

Пересев петлей и получение стационарной культуры на жидкой питательной среде с крахмалом, глюкозой и кукурузным экстрактом в колбах на 100 мл (культивирование в течение 48—72 ч в термостате при 28 С) [c.161]

Магний. Магний активирует действие многих фосфатаз и эно-лазы. Ионы магния влияют на сохранение активности ферментов ири нагревании. Магний и марганец ускоряют потребление дрожжами глюкозы. Влияние магния тем сильнее, чем ниже концентрация глюкозы в среде. Питательные среды должны содержать 0,02— 0,05% магния в виде сульфата. Процессы брожения регулируются изменением концентрации ионов магния в результате присоединения его к органическим веществам. [c.198]

Другие эксперименты в ППР. Крук и др. [48] обсудили процесс ферментации и роста дрожжей в ППР, содержащем питательную среду, которая состояла из глюкозы, витаминов и неорганических веществ. Обозначив концентрацию клеток X, концентрацию субстрата [c.113]

Для культивирования щтаммов микроорганизмов при производстве аминокислот как источники углерода наиболее доступны углеводы — глюкоза, сахароза и реже фруктоза и мальтоза. Для снижения стоимости питательной среды в качестве источников [c.45]

Из культуральной жидкости витамин В12 вьщеляют экстракцией органическими растворителями, ионообменной хроматографией с последующим осаждением из фракций в виде труднорастворимых соединений. В процессе получения витамина В12 с помощью пропионовокислых бактерий применяют дорогостоящую антикоррозийную аппаратуру, сложные и дорогие питательные среды. Усовершенствование технологического процесса идет в направлении удешевления компонентов питательных сред (замена глюкозы сульфитными щелоками) и перехода с периодического куль- [c.55]

Питательные среды. Изолированные клетки и ткани культивируют на многокомпонентных питательных средах. Они могут существенно различаться по своему составу, однако, в состав всех сред обязательно входят необходимые растениям макро- и микроэлементы, углеводы, витамины, фитогормоны и их синтетические аналоги. Углеводы (обычно это сахароза или глюкоза) входят в состав любой питательной смеси в концентрации 2 — 3%. Они необходимы в качестве питательного компонента, так как большинство каллусных тканей лишено хлорофилла и не способно к автотрофному питанию. Поэтому их выращивают в условиях рассеянного освещения или в темноте. Исключение составляет каллусная ткань мандрагоры, амаранта и некоторых других растений. [c.161]

При приготовлении питательной среды количество углерода определяют, исходя из нормативов выхода биомассы. Доказано, что из 100 кг глюкозы можно получить 49—59 кг сухих дрожжей, т. е. в среднем 50 кг дрожжей на 100 кг сахара, следовательно, выход 50%. Из уксусной кислоты и ее солей выход дрожжей составляет 33—35 /о. [c.113]

В качестве продуцента при производстве вакцин используют особые, адаптированные на специальных питательных средах культуры вирусов и бактерий. Работая с живыми вакцинами надо следить за тем, чтобы под воздействием мутагенных факторов культура не восстановила свою вирулентность или не потеряла свои антигенные свойства. Важно подобрать такую питательную среду, чтобы облегчить дальнейшую очистку препарата. В производстве вакцин широко используют среду, приготовленную из гидролизата казеина с добавками глюкозы, дрожжевого автолизата или кукурузного экстракта. При получении дифтерийного токсина или вакцин кишечных заболеваний, культивируя глубинным методом аэробные бактерии, используют обычные системы аэрации. При культивировании анаэробных бактерий, например возбудителя столбняка, для удаления кислорода из среды через нее пропускают инертный газ, например азот. [c.125]

Производство кормовых дрожжей на гидролизатах или сульфитных щелоках основано на выращивании дрожжеподобных микроорганизмов в питательной среде, состоящей главным образом из моносахаридов (глюкозы, маннозы, галактозы, ксилозы, арабинозы) и уксусной кислоты, получаемых в результате гидролиза полисахаридов, которые содержатся в клеточных стенках различных растительных отходов. [c.335]

Хорошей питательной средой для выращивания дрожжей являются и предгидролизаты, а также оттеки, получаемые после отделения кристаллической глюкозы или ксилозы. Эти среды содержат сахар, состоящий в основном из гексоз и пентоз, некоторые органические кислоты, азотистые и минеральные вещества. [c.563]

При определении азотфиксирующей активности чис-тд>1Х культур микроорганизмов, выделенных из почвы или других мест обитания, М. В. Федоров предлагает следующее в эрленмейеровские колбы емкостью 300 мл наливают 100 мл питательной среды для азотобактера, содержащей 2% глюкозы. После стерилизации при давлении 0,5 атм. в течение 30 мин среду заражают суспен- [c.175]

Для определения пути расщепления глюкозы (окислительный или бродильный) ставят тест ОФ (тест окисления/ферментации) культуру засевают уколом в две пробирки с полужидкой питательной средой, содержащей глюкозу и бромтимоловый синий. В одну из них вносят слой вазелинового масла (для создания анаэробиоза) и инкубируют обе пробирки при 37 °С. Образование [c.32]

Выращивают анаэробные микроорганизмы в глубине плотной питательной среды (метод последовательных разведений Вейнберга). Культуру из среды берут пастеровской пипеткой с запаянным концом и переносят последовательно в 1, 2 и 3-ю пробирки с 10 мл ИХН. Затем продолжают производить разведения в пробирках из тонкого стекла диаметром 0,8 см и высотой 18 см, перенося материал в 4, 5 и 6-ю пробирки с расплавленным и охлажденным до 50 °С сахарным агаром или средой Вильсона—Блера. После застывания агара посевы помещают в термостат. Для приготовления среды Вильсона —Блера к 100 мл расплавленного МПА, содержащего 1 % глюкозы, добавляют 10 мл 20%-го раствора сульфита натрия и 1 мл 8%-го раствора хлорида железа. [c.37]

Важной частью любого исследования чистой культуры является состав среды, в которой происходит рост организмов. Сложная питательная среда типа питательного бульона, часто используемая в бактериологических лабораториях, непригодна для проведения работ с битумами. Такие среды состоят из органических материалов типа пептонов или мясных экстрактов и углеводов в качестве источника углерода и энергии для роста микроорганизмов. В такой среде организмы, которые могут разрушать битум или углеводород, как правило, отдают предпочтение углеводу, а не углеводороду. Поэтому для исследования действия микроорганизмов на битумы нужно получить химически определенную среду, содержащую азот, фосфор, серу и ионы металлов, необходимые для роста, но не содержащую углеводов или каких-либо других легко ассимилирующихся форм углерода. Такой средой является состав, предложенный Филлипсом и Трекслером [20]. Выбор правильного сочетания ингредиентов усложняется тем, что у различных организмов требования к пище неодинаковы. В табл. 5.1 приводится состав среды, использованной для роста организмов класса Pseudomonas на углеводородах. Часто такие среды способствуют также росту организмов других видов. Чтобы установить, будет ли эта среда поддерживать рост организмов определенного вида, следует ввести глюкозу и привить организм. Если будет наблюдаться рост, то среда,, вероятно, может быть пригодна для роста микроорганизмов данного вида при использовании углеводорода или битума в качестве источника углерода вместо глюкозы. [c.179]

Грибы . Они относятся к бес-хлорофиловьгм растениям, поэтому не нуждаются в солнечной энергии. Грибы, образующие преимущественно нитевидные формы (мицелий), называются плесенями. Плесень —это очень длинные, разветвленные, напоминающие волосы нити или гифы, которые прн росте образуют видимые невооруженным глазом массы, так называемый мицелий. Грибы, развивающиеся преимущественно в виде одноклеточных элементов, называются дрожжами. Резко разграничить дрожжи от плесени нельзя. Некоторые из них могут расти и в виде дрожжеподобных клеток, и в виде нитей с образованием мицелия. Это явление зависит от внешних условий среды. Например, низкие температуры благоприятствуют образованию плесени, тогда как некоторые вещества, входящие в состав питательных сред (кровь, глюкоза, соединения, содержащие группу —5Н), и отсутствие кислорода (анаэробиоз) благоприятствуют развитию дрожжеподобных клеток. Существуют различные вещества (сивушные масла, ионы кобальта, камфора и др.), способствующие переходу из дрожжеподобной формы в нитевидную. [c.272]

Для ускорения этого процесса А. А. Имшенецким рекомендованы оптимальные среды, которые обеспечивают развитие основного вида и спутников бактерий. В природных условиях развитие одного вида не наблюдается. Этот процесс носит симбиотический характер. Например, бактерии, разлагающие клетчатку, лучше развиваются при наличии спутни Юв, потребляющих продукты разложения целлюлозы (глюкозу, спирт, органические кислоты). Снижение концентрации этих веществ в среде способствует быстрому размножению целлюлозных бактерий. Следовательно, примене1н1е оптимальных питательных сред значительно сокращает время выделения определещюго вида бактерий. [c.288]

В качестве объекта исследования в работе использовали бактерии Es heri hia oli М-17. Культивиование обогащенных селеном клеток бактерий проводили на питательной среде следующего состава глюкоза - 10 г/л. (глюкозу вносили в питательную среду в виде 20%-го раствора) панкреатический гидролизат казеина - 25 г/л автолизат [c.222]

В качестве питательной среды применяют различные источники азота нитрат натрия — 0,6%, кукурузный экстракт — 4% источники углерода лактозу 3—5%, глюкозу 1—2%, и минеральные соли кислый фосфат калия (КН2РО4) — 0,15%, сульфат или лучше тиосульфат натрия 0,2—0,3%, сульфат магния — 0,05%, мел—0,5—0,8%, сульфат цинка — следы. Вместо кукурузного экстракта также применяют муку из хлопковых семян, [c.730]

Близкий к нему биополимер под названием полисахарид В-1459 получается при действии на раствор глюкозы, содержащий питательную среду — азотистые вещества и кислый ортофосфат натрия тех же бактерий Xantahmonas, и последующей нейтрализации. Единовременная добавка реагента составляет 0,03—1,5% так как при этом снижается pH, одновременно вводят гидрат окиси магния, обеспечивающий поддержание pH в пределах 8—9,2. По данным К. Паркса, реагент снижает водоотдачу и длительное время (7— 14 дней) удерживает ее стабильной даже при 135° С. [c.186]

Лактоза (молочный сахар) С12Н22О11— углевод группы дисахаридов, содержится в молоке. Молекула Л. состоит из остатков молекул глюкозы и галактозы. При кипячении с разбавленной кислотой происходит гидролиз Л. Получают Л. из сыворотки молока. Применяют для приготовления питательных сред, напр, при производстве пенициллина. [c.75]

Равномерно меченные аминокислоты можно получить биосинтетически с помощью превращения СОг в равномерно меченую глюкозу (через крахмал), используя ее в качестве питательной среды для дрожжевых клеток гидролиз полученного белка приводит к смеси равномерно меченных составляющих аминокислот. [c.251]

Для приготовления питательных сред в микробиологической промышленности используют сырье минеральное, животного и растительного происхождения, а также синтезированное химическим путем. Эти веш,ества, входя в состав питательной среды, обеспечивают развитие культуры и биосинтез определенных продуктов. Они не должны содержать вредных примесей. При выборе сырья необходимо учитывать его влияние на себестоимость, так как в микробиологическом синтезе важное значение имеет стоимость исходных веществ и материалов. В качестве источников углерода чаще всего используют углеводы (глюкоза, сахароза, крахмал, лактоза) или богатые углеводами натуральные продукты (меласса, кукурузная мука, гидроль и др.), а также жиры и даже вещества, содержащие углеводороды (нефть, парафин, керосин, природный газ, метан и др.). Источником азота обычно бывают неорганические соли — сульфат аммония, двузамещенный фосфат аммония, аммиак, нитраты, а также мочевина или натуральные продукты — кукурузный экстракт, соевая мука, дрожжевой автолизат и т. д. [c.75]

В производственных условиях питательную среду готовят из 1—3% мелассы, гидроля или глюкозы, 3—8% кукурузного экстракта или дрожжевого автолизата, добавляя N, Р2О5, К, Mg, Zn. Процесс ведут по методу глубинной ферментации при интенсивности аэрации 1,5—2,0 м мин воздуха на каждый кубический метр культуральной жидкости и температуре 29—30°С. Ферментация длится до стадии лизиса мицелия и образования спор. Динамика [c.173]

В посевных ферментаторах мицелий выращивают 12—18 ч, 15—207о объема культуральной жидкости используют для начала основной ферментации. Питательные среды для выращивания мицелия и биосинтеза пенициллина готовят обычно из кукурузного экстракта, лактозы, глюкозы, минеральных веществ и некоторых препаратов фенилуксусной кислоты — предшественников антибиотика. [c.188]

Были поставлены опыты по выращиванию грибка в течение 6 недель при 27° С, на питательной среде, состоявшей из следующих продуктов, растворенных в 1 л воды 15—20 г глюкозы 10 мл этанола 1,5 г первичного кислого фосфорно-кислого калия 1 г неопептона 0,5 г гептагидрата сульфата магния 2 г солянокислого тиамина и 4 г ацетата натрия. [c.785]

К культурам L. lepideus в питательной среде, содержавшей 1% глюкозы и меченой произвольным образом, прибавляли водный раствор конкурирующего вещества (например ацетата натрия или рибозы) в количестве до 10% от глюкозы, или раствор шикимовой кислоты в количестве 5%- [c.788]

Биосинтез леворина осуществляют на питательных средах с соевой мукой и глюкозой (Наместникова, Львова, 1970). Состав среды № 13 (%) соевая мука — 2, глюкоза — 2, хлорид натрия — 0,5, мел — 0,1. [c.80]

Для изучения маслянокислого брожения можно вос-по 1ьзоваться питательной средой, состоящей из мясо-пептонного бульона с добавлением 3—5% глюкозы. [c.98]

Для исследования процессов образования полисахаридов большое значение имеет использование меченых соединений, например Oq, меченых сахаров и их производных. Предполагается, что биосинтезирующая система растений не различает соединений, содержащих С и С, и в обоих случаях реакции протекают одинаково, Включение СОз в состав воздуха, окружающего растущее растение, и анализ образцов, собранных через определенное время после начала эксперимента, позволили сделать ряд интересных выводов. За очень короткие промежутки времени в процессе фотосинтеза образуется большое количество меченых соединений. Тем не менее у большинства растений основная масса С уже в первые минуты концентрируется в углеводах. Когда в питательную среду вводится радиоактивная глюкоза, радиоактивность прежде всего обнаруживается в полисахаридах и только потом — в иротеинах, липидах и других полимерах. Если учесть, что глюкоза и ее соединения являются исходным веществом для синтеза большинства биополимеров, то можно полагать, что путь иревра- [c.24]

В практике биохимических лабораторий широко применяют карбокси-метилцеллюлозу и ДЭАЭ-целлюлозу, сефадексы — нерастворимые сшитые декстраны (глюканы), нашедшие применение в технике разделения различных полимерных веществ. Высокомолекулярный полисахарид агар-агар, содержащийся в некоторых морских водорослях, широко используется в микробиологии дпя приготовления твердых питательных сред, а в кондитерской промышленности для изготовления желе, пастилы, мармелада. В пищевой и кондитерской промышленности нашли применение такие природные гликозиды, как ванилин, синигрин, пеларганидин. Как вкусовая добавка в пищевой промышленности используется сорбит — продукт восстановления о-глюкозы. В настоящее время получило широкое распространение биотехнологическое производство ксантана — бактериального полисахарида для нефтедобывающей, пищевой, медицинской промышленности, сельского и лесного хозяйства. [c.238]

Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры и ее идентификация необходимы для подтверждения диагноза листериоза. Листерии растут на простых питательных средах, но более интенсивный рост отмечается на кровяном агаре или средах, обогащенных глюкозой, глицерином, дрожжевым экстрактом, сывороткой, печеночной тканью. Материал засевают на плотные среды. Для подавления роста сопутствующих микроорганизмов используют специально разработанные селективные среды с антибиотиками и/или красителями, хлоридом лития, фенилэтано-лом (агары Оксфордский, PAL САМ яла др.). Те же добавки используют в составе бульонных сред для обогащения исследуемого материала (накопление листерий ведут при 30 °С в течение 24 — 48 ч). Иногда используется также метод холодового обогащения (материал выдерживают при 4 °С в течение 10 — 50 сут). Посевы на плотных средах инкубируют при 37 С до 7 сут. [c.179]

Получение глюконовой кислоты. Используют селекционированные штаммы Aspergillus niger, культивируемые в ферментаторах при интенсивных аэрации и перемешивании, поддерживая постоянными температуру 30 С и pH среды 6,0-7,0. Технологический процесс можно проводить в одном из двух вариантов нейтрализации среды при ее закислении в ходе биосинтеза целевого продукта — мелом или раствором едкого натра. В первом случае исходная питательная среда должна содержать 10-15 % глюкозы, поскольку кальция глюконат ограниченно растворим в воде при 30 °С (порядка 40 г/л) во втором случае образуется натрия глюконат, который хорошо растворим в воде (до 400 г/л при 30 °С и 569 г/л — при 80 С), и поэтому концентрацию глюкозы в исходной среде можно повысить до 35 %. [c.210]