Витамин щелочной гидролиз

Проведенные исследования показали [9], что витамин А в рыбьих жирах, полученных по методу мягкого щелочного гидролиза, сравнительно устойчив вследствие сохранения в этих условиях переработки натуральных антиоксидантов и эфирной формы витамина А. [c.414]

При исследовании пищевых продуктов с содержанием витамина В свыше 1 мкг% может быть использован колориметрический метод, основанный на реакции кальциферолов с хлоридом сурьмы [17, 68]. Метод позволяет определять как холекальциферол (витамин Вз), так и эргокальциферол (витамин В2). При наличии обеих форм витамина В, что может иметь место в витаминизированных пищевых продуктах, определяется их сумма. Анализ состоит из следующих операций омыления (щелочного гидролиза), осаждения стеринов диги-тонином, хроматографии (адсорбционная и распределительная) и колориметрической реакции с хлоридом сурьмы. Метод пригоден для определения содержания витамина В в рыбьем жире, натуральной печени трески, яйцах, сливочном масле, икре рыб, пищевых продуктах, обогащенных витамином. Несмотря на удовлетворительную точность, химический метод весьма трудоемок и длителен, поэтому мало пригоден для контроля обогащаемых продуктов. [c.303]

I мкг% может быть использован колориметрический метод, основанный на реакции кальциферолов с хлоридом сурьмы [14]. Метод позволяет определять как холе-кальциферол (витамин Вз), так и эргокальциферол (витамин Ог). При наличии обеих форм витамина О, что может иметь место в витаминизированных пищевых продуктах, определяется их сумма. Схема анализа следующая омыление (щелочной гидролиз), осаждение стеринов дигитонином, хроматография (адсорбционная и распределительная) и колориметрическая реакция с хлоридом сурьмы. [c.204]

Гидролиз белков можно провести ферментативно или используя кислоты и щелочи. При щелочном гидролизе белков возможно разрушение некоторых аминокислот или их изомеризация в )-формы, которые в биологических системах используются не полностью. Надо отметить, что в щелочной среде инактивируются некоторые витамины. При кислотном гидролизе белков разрушаются незаменимая аминокислота — триптофан и некоторые витамины группы В. Гидролиз белков можно осуществить, используя препараты протеолитических ферментов. Кроме того, в самих клетках дрожжей есть активные протеолитические ферменты, которые при определенных условиях в среде могут разрушать клеточные белки (автолиз). [c.110]

Щелочно гидролиз печени служит средством для разрушения химическои связи между белком и витамином А, и, следовательно, потерн витамина А в белковых отходах будут увеличенными, еслп процесс гидролиза будет неполным, технологический режим гидролиза должен быть установлен для каждой партии печени [c.167]

Недостаток этого метода заключается в низком выходе эргостерола, потере витаминов группы В и невозможности использо вания дрожжевого шрота для кормовых целей Низкий выход эргостерола объясняется тем, что при щелочном гидролизе не вполне разрушаются сложные и весьма устойчивые комплексы эргостерола с белком дрожжевой клетки [c.218]

Это явление свидетельствует о наличии какой-то связи между витамином А и белковой частью печени возможно, что и в данном случае имеет место образование химического соединения белков и витамина А. Следовательно, для полного извлечения витамина А из печени рыб необходимо разрушить связь между белком и витамином А. Этог процесс можно осуществить либо обезвоживанием печени, либо щелочным гидролизом ее. Процесс высушивания печени сопряжен с термической обработкой в течение длительного времени (8— 10 час.), что обусловливает большие потери витамина А и требует наличия сложных сушильных устройств. [c.149]

Отсюда следует, что для производственной практики наиболее эффективным методом разрушения связи между белком и витамином А является щелочной гидролиз. [c.149]

Таким образом, разрушение белкового компонента и освобождение связанных с ним витаминов может быть осуществлено тремя методами 1) щелочным гидролизом (омыление), 2) кислотным гидролизом и 3) энзиматическим гидролизом. [c.218]

Применяемые в настоящее время методы определения витамина Е в пищевых продуктах включают следующие основные стадии подготовку образца, щелочной гидролиз жиров (омыление), экстракцию неомыляемого остатка органическим растворителем, отделение витамина Е от мешающих анализу веществ и разделение токоферолов с помощью различных видов хроматографии и количественное определение. [c.203]

Свободная пантотеновая кислота и многие из ее солей очень гигроскопичны известна только одна малогигроскопичная соль — кальциевая, которая легко растворяется в воде и устойчива к автоклавированию. Подобно своим более сложным производным, пантотеновая кислота легко гидролизуется поэтому ее стимулирующая рост активность подавляется (для всех бактерий, использующих интактный витамин) при кислотном или щелочном гидролизе. [c.204]

Заслуживает внимания способ обработки активного ила, включающий кислотный гидролиз и щелочную экстракцию [198—200]. При кислотном гидролизе активный ил обезвреживается вследствие гибели патогенных микроорганизмов и образуются водорастворимые формы белковых, углеводных, минеральных веществ и витаминов. Полученный гидролизат можно использовать в качестве питательной среды для культивирования различных микроорганизмов. При щелочной экстракции происходит извлечение из активного ила водо- и щелочерастворимых белковых веществ [198]. [c.102]

При определении ряда витаминов задача часто осложняется тем, что многие из них находятся в природном материале в связанном состоянии в виде комплексов с белками или пептидами, а также в виде фосфорных эфиров. Для количественного определения необходимо разрушение этих комплексов и выделение витамина в свободном виде, доступном для физико-химического или микробиологического анализа. Обычно это достигается путем применения особых условий обработки (кислотный, щелочной или ферментативный гидролиз, автоклавирование и т. д.). [c.196]

Значительно более распространены катиониты КБ-2 и КБ-4, получаемые щелочным омылением сополимеров метилакрилата или метилметакрилата и ДВБ. Высокая химическая стойкость и стойкость к гидролизу при повышенных температурах позволяют использовать карбоксильные катиониты для умягчения высокоминерализованной воды, для извлечения поливалентных катионов, для разделения и очистки аминокислот, алкалоидов, витаминов, антибиотиков и т. д. [c.112]

Витамин Ог (кальциферол) получают облучением эргостерина ультрафиолетовыми лучами. Витамин Од образуется при действии света на 7-дегидрохолестерин. Вероятный механизм действия витамина О заключается в активации щелочной фосфатазы, что способствует гидролизу органических фосфатов и образованию фосфат-ионов, необходимых для формирования зубов и костей. [c.303]

ДИТЕРПЕНЫ. Среди продуктов щелочного гидролиза хлорофилла (разд. 6.8) имеется спирт под названием фитол СаоНзвОН. Открытый в 1909 г. Вильштеттером фитол в настоящее время применяется в качестве предшественника в промышленном синтезе витаминов Е и К,. [c.521]

Найдено, что кальций-связывающие участки некоторых белков относительно богаты остатками у-карбоксиглутаминовой кислоты. Она встречается, например, 10 раз в первых 33-х остатках последовательности из 582-х остатков протромбина, причем каждый раз в виде близко расположенных дублетов. Карбоксилирование остатков глутаминовой кислоты в этом белке, по-видимому, осуществ ляется в присутствии витамина К [15]. Как производное малоновой кислоты, она декарбоксилируется в процессе кислотного гидролиза, но может быть выделена после щелочного гидролиза [16], однако она дает крайне слабую реакцию с нингидрином. Установлено, что цитруллин (7), который долгое время считали промежуточным продуктом щелочной деградации аргинина в орнитин, входит в состав белка клеток сердцевины волос млекопитающих и игл дикобраза [17]. [c.232]

Прп еще более мягком кислотном гидролизе цианокобаламина — в 20%-нон соляной кислоте при 100" С 1100J или в н. соляной кислоте в течение часа [101] — выделен 4х)сфорный эфир а-рибазола (XXII) [1001. Так как этот фосфорный эфир а-рибазола, имеющий т. пл. 240—24Г С (с разл.), не обнаруживает а-гликольной группировки, способной расщепляться с йодной кислотой, то, по-видимому, эфир образован по 2- или З -гидроксильным группам [1001. При кислотном или щелочном гидролизе фосфорный остаток может мигрировать, вероятно, между положениями 2 и 3, и поэтому в полученном соединении эфирная связь не обязательно должна быть образована с тем же гидроксилом, что и в витамине 1Ю2, 1031. [c.587]

Щелочной гидролиз цианокобаламина характеризуется многими особенностями по сравнению с кислотным. При энергичном щелочном гидролизе кобальтсодержащего комплекса ионогенносвязанный кобальт отщепить не удалось [109] это дает основание полагать, что атом кобальта в молекуле витамина связан координационно с атомом азота в положении 3 молекулы бензимидазола [ПО]. [c.589]

В Розанова [6] изучала влияние различных условий на стой- кость концентратов витамина А, концентраты были получены изч различных пород рыб, методом щелочного гидролиза и хранились 5 в гермелически укупоренном виде прп температуре 5° и 16—18° в темном месте Автором получены след ющпе результаты [c.144]

Таким образом, расчет показывает, что извлечение витамина А из печени жиром может представить практический интерес лишь для китовой печени, жир которой очень богат витамином А Для остальных видов рыб экстракция витамина А жиром неприемлема Необходимо, однако, учесть, что высушивание печени (даже при глубоком вакууме) и последуюш,ее тонкое измельчение ее обязательно будут сопровождаться большими потерями витамина А, так как выполнение этих процессов связано с аэрацией Поэтому, судя по опытам В Розановой [6], наиболее рациональным является переработка маложирной печени на концентрат витамина А по ме ходу щелочного гидролиза [c.152]

Необходимо, однако, учесть, что высушивание печени (даже при глубоком вакууме) и последующее тонкое измельчение ее обязательно будут сопровождаться большими потерями витамина А, так как выполнение этих процессов связано с аэрацией. Поэтому, судя по опытам В. Розановой [6], наиболее рациональным является переработка маложирной печени на концентрат витамина А по методу щелочного гидролиза. [c.152]

Щелочной гидролиз липидов. Раств яют 1 вес. ч. емкого кали в. 1 вес. ч. дистиллированной воды и после охлаждения разбавляют этот концентрированный раствор 3—4 ч. метанола. Омыляемую пробу липида обрабатывают 10-кратным количеством раствора гидроокиси калия и оставляют на 12 час при комнатной температуре. Это холодное омыление следует особенно рекомендовать, если имеют дело с липидами, содержащими витамины, или с производными сопряженно ненасыщенных жирных кислот. Чаще всего проводят нагревание с обратным холодильником в течение 1—12 час в токе азота. Продолжительность кипячения зависит от првроды омыляемых липидов. Бели имеют дёло [c.147]

Определению витамина А перечисленными методами, как правило, предшествует подготовительная стадия, включающая щелочной гидролиз жироподобных веществ (см. сказанное выше об определении Р-каротина) и экстракцию неомыляе-мого остатка органическим растворителем. Многие пищевые продукты содержат вещества, которые, подобно каротиноидам, совместно с витамином А переходят в неомыляемую фракцию и мешают спектрофотометрическому, флюорометрическому и колориметрическому определению. В таких случаях проводят хроматографическое отделение витамина А от сопутствующих соединений, используя окись алюминия (активированная, влажность 4%), окись магния, кизельгель и др. При наличии большого количества мешающих анализу веществ иногда бывает необходима повторная хроматографическая очистка на колонках с подбором адсорбентов, обладающих различными поглощающими свойствами [И]. [c.203]

Общность всей этой группы витаминов наглядно проявляется, например, в том, что при анаэробном щелочном гидролизе связанных форм фолиевой кислоты — ферментационного L. asei-фактора (IV) и витамина Вс — конъюгата происходит образование свободной птероил-глутаминовой кислоты (III) с одновременным выделением соответственно двух и шести молей глутаминовой кислоты. Имеются также данные о возможности физиологического превращения ксантоптерина в фолие-вую кислоту. [c.415]

Напишите уравнение реакции гидролиза витамина РР (никоти-намид). Какова структура получившегося вещества в кислой, нейтральной и щелочной средах [c.181]

Цианокобаламин имеет полиамидный характер, что установлено по выделению аммиака (6 молей) при кислом гидролизе [11, 27, 88] и данным инфракрасного спектра. При анализе продуктов гидролиза цианокобаламина в кислых, нейтральных и щелочных растворах эф ктивно применен метод электрофореза и хроматографического разделения. Электрофорез на бумаге при pH 6,5 и 10 позволил разделить продукты расщепления на отдельные соединения по их ионным зарядам. Ступенчатый гидролиз в холодной разбавленной соляной кислоте показывает присутствие трех амидных групп, относящихся, по-видимому, к боковым цепям пропионовых кислот. Получены три одно-, три двух-, одна трех- и одна четырехосновная кислоты, содержащие нуклеотидную часть молекулы витамина эти кислоты были превращены с хлоругольным эфиром в смешанные ангидриды и затем с аммиаком в цианокобаламин [27]. [c.587]

Пользуются коэффициентом экстинкции эстера, а не свободного витамина, потому что большая часть витамина А в сыворотке эстерифицирована и гидролиз очень неполный, но щелочная обработка облегчает извлечение витамина и удаление мешающих примесей. Омыление и экстракцию выгодно вести в узких длинных пробирках, чтобы уменьшить улетучивание и получить достаточно высокий слой для снятия растворителя. [c.368]

В щелочном растворе тиамин легко окисляется до тиохрома. Это соединение, будучи растворено в изобутиловом спирте, флуоресцирует в ультрафиолетовом свете. На основании указанных свойств разработан метод флуорометрического определения тиамина. Однако при попытке определить этим методом тиамин в пищевых продуктах возникают трудности. Во-первых, часть витамина содержится в пище в виде сложных эфиров пиро- и ортофосфорной кислот. Окисление этих эфиров дает флуоресцирующие соединения, которые растворимы в воде, но не растворяются в изобутиловом спирте. Это затруднение устраняется гидролизом сложных эфиров перед окислением. Во-вторых, пищевые продукты содержат и другие вещества, ведущие себя подобно тиамину и мешающие поэтому его определению. Хеннесси и Церецедо [6] отделили тиамин от этих примесей методом ионного обмена. Коннор и Штрауб [7] несколько усовершенствовали этот метод. Кемп и Банделин [8] сконструировали удобный прибор для определения тиамина. [c.236]

Поскольку в обоих случаях образовавшийся продукт обладал более устойчивым неприродным г ис-С/В-сочленением, первый метод синтеза был видоизменен с целью образовать кольцо В из полупродуктов, не содержащих кетогруппу при Сд и поэтому неспособных к изомеризации в цис-С/В-эпимеры [898]. Присоединение цианистого калия к кислоте (77) и последующий кислотный (а не щелочной, как ранее) гидролиз привели к смеси цис- и транс-изомеров, из которой путем кристал,1шзации был выделен чистый /тгранс-изомер, образующий при этерификации транс-диэфир (80). Восстановление кетогруппы, циклизация образовавшегося оксидиэфира но Дикману и декарбоксилирование приводят к 1-транс-С/В-кетолу (79). Расщепление рацемической дикислоты, отвечающей диэфиру (80), путем кристаллизации бруциновых солей и проведение с полученными оптическими изомерами описанных выше превращений позволили получить й-энантиомер кетола (79) [898], идентичный продукту, образующемуся при окислении витамина Вд [899]. Этот энантиомер и был использован в качестве СВ-фрагмента при синтезе витамина В (схема 90). [c.232]

Определение ряда витаминов часто осложняется тем, что многие из них находятся в природе в связанном состоянии в виде комплексов с белками или пептидахми, а также в виде фосфорных эфиров. Для количественного определения необходимо разрушить эти комплексы и выделить витамины в свободном виде, доступном для физикохимического или мйкробиологического анализа. Это достигается обычно путем использования особых условий обработки (кислотным, щелочным или ферментативным гидролизом, автоклавированием и т. д.). [c.289]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология