Центрифугирование биомассы

Количество биомассы дрожжей (60—80 г/л) определяется центрифугированием каждые 2 ч содержание сухих растворимых веществ (1,0—2,2%) —с помощью рефрактометра. В биомассе должно содержаться 10—20% почкующихся дрожжевых клеток и ие должно быть посторонних микроорганизмов (определяют каждые 2 ч под микроскопом нли в камере Горяева). [c.308]

Аппаратура для обработки продуктов ферментации. Биомассу микроорганизмов отделяют от культуральной жидкости центрифугированием, фильтрацией или коагуляцией. [c.93]

Один из вариантов — метановое брожение разбавленного водой навоза в анаэробных термофильных условиях. Процесс осуществляется в закрытых резервуарах — метановых танках. Выделяется метан — газ, который используется в качестве горючего. Бактериальную биомассу отделяют центрифугированием или осаждением и обезвоживают (см. получение кормового витамина В12). ВодУ рециркулируют или используют для орошения полей. [c.224]

Посевной материал выращивают в колбах на качалке, затем в аэробных условиях по методу глубинного культивирования в ферментаторе за 2—3 сут увеличивают сухую биомассу бактерий до 4—8 г/л. Бактерии этих групп, как и большинство микроорганизмов, лучше всего переносят высушивание в стационарной фазе роста. После центрифугирования получают пасту с 89— 92%-ным содержанием влаги. Для высушивания можно использовать контактный метод, применяя в качестве адсорбента сухой стерильный каолин, равномерно примешиваемый к биомассе в таком количестве, чтобы влажность смеси была 7%. В таком виде получают сухой препарат, в котором сохраняется 40—60% живых клеток. Хорошие результаты дает лиофилизация с применением защитных сред, например сахарозы — желатина и др. [c.131]

В микробиологической промышленности, так же как и в других производственных сферах, все технологические процессы связаны с большим расходом воды. Необходимо отметить, что главный процесс — культивирование микроорганизмов — идет в водной среде. Масса клеток в конце ферментации обычно не превышает 1—2%, а концентрация растворенных веществ — 5—10%. Независимо от того, где находится целевой продукт — в клеточной массе или в растворе, нерастворимую фракцию, включая и биомассу, перед спуском непригодного жидкого остатка в канализацию отделяют центрифугированием, фильтрацией или осаждением. Если в жидкости после выделения нужных продуктов остается много редуцирующих веществ в виде ассимилируемых микроорганизмами источников углерода, то такую жидкость культивации можно использовать в качестве среды для получения кормовых дрожжей или кормового витамина В и, а также других полезных веществ и продуктов. Однако даже после повторного использования жидкие отходы еще содержат определенное количество веществ, дальнейшее использование которых невыгодно. Эти отходы вместе с питьевой, бытовой и другими видами воды попадают в канализацию. Объем сточных вод можно уменьшить, применяя, где возможно, рециркуляцию. Это в первую очередь относится к охлаждающей воде. В ряде случаев остаток культуральной жидкости или часть ее можно использовать для приготовления питательных сред. [c.215]

Центрифугирование Концентрация биомассы, % АСВ [c.102]

Если для приготовления вакцины используют биомассу бактерий, после ферментации клетки отделяют центрифугированием или фильтрацией и промывают для удаления остатков питательной среды. Если антиген находится в растворе (токсин), его стерилизуют методом холодной стерилизации (фильтрация). [c.125]

Для разрушения клеток биомассу вначале промывают деци-молярным раствором сахарозы (pH 7,3), содержащим какой-либо буфер, этилендиаминтетрауксусную кислоту и альбумин. Затем добавляют стеклянные микрошарики и гомогенизируют в дезинтеграторе 1—2 мин при 13000 об/мин. Клеточные стенки и стеклянные микрошарики отделяют центрифугированием. [c.202]

Химический состав одноклеточных организмов. Вес сырой биомассы бактерий определяют после отделения клеток от жидкой питательной среды путем центрифугирования. Осевшая клеточная масса содержит 70-85 % воды таким образом, сухая биомасса составляет 15-30 % от сырой массы. Если клетки содержат много запасного материала (липиды, полисахариды, полифосфаты или серу), доля сухой массы больше. Сухое вещество бактерий -- это в основном полимеры [белки (50%), компоненты клеточной стенки (10-20%), РНК (10-20%), ДНК (3%)], а также липиды (10%). Десять важнейших химических элементов представлены в клетках бактерий примерно следующим образом углерод — 50 %, кислород — 20 %, азот — 14 %, водород — 8 %, фос( юр — 3 %, сера — 1 %, калий — 1 %, кальций — 0,5 %, магний — 0,5 % и железо — 0,2 % [64]. [c.10]

Культуру выращивали на МПА в течение 24 ч при температуре 37°. Клетки трижды отмывали физиологическим раствором (0,56%) и центрифугировали при 6000 об/мин в течение 20 мин, 10 г сырой биомассы разрушали с помощью гомогенизатора Л-17 [187] в рефрижераторной центрифуге при температуре 4° в фосфатном буфере (pH 7,0). Бесклеточный экстракт, представляющий собой надосадочную жидкость, после центрифугирования гомогената клеток, активно дезаминирует ГМД 5-минутного контакта бесклеточного экстракта с 1%-ным раствором ГМД в соотношении 1 1 достаточно для полного разрушения токсического вещества. При этом наблюдается [c.181]

Наилучшие показатели по инактивации клеток микроорганизмов достигаются при высокотемпературном плазмолизе (130—150 °С). Достаточно простой и надежной является технологическая схема обезвоживания суспензии активного ила, включающая флотацию, центрифугирование, плазмолиз и сушку. После флотации концентрация биомассы в суспензии составляет 3—5 % абсолютно сухих веществ. При использовании центрифугирования концентрация может составлять 6—10%. Более высокие концентрации вряд ли целесообразны, так как текучесть концентрированной суспензии активного ила резко уменьшается, а с повышением ее вязкости может заметно ухудшиться процесс сушки распылением. В случае обезвоживания густых суспензий возможно структурирование дисперсных систем, что также затруднит сушку. [c.95]

Таблица П- Зависимость эффективности разделения суспензии микробной биомассы (активного ила) от режима центрифугирования

В тех случаях, когда потребители дрожжей находятся в непосредственной близости к спиртовому заводу, целесообразно выпускать дрож.жи в виде суспензии, получаемой после центрифугирования, с содержанием около 500 кг биомассы в 1 т, е. 12,5% сухого вещества, В этом случае отпадает необходимость в затратах на упаривание и сушку дрожжей. [c.447]

Согласно формуле (2.3) снижение вязкости культуральной жидкости должно улучшать сепарационные характеристики оборудования. В большинстве случаев повышение температуры культуральной жидкости улучшает показатели процесса сгущения. Еще в большей степени способствует процессу разделения тепловая коагуляция культуральных жидкостей. Центрифугирование дрожжевой суспензии при температуре 60—80 °С повышает содержание биомассы в пасте с 18 до 22-26 % АСВ (заявка 2264870 Франция). Для увеличения среднего размера частиц и повьппения эффективности сепарирования используют методы предварительной коагуляции и флокуляции культуральных жидкостей. [c.32]

Через 6—7 дней, когда культура находилась еще в стадии экспоненциального роста, а плотность достигала 2,2-10 клеток/мл, биомасса водорослей отделялась центрифугированием от жидкой фазы и обрабатывалась согласно разработанной схеме. [c.96]

Отделение биомассы клеток от жидкой среды центрифугированием [c.111]

Для выделения биомассы используют сепараторы, осадительные центрифуги, фильтр-прессы, вакуум-фильтры или отстойники. Иногда биомассу осаждают добавлением электролитов (РеС1з), надосадочную жидкость декантируют. После центрифугирования биомассу получают в виде густой жидкости или пасты 75—90 /о-ной влажности. Клеточную массу промывают, фильтруют, сушат, гидролизуют, экстрагируют из нее нужный продукт и т. д. Если активное вещество находится в растворе, то биомассу используют после отделения как побочный продукт, а нужное вещество выделяют из раствора различными химическими или физическими методами [c.102]

Это — наиболее мягкий и быстрый способ разрушения клеток по сравнению с другими методами (занимает от 20 до 90 мин), однако применим лишь для микроорганизмов, лишенных клеточной стенки. Перед лизнсом клетки промывают несколько раз за- буференным солевым раствором (например, ЮмМ трис-НС, pH 7,5 с 150 мМ Na l). После последнего центрифугирования биомассу суспендируют до плотности 10 —10 кл/мл или 3—4 мг [c.137]

Для извлечения водорослей из воды пруда может быть использовано центрифугирование с предварительной концентрацией водорослей во флотаторе. Полученная биомасса водорослей может быть использована в сельском хозяйстве в качестве удобрения или в животноводстве в качестве кормовой добавки. При необходимости интенсификации глубокой очистки сточных вод в биологических прудах может быть использован альгологичес-кий метод, т. е. внесение культуры водорослей в первую секцию пруда. [c.231]

После удаления биомассы центрифугированием культуральную жидкость подвергали ультрафильтрации на модулях волокнистого типа УВА-ПС с диаметром пор 20 кДА и АМИКОН ЗР-10 3 к Да с отбором фракций менее 20 кДА и менее 3 кДа. Выделенную низкомолекулярную фракцию культуральной жидкости затем подвергали концентрированию путем упаривания под вакуумом при температуре 38 °С. [c.5]

В последнее время в производстве наметилась тенденция получения бактериального концентрата путем центрифугированного отделения клеток от среды. Если предполагается высушивание клеток, их отделение от среды лучше проводить в начале стационарной фазы роста. При использовании отечественной суперцентрифуги С-44 с паспортной производительностью 10 л/ч,, частотой вращения 20 000 обДмин фактическая производительность оказалась на 50% ниже. В производственных условиях для отделения биомассы можно использовать суперцентрифугу ГС-100 производительностью 800 л/ч и частотой вращения 15000 об/мин. [c.124]

Из культуральной жидкости биомассу выделяют центрифугированием. Затем ее сушат лиофилизируя или в сушилках распылительного типа. Остаточная влажность препарата 2—3%. В отличие от азотобактерина и нитрагина этот препарат сравнительно стабилен при высушивании, поэтому успешно используют даже конвективный метод сушки, применяя распылительные сушилки с температурой вфдуха 70—80°С. Храня сухой фосфобактерин при комнатной температуре, не наблюдают большой инактивации клеток. В течение года активность теряют не более 20 /о клеток. В каждом грамме фосфобактерина должно быть не менее 200 млн. жизнеспособных клеток. [c.130]

Существует несколько способов извлечения клеточной биомассы микроорганизмов из готовой культуральной жидкости отстаивание, фильтрование, сепарирование, центрифугирование и т.л. (механические способы), выпаривание и сушка (теплотехнические). При производстве кормового белка используют различные сочетания таких способов для концентрирования клеточной биомассы (например, флотирование, сепарирование, выпаривание и сушка), но всегда при выборе определенной схемы концентрирования и извлечения биомассы проводят ее экономическое обоснование. [c.14]

После разрушения клеток Я. соИ в ультразвуковом дезинтеграторе (100 г биомассы в 500 мл 0,025 М трис—НС1 буферного раствора, pH 8,0) экстракт инкубировали при 37°С в те-, чение 2 ч. В полученный автолизат добавляли сульфат аммония (35—55% предельной Концентрации), осадок отделяли центрифугированием (30 ООО g, 10 мин), растворяли в 0,02 М растворе фосфата калия, pH 7,2 (100 мг/мл) и хроматографировали на колонке (4X50 см) с сефадексом G-75 в исходном буферном растворе. Фракции (объемом 5 мл), содержавшие фермент, объединяли и обрабатывали при перемешивании в течение 10 мин гелем гидроокиси алюминия (12 мг/мл) при pH 6,5. Центрифугировали, гель промывали водой, фермент элюировали 100 мл Ojl М раствора фосфата калия (pH 7,0) и диализовали против 0,02 М натрийфосфатного буферного раствора с pH 7,5. [c.29]

Прямые методы. 1. Сырую биомассу определяют после осаждения клеток центрифугированием. После центрифугирования отмытых клеток можно определить сухую массу. Оба метода не свободны от довольно больших систематических ошибок. 2. Гораздо большую точность обеспечивает определение общего азота (метод микро-Кьельдаля и микродиффузионный метод определения аммиака), а также определение общего содержания углерода (по ван Слай-ку-Фолчу). 3. В повседневной практике часто определяют содержание бактериального белка. Хорошие результаты дают модификации биуретового метода и другж колориметрические методы. Микрометоды основаны на измерении количества характерных компонентов белка тирозина, триптофана (по Лоури или Фолину). [c.192]

Для коагуляции могут быть применены минеральные коагулянты — сульфат алюминия, известь, органические катионные флокулянты и их сочетание. Согласно данным американских исследований, доза указанных выше минеральных коагулянтов в зависимости от исходной концентрации суспензии водорослей находится в пределах от 100 до 300 мг/л, а доза катионных флокулянтов колеблется от 2 до 10 мг/л. В последнем случае немаловажное значение приобретает эффективность действия флокулянта. Продолжительность осветления составляет 15—20 мин, влажность всплывающего концентрата водорослей составляет примерно 98,3—98,8%. Согласно исследованиям, выполненным в НИИ КВОВ АКХ им. К. Д. Памфилова, применение принципов флотации позволяет достаточно эффективно сконцентрировать водоросли. Влажность биомассы, сконцентрированной в условиях напорной флотации, составляет 97,3—98%, а с введением коагулянтов — 95—96%. В качестве коагулянтов испытывались сульфат алюминия и высокомолекулярные флокулянты катионного типа. Для обезвоживания сконцентрированной биомассы возможно применять центрифугирование. [c.74]

Для обезвоживания сконцентрированной биомассы возможно применить центрифугирование. Однако в этом случае, согласно данным НИИ КВОВ АКХ, концентрирование водорослей должно осуществляться с помощью коагулянтов. [c.49]

Сгущенный пенный продукт микробной биомассы с концентрацией 3% АСВ направляют в теплообменник на термообработку при 75- 85 С в течение 5- 10 мин. После термообработки суспензию микробной биомассы сгущают на центрифугах ОГЫ-501К-13. Перед центрифугированием можно добавить 3-6 мг/л по активному илу флокулянта ВПК-402. Нагрузка на центрифугу 10 м3 суспензии. (Сгущенный продукт с концентрацией 6,5% АВС плазмолизуют и направляют на сушку. [c.61]

Таблица 18. Влияние предваритгпьной обработки суспензии микробной биомассы на эффективность ее разделения центрифугированием (при п — 3500 мин 1, т = 6 мин)

В опытах N 16 - 19, 20 - 23, 25 - 28 изучено влияние флокулянтов на центрифугирование активного ила. При постоянном расходе суспензии (10 мЗ/ч) в тех же условиях 0,1%-й раствор флокулянта Zetag-53 при расходе 200, 100, 50 и 300 л/ч обеспечивает степень сгущения концентрата примерно 6,5% АСВ. При минимальном расходе флокулянта (опыт 18 - 0,45 кг/т) унос биомассы в фугат составляет 0,3% АСВ. Однако содержание растворимых веществ в суспензии и фугате (опыты N"16-18) составило около 0,2%. Установлено, что центрифугирование не влияет на образование растворимых веществ в фугате и при определении качества осветления растворимых веществ в фугате и фугата необходимо делать поправку на содержание растворимых веществ. [c.105]

Отечественный флокулянт ВПК-402 оказывал примерно такое же действие. Сгущение концентрата - 6,3 - 6,7% АСВ (опыты N 20 - 23) при визуально чистом фугате. Содержание растворимых веществ несколько меньше (0,05 - 0,13%). В опытах 25 - 28 применение в качестве флокулянта 0,1% раствора ФЖ менее эффективно. Содержание биомассы в концентрате - 5,4 - 6,1% АСВ, фугате - 0,28- 0,45% АСВ. Центрифугирование без флокулянтов (опыты N 24, 29) дало результаты, аналогичные полученным при использовании фтолаилжелатина. Раствор флокулянтов во всех случаях подавали непосредственно в поток суспензии перед входом в центрифугу. [c.105]

Проведенные автором в дальнейшем испытания отечественной центрифуги ОГШ-502К-04, модернизированной коллективом, возглавляемым доктором технических наук Р.Я.Аграноником, показали, что при безреагентном центрифугировании избыточного активного ила Новополоцкого завода БВК концентрация биомассы в сгущенном продукте достигала 6,5 - 7,5% АСВ. Унос биомассы фугатом в отдельных случаях был достаточно большой, что подтвердило необходимость предварительной обработки избыточного активного ила перед его сгущением с использованием центрифуг. [c.106]

Процесс проводится при строго определенной температуре и pH среды, БВК из реакционной массы выделяют центрифугированием с последующей сушкой. На 1 т сырого БВК расходуется, т метанола 2, сульфата натрия 0,1, фосфорной кислоты (54 % Р2О5) 0,1 и аммиака 0,16. Процесс представляется выгодным, так как метанол получается на основе оксида углерода и водорода, которые могут быть получены на базе различного сырья (газа, угля, биомассы и др.). [c.191]

Для построения калибровочной кривой отсепарированную биомассу пропионовокислых бактерий разводят дистиллированной водой с последующим центрифугированием. Отмытую биомассу разводят водой по бактериальному стандарту мутности 10 на 1 млрд. бактериальных клеток. Из основного разведения готовят ряд разведений в 2, 4, 6, 8 и 10 раз и измеряют мутность этих сусперзий клеток на ФЭК-М. По полученным точкам строят кривую, откладывают на оси абсцисс число бактериальных клеток, а на оси ординат показания нефелометра. [c.150]

В настоящее время разрабатываются новые декантационные и флотационные методы выделения биомассы с применением поверхностно-активных веществ. В частности, дрожжи, выращенные на дизельном топливе, отделяют от жидкости декантацией, при этом они скапливаются в масляной фазе в виде суспензии. Суспензию обрабатывают каким-либо детергентом, например сложным эфиром сахарозы, семизолом, после чего дрожжи отделяют центрифугированием. Дрожжевые клетки отмывают для удаления детергента, который вновь вводится в процесс. [c.113]

Для выделения бактериальной биомассы из культуральной жидкости предложено два бессепарационных метода. По первому из них суспензию, выходящую из ферментатора, подкисляют до pH 2,7—4,5. Подкисленную суспензию нагревают в интервале температур 45— 90° С в течение 10—30 мин. В результате такой обработки происходит коагуляция микробной биомассы, и она легко отделяется от водной фазы любым из обычных методов разделения двухфазных систем фильтрованием, декантацией, центрифугированием. [c.113]

После 25-суточной ферментации масло отделяли от биомассы и остатков питательной среды центрифугированием. Для абсолютного удаления. микробных клеток масло, сконцентрированное в верхнем слое, отсасывали и пропускали через бактериальные фильтры Зейтца. Этим приемом стерилизации исключалась возможность посл едующих (остаточных) ферментационных процессов в готовом к анализу масле. [c.71]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология