Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Растительные клетки, введение

    Неэффективный способ доставки ДН К в растительные клетки Может использоваться для введения генов только в протопласты растительных клеток, из которых могут быть регенерированы жизнеспособные растения Имеют ограниченное применение, поскольку единовременно инъекцию можно сделать только в одну клетку манипуляции могут проводить только специалисты [c.380]

    При наличии методов введения в растительные клетки определенных генов, способных к функционированию и стабильному наследованию, открываются реальные возможности создания растений с заранее заданными полезными признаками. Векторы для введения генов в растительные клетки могут быть основаны на репликонах растительных вирусов, однако до настоящего времени попытки получения таких векторов, удовлетворяющих, в частности, требованию стабильного наследования, были не очень успешны. [c.442]


    Трансформация—введение и устойчивая геномная интеграция чужеродной ДНК в растительной клетке, сопровождающаяся геномной модификацией. [c.499]

    Одной из них стало введение свободной ДНК, называемой также векторной ДНК или просто вектором, в протопласты — растительные клетки без стенок (оболочек). Их удаляют, помещая эксплантаты в раствор ферментов из низших грибов. Дело в том, что клеточная стенка — серьезное препятствие для ДНК. В протопластах же единственной защитой остается плазматическая мембрана. Обычно ДНК внедряют в протопласты, используя полиэти-ленгликоль (плотный органический полимер, проникающий сквозь мембрану) или электрический пробой, при котором мембрану протыкает импульс напряжения. Эти процедуры не связаны с биологическими взаимодействиями и пригодны для любых клеток. Но получить полноценное растение из изолированных протопластов нелегко лишенная стенки клетка с трудом ее восстанавливает. К тому же регенерировать целое растение из изолированной клетки гораздо сложнее, чем из клетки или клеток в составе [c.103]

Рис. 1. Эквивалентная цепь сопротивлений в мембранной системе растительной клетки при введении микроэлектрода в вакуоль [296, 405] Рис. 1. <a href="/info/574203">Эквивалентная цепь</a> сопротивлений в мембранной <a href="/info/1894439">системе растительной клетки</a> при введении микроэлектрода в вакуоль [296, 405]
    В отношении растений ситуация, с одной стороны, сложнее, с другой — проще. Сложнее — потому что каждая растительная клетка окружена плотной целлюлозной оболочкой, что создает проблемы с введением в клетку чужеродной ДНК. Проще — потому что в отличие от животных большинство растительных клеток тотипотентны, то есть из них можно восстановить целое растение (у животных этим свойством обладают только оплодотворенные яйцеклетки и клетки зародыша на самых ранних стадиях развития). К тому же для растительных клеток разработаны эффективные методы их культивирования вне организма на специальных питательных средах, а также методы индукции у них процессов морфогенеза (с помощью фитогормонов, изменения условий культивирования), в результате чего достигается регенерация из клеток целых растений (рис. 9). [c.27]

    Среди них присутствие в клетках клубеньков легоглобина — гем-содержащего белка, который встраивается в мембрану бактероида (увеличенная в размере бактериальная клетка, характеризующаяся наибольшей способностью к фиксации азота) и регулирует поступление кислорода. Легоглобин кодируется в геноме растительной клетки-хозяина, но его синтез начинается только после проникновения бактерий в эту клетку. У цианобактерий механизм защиты нитрогеназы от кислорода иной. Азотфиксация идет в гетероцистах, а фотосинтез — в обычных клетках. Поэтому кислород, вьщеляющийся в процессе фотосинтеза, не ингибирует фиксацию азота. Таким образом, введение только //-генов в какую-то растительную клетку не решает проблемы. Если нитрогеназа будет синтезироваться в этой клетке, в частности в клетках злаков, то она разрушится под действием кислорода, присутствующего в клетке. Кроме того, сама клетка, в которую переносят гены азотфиксации, может бьггь не приспособлена к синтезу и расходованию большого количества энергии, которое требуется для фиксации азота. [c.153]


    Бомбардировка микрочастицами, или биолистика, — наиболее многообешаюший метод введения ДНК в растительные клетки. Золотые или вольфрамовые сферические частицы диаметром [c.380]

    Для обеспечения экспрессии чужеродньгх генов, введенных в растительные клетки, использовали растительные промоторы. Различные промоторы, функционирующие только в определенньгх растительных тканях или на определенной стадии развития растения, идентифицировали по экспрессии репортерного гена без промотора после его интеграции в хромосомную ДНК растения. Были разработаны методы встраивания чужеродных генов непосредственно в хлоропластную или митохондриальную ДНК так, чтобы кодируемый белок синтезировался прямо в этих органеллах. И наконец, для того чтобы успокоить общественность, были разработаны методы удаления маркерных генов из трансгенных растений. [c.387]

    Интерес представляют результаты опытов Гайдушки и Линд-лера по введению в сусло спиртового раствора холеетерола До стигнутое в результате этих опытов обогащение дрожжей эргосте ролом указывает на способность дрожжей синтезировать эргостерол из стеролов или их обломков Как известно, стеролы содержатся в каждой животной и растительной клетке [c.186]

    Другой вариант генно-инженерного конструирования системы азотфиксации относится непосредственно к растениям. Введение в геном растительной клетки Т1-плазмид агробакгерий так называемой ТДНК является хорошо отработанной процедурой (гл. 31). В ТДНК можно без труда вводить гены микробных клеток, в том числе и кодирующие белки азотфиксации. [c.398]

    В последние годы достигнуты большие успехи, связанные с генетической трансформацией клеток, в том числе и растительного происхождения. Схема трансформации включает в себя получение протопласта, введение в него необходимой генетической информации, формирование полноценной растительной клетки, клонирование и регенерацию. (Подробно техника генно-и1гженерных экспериментов будет описана в следующем разделе.) В данной схеме трансформированный протопласт — суспензионная культура — каллусная культура — целое растение (рис. 31.4) — наиболее тех- [c.498]

    Введение вектора в растительную клетку возможно при помощи липосом, причем для введения в протопласт растения наиболее эффективны липосомы, состоящие из фосфотидилсерина и холестерина. [c.505]

    Наиболее простым способом отбора трансформированных клеток является введение в плазмиду вместо онкогенов тДНК генов устойчивости к антибиотикам. Однако попытки введения в вектор генов устойчивости к антибиотикам оказались безуспешными, так как они не экспрессировались в растительных клетках. [c.505]

    Вопросы образования Л. в растительных клетках, его роль в жизнедеятельности растительных организмов далеко еще не ясны. Большинство исследователей склонны считать конифериловый спирт источником образования Л. в растениях. Согласно теории Фрейденберга, находящийся в камбиальном соке древесины глюкозид кониферин гидролизуется под B-uHHHHOM энзима — р-глюкозидазы. Образующийся конифериловый спирт при действии дегидрогеназ теряет водород и далее конденсируется, образуя полимер — Л. Конденсация происходит без участия энзим и поэтому приводит к образованию оптически неактивного неоднородно построенного полимера с разветвленной формой молекул. В качестве предшественника кониферилового спирта в растениях можно рассматривать шикимовую к-ту (V), к-рая образуется из углеводов — первичных продуктов нрн-СООН родного фотосинтеза. Введение в ра-стения меченой С шикимовой кислоты HoJ он приводит к образованию в растении ра-диоактивного Л. Процесс одревеснения но н V и появление Л. в растениях связаны с их филогенетич. развитием, т. к. Л. отсутствует в водорослях, мхах и явно обнаруживается в папоротниках. [c.481]

    Инфекционная ДНК — биологически активная ДНК вирусов и фагов. ДНК с инфекционными свойствами были выделены из вируса полиомы и бактериофагов ФХ174 и А.. Животные в растительные клетки реагируют на непосредственное воздействие вирусной нуклеиновой кислота, тогда как клетки бактерий к такому воздействию зачастую не чувствительны. Но они становятся чувствительными при частичном удалении клеточной оболочки, образуя сферопласты. Заражение клетки происходит при условии введения в нее целой молекулы нуклеиновой кислоты. Эго условие нарушается, если клетка одновременно заражается вирусом-помощником, генотип которого отличается от инфицирукяцей ДНК- Заражение клеток чистой инфекционной [c.54]

    Ароматические карбоновые кислоты действуют на растительные клетки значительно сильнее, чем алифатические кислоты, и многие из них являются фунгицидами, гербицидами и регуляторами роста растений. Уже первый представитель этого ряда — бензойная кислота обладает заметным фунгицидным действием, которое возрастает при введении в ее молекулу атомов галогенов, нитро- и оксигрупп. Наиболее сильно повышается фунгицидная и бактерицидная активность при одновременном введении в ароматическое ядро атома галогена и оксигруппы. Все галогеноксибен-зойные кислоты по фунгицидной и бактерицидной активности превосходят не только бензойную кислоту, но и соответствующие га-логенбензойные кислоты. [c.234]


    Ароматические тиоцианаты, содержащие тиоциапатогруппу в бензольном ядре, проявляют инсектицидные свойства, но более слабые, чем соединения алифатического ряда с тем же числом атомов углерода. Инсектицидность соединения сильно зависит от заместителей в фенильном остатке. При введении нитрогрупп или атомов галогенов возрастает активность соединений по отношению к растительным клеткам. Так, 2,4-динитрофенилтиоцианат является активным фунгицидом и используется в сельском хозяйстве для защиты растений от болезней, а тиоцианатогалогенбен-зойные кислоты обладают гербицидным действием. [c.413]

    При введении в ароматический радикал нитрогрупп или атомов галоидов возрастает активность соединений по отношению к растительным клеткам. Так, 2,4-динитророданбензол является активным фунгицидом, который используется в сельском хозяйстве для защиты растений от болезней, а родангалоидбензойные кислоты обладают гербицидным действием. [c.279]

    Введение гетероциклических соединений и (или) продуктов их неполного расщепления по кольцу в нерастворимые в воде компоненты растительной клетки может иметь очень серьезные биологические последствия. В сорго, обработанном С-атразином, количество метки в нерастворимых в воде компонентах со временем увеличивается. После кратковременной обработки (48 ч в растворе атразина, меченного в кольце, в концентрации 23 мкМ) растения переносили в свежий питательный раствор. В результате за 14 дней последующего наблюдения более 50% поглощеиной радиоактивности включалось в состав нерастворимого в воде вещества растений. Непрерывное воздействие С-атразина в высокой концентрации (100 мкМ) в течение 20 дней привело к включению приблизительно 21% поглощенной радиоактивности в нерастворимый остаток. О возможной роли образования конъюгата с глутатионом в процессах включения производных атразина в нерастворимые в воде вещества растения косвенно свидетельствуют следующие данные. На поверхности листьев кукурузы и сорго в конъюгаты с пептидами за 16 ч превращалось более 77% поглощенного через листья С-атразина только 14% присутствовали в виде гидроксилированных производных. Увеличение нерастворимого остатка до содержания 38% за 144 ч сопровождалось почти эквивалентным уменьшением содержания пептидных конъюгатов. Постепенное накопление гидроксилированных метаболитов подтверждает наблюдавшиеся ранее факты очень медленного метаболизма гидроксилированных производных (если не считать монодеалкилированных производных типа 2-окси-4-амино-6-алкилам но- или 2-окси-6-амино-4-алкила1МИ-но-сылг-триазинов). в биологических системах. В настоящее время природа нерастворимых в воде остатков атразина неизвестна. [c.204]

Рис. 25.13. А. Введение нового гена в растительную клетку с помощью Agroba terium. Б. Корончатый галл, образующийся при заражении раны бактерией Agroba terium. Рис. 25.13. А. <a href="/info/1854969">Введение нового гена</a> в <a href="/info/105476">растительную клетку</a> с помощью Agroba terium. Б. <a href="/info/200157">Корончатый галл</a>, образующийся при заражении раны бактерией Agroba terium.
    Коинтегративный вектор. Один из способов, облегчающий введение чужеродной ДНК в геном растения, заключается в использовании коинтегративных векторов. Смысл подхода состоит в следующем (рис. 2.3). Весь процесс введения чужеродного гена в геном растений делится на два этапа клонирование гена, который следует встроить в растительный геном, и собственно трансформация растительной клетки. Эти два этапа осуществляются с помощью различных векторов. [c.54]

    Таким образом, представляется вероятным, что именно плазмодесмы обеспечивают транспорт растворенных веществ между соседними растительными клетками, подобно тому, как щелевые контакты обеспечивают межклеточный транспорт у животных (см. разд. 14.1.5). Данные, полученные при микроипъекции флуоресцентных красителей, соединенных с пептидами различных размеров, свидетельствуют о том, что по плазмодесмам могут перемещаться молекулы с массой, не превышающей 800 дальтон (рис. 20-22), что примерно соответствует ограничениям по размеру для щелевых контактов. Ряд данных свидетельствует о том. что транспорт через плазмодесмы регулируется сложным образом Так. эксперименты по введению красителей показали, что, несмотря на наличие внешне нормальных плазмодесм, между некоторыми системами тканей перенос даже низкомолекулярных веществ затруднен. Например, передвижение краски не обнаруживается между клетками корневого чехлика и клетками кончика корня, или между клетками эпидермиса и коры как в корнях, так и в побегах. Механизмы, ограничивающие в этих случаях сообщение между клетками, остаются пока неизвестными, хотя имеются некоторые указания на то, что в них могут быть [c.400]

    Способность соматических клеток растений и регенерации в культуре дает возможность проводить с такими клетками разнообразные генетические манипуляции и получать трансгенные растения. Для гого чтобы облегчить попадание чужеродной ДНК в растительные клетки, их лишают жесткой оболочки. Этого можно добиться с помощью обработки клеток ферментами, гидролизующими связи в полисахаридах клеточной стенки В результате такой обработки клетки превращаются в иротоиласты (рис. 20-71). Носле введения в них чужеродной ДНК протопласты можно заставить вновь сформировать клеточную стенку, индуцировать деление и даже регенерировать новое растение [c.438]

    ГОГО полового способа для введения в растение признака устойчивости к болезни. Однако сейчас стало возможным пара-сексуальное слияние культивируемых соматических клеток. Обычные растительные клетки не могут сливаться в культуре, так как их стенки препятствуют объединению протопластов. Однако с помощью смеси ферментов, разрушающих клеточные стенки, их можно растворить. Вначале для отделения одной клетки от другой используется пектиназа. Затем для разрушения стенок отдельных клеток применяют целлюлазу. Протопласты (содержимое живых клеток) можно затем собрать в иде осадка путем осторожного центрифугирования, обращаясь с ними как со свободноживущими микроорганизмами, лишенными оболочек (рис. 14.20). Если разрушение стенок производят в гипертоническом растворе, чтобы предотвратить разрыв протопластов, то изолированные ( голые ) протопласты остаются живыми. В соответствующих условиях у них может вновь образоваться стенка, они начинают делиться и затем регенерируют в целое растение. Если протопласты от двух разных видов растений смешать в присутствии индуцирующих слияние агентов, таких, как полиэтиленгликоль, то небольшая часть этих протопластов сольется друг с другом, образовав гетерокарионы (рис. 14.21), т. е. клетки, содержащие множество ядер от разных источников (рис. 14.22). При слиянии ядер могут образоваться настоящие парасексуальные гибриды. [c.436]

    Помимо привычных методов гибридизации современный селекционер может воспользоваться для улучшения растительных культур методами молекулярной генетики. К их числу относятся введение в растительную клетку новой генетической информации с помощью плазмид, отбор новых типов из изолированных протопластов и соматическая гибридизация протопластов. Человек выращивает для своих нужд лишь небольшое число растений, а между тем существует множество еще неизученных растений, которые можно было бы широко использовать. К числу наиболее многообещающих видов относятся гваюла, дающая каучук, хохоба, дающая воск и масло, ЕсЫпосМоа, выращиваемая на зерно, и спаржевый горох, используемый для получения растительного белка. Новые методы разведения растений с применением тканевых культур и регулируемого воспроизведения могут быть полезны также и в лесоводстве. [c.527]

    У высших растений подобные измерения потенциала плазмалеммы ввиду очень малых размеров клеток и соответственно чрезвычайно тонкого слоя цитоплазмы между плазмалеммой и тонопластом (ва-куолярной мембраной), крайне затруднены. Вследствие этого, чтобы избежать попадания кончика введенного в клетку микроэлектрода в вакуоль и исключить тем самым возможность погрешностей при измерении потенциала плазмалеммы, исследователи прибегают к различного рода методическим ухищрениям. Например, подвергают объект центрифугированию и проводят измерения потенциала плазмалеммы в той части клеток, где скопилась цитоплазма [404]. Информацию о величине потенциала плазмалеммы получают также в ходе электрофизиологических исследований на невакуолизированных (по тем или иным причинам) растительных клетках, например молодых корневых волосках [36,112]. [c.11]

    Среди клеточных органелл с высокодифференцированной собственной мембранной системой ведущее место без сомнения занимают митохондрии и хлоропласты, с которыми связано осуществление важнейших энергетических процессов растительной клетки. Однако если микроэлектродное измерение потенциала является достаточно сложной задачей уже при анализе электрических свойств плазмалеммы и тонопласта у высших растений, то при переходе на субклеточный уровень методические трудности становятся почти неразрешимыми. В частности, по свидетельству В.П. Скулачева [247], попытки измерить потенциал митохондрий путем введения микроэлектрода до сих пор остаются безуспешными. В то же время некоторым исследователям удалось осуществить измерение трансмембранного потенциала крупных хлоропластов ряда растительных объектов, прежде всего пеперомии [33,337,598]. Его величина в опытах на интактных клетках (измеренная по отношению к цитоплазме) и на изолированных хлоропластах (измеренная по отношению к среде) варьирует от 10 до —бОмВ. [c.12]

    Этапным периодом для развития метода культуры клеток можно считать 70-е годы, когда были сделаны успехи в разработке способа получения изолированных протопластов растений, а также открытие гибридизации соматических клеток. Изолированные протопласты высших растений и культивируемые клетки животных стали объектом клеточного конструирования путем гибридизации или введения в них чужеродного генетического материала (клеточных органелл, бактерий). Применение методов клеточного конструирования служит задачам улучшения свойств клеток-продуцентов в культуре, а в случае растительных клеток также получению растений с новыми свойствами (в силу тотипо-тентности растительной клетки). [c.7]

    В последние 15 лет в области клеточной инженерии растительной клетки выделилось направление по созданию новых клеток и клеточных систем путем введения микроорганизмов в клетку или в популяции культивируемых клеток растений. Экспериментально создаваемые клеточные системы называют ассоциациями по аналогии с ассоциациями, формирующимися в природе между организмами разных видов. При этом исследования направлены на получение ассоциаций внутриклеточного (эндосим-биотического) или межклеточного (экзосимбиотического) типа. В первом случае проводят индуцированное введение микроорганизмов в изолированные протопласты высших растений. Во втором — совместно культивируют клетки или ткани растений с микроорганизмами. Хотя, как будет видно при дальнейшем изложении, исходно задаваемая в эксперименте локализация микроорганизмов — внутри клеток или в межклетниках тканей — не всегда сохраняется в процессе создания и культивирования таких систем. [c.52]

    При получении ассоциаций на основе изолированных протопластов или культивируемых клеток высших растений с микроорганизмами предполагается, что клетки или популяции клеток растений должны приобретать новые свойства, обусловленные присутствием в них клеток микроорганизмов. Возможность получения из изолированного протопласта клетки, если она сохранится у протопластов и после введения в них микроорганизмов, создает предпосылку для модификации клеток. Совместное культивирование растительных клеток и микроорганизмов позволило бы получать популяции растительных клеток с новыми свойствами, приобретенными в результате их взаимодействия с клетками микроорганизмов. И наконец, способность растительной клетки in vitro дать начало целому растению открывает возможность направленного изменения растений. Очевидно, последнее осуществимо при условии, что микроорганизмы, введенные внутрь [c.52]

    Серьезным ограничением практического использования культур растительных клеток является энергетическое обеспечение процессов биосинтеза. Растительные клетки в культурах гете-ротрофны или обладают ограниченной способностью к фотосинтезу. Представляется маловероятным совместить в культивируемой клетке способность к собственному фотосинтезу и биосинтезу видоспецифических продуктов (Р. Г. Бутенко, 1978). Одним из решений данной проблемы могло бы быть введение в эти культуры микроорганизмов, синтезирующих субстраты для роста растительных клеток или предшественники для биосинтеза. Особое значение при этом, очевидно, имеет введение в гетеротроф-но растущие клетки или культуры клеток растений фототроф- [c.53]

    Однако, несмотря на принципиальную возможность применения такого подхода, привлечение методов генетической инженерии вряд ли позволит в ближайшее время перейти к задаче создания азотфиксирующих растений. Основные сложности состоят в следующем требуется разработка методов введения га/-генов в растительную клетку, их репликации и экспрессии там у высших растений отсутствуют системы, которые осуществляли бы энергообеспечение фермента азотфиксации — нитроге-назы (процесс азотфиксации связан с затратой большого количества клеточной энергии) растительная клетка не обладает соответствующими системами транспорта и запасания в высокой концентрации ионов железа и молибдена, необходимых для синтеза нитрогеназы наконец, она не имеет системы защиты нитро-геназы от инактивации кислородом. Последнее обстоятельство считают главным лимитирующим фактором в экспрессии га -ге-нов при введении их в аэробные организмы. [c.55]

    В связи с проблемой сохранения интактности вводимых в протопласты органелл или микроорганизмов тот и другой способы имеют свои недостатки. Поглощение путем эндоцитоза приводит к изолированию вводимых в протопласт объектов в везикулах из плазмалеммы протопласта. Поскольку эти везикулы могут сливаться с лизосомальным аппаратом растительного протопласта, существует опасность, что это приведет к разрушению вводимого чужеродного материала. При слиянии происходит интеграция мембраны протопласта растения и микроорганизма, нарушение целостности микроорганизма и освобождение его органелл внутрь растительного протопласта. Обнаруженное для зеленых водорослей слияние с протопластами может рассматриваться, таким образом, как способ введения в растительную клетку не целых микроорганизмов, а интактных органелл. В качестве альтернативного пути, позволяющего преодолеть недостатки обоих рассматриваемых способов, предлагается заключать микроорганизмы в искусственные мембраны — липосомы (рис. 20). Этот прием уже был использован в опытах по введению в протопласты лука одноклеточных цианобактерий, заключенных в липидные капли. Преимущества данного методического приема видятся в том, что искусственные мембраны будут сливаться с плазмалеммой протопласта, освобождая таким образом интактные клетки микроорганизмов в цитоплазму протопласта. [c.59]

    Проблема введения в растительную клетку чужеродной ДНК также в принципе решена. Используются два основных подхода. Первый из них агробактериальная трансформация. Это слегка модифицированный естественный процесс горизонтального (то есть между отдаленными в систематическом отношении группами организмов) переноса генов от бактерий в растения. В природе существует большая группа почвенных бактерий из pojidi Agroba terium. Они могут вызывать у растений болезни типа рака — корончатый галл (опухоль) или бородатые корни . Выяснено, что с помощью специального механизма бактерии передают в генетический материал растений небольшой фрагмент своей ДНК, содержащий гены, активность которых приводит к образованию у растений опухоли или многочисленных корней. В них синтезируются вещества — опины, являющиеся питательным субстратом исключительно для агробактерий. Ученые просто вырезали из переносимого фрагмента ДНК бактериальные гены, вызывающие болезнь, и заменили их нужными им генами с соответствующими регуляторными элементами. Агро- [c.27]

    В клетках имеются две категории ферментов. Первая — конст0тутивиые ферменты. Это обязательные компоненты растительной клетки. Вторая категория ферментов — адаптивные, которые или синтезируются заново, или образование их резко усиливается вследствие адаптации растительного организма к условиям окружающей среды. Адаптивные ферменты называют также индуцированными, потому что к ним принадлежат и такие, образование которых у одного организма может быть вызвано или значительно ускорено тем или иным ве-1цестпом. Нитратредуктаза и гидроксиламиирёдуктаза в растениях-— индуцированные ферменты, их синтез значительно усиливается при введении в ткани растений соответственно нитрата или гидроксиламина. К индуцированным ферментам относится также пенициллиназа — очень активный фермент, свойствен устойчивому к пенициллину штамму бактерий, быстро расщепляет пенициллин и, следовательно, делает его неактивным. [c.85]

    В тканях высших растений С. В. Солдатенков с сотрудниками обнаружил ряд кислот первичного окисления сахаров, имеющих в своем составе 4, 5, 6 и 7 углеродов (тетроновая, гептоновая и др.). Введенные в растительные клетки, эти кислоты используются в процессе дыхания. Из глюкуроновой и галактуроновой кислот в клетках может образоваться аскорбиновая кислота (витамин С). [c.151]


Смотреть страницы где упоминается термин Растительные клетки, введение: [c.192]    [c.387]    [c.397]    [c.400]    [c.550]    [c.33]    [c.352]    [c.151]    [c.177]    [c.10]    [c.143]   
Молекулярная биотехнология принципы и применение (2002) -- [ c.0 ]




ПОИСК







© 2025 chem21.info Реклама на сайте