Каротиноиды, разделение

Хроматографическое разделение пигментов зеленых листьев растений состоит из следующих этапов 1) экстрагирование пигментов из растительного материала 2) образование хроматограмм 3) получение растворов хлорофилла-а, хлорофилла-р и каротиноидов. [c.296]

В подготовленную колонку вводят порцию (5 уил) экстракта. Полученную первичную хроматограмму промывают смесью бензина и бензола (9 1). При промывании колонки происходит разделение зон, вверху колонки образуется зеленая зона р-хлорофилла, затем сине-зеленая а-хлорофилла, несколько ниже располагается зона желтого цвета (каротиноиды). [c.296]

В хроматографическую колонку вводят 5 мл экстракта. Образуется первичная хроматограмма, которую промывают смесью бензина и бензола (10 1). При промывании колонки происходит разделение зон вверху колонки образуется зеленая зона чистого хлорофилла р, далее — зона хлорофилла а и ниже располагается зона желтого цвета — каротиноиды. При дальнейшем промывании колонки растворителем в фильтрат переводятся сначала желтые пигменты (каротиноиды), затем хлорофилл а и последним хлорофилл р. Каждую фракцию собирают в отдельный приемник. [c.30]

Каротиноиды, которые делятся на каротины и ксантофиллы, содержат систему сопряженных связей С=С и встречаются как в растениях (например, в помидорах, кукурузе, моркови, перце, плодах цитрусовых, шиповнике), так и в животных (например, в омарах, крабах, форели, лососе, в яичном желтке или в перьях некоторых птиц — канареек, фламинго, попугаев и др.). К наиболее известным каротиноидам относятся красные каротины из моркови. Хроматографическим разделением этих углеводородов занимался в начале нашего столетия основоположник хроматографии русский ботаник М. С. Цвет. Известны три изомера каротинов — а, р и 7. В моркови содержится больше всего р-каротина. Из каротинов легко получаются витамины А, поэтому они являются источником этих витаминов для организма человека и называются провитаминами А. [c.234]

Адсорбционная хроматография. Этот метод основан па том, что различные вещества в различной степени обратимо адсорбируются на твердой поверхности. Вещества распределяются между элюирующим растворителем и адсорбентом с различной скоростью и за счет этого могут быть разделены. Наиболее употребительным адсорбентом является окись алюминия разной степени активности и основности (применяется для разделения неполярных соединений) и силикагель (применяется для разделения полярных соединений, например различных кислот и т. д.). Более ограниченное применение имеют активированный -уголь (для разделения сахаров, аминокислот), сахароза (для очистки хлорофилла) и гидроокись кальция (для разделения каротиноидов). [c.19]

Используется для выделения и очистки хлорофилла и каротиноидов, хроматографического разделения порфириновых пигментов и других веще [c.190]

Применяется для хроматографического разделения каротиноидов, производных аминокислот и других веществ. [c.285]

Возможности разделения методом ХТС смесей политерпенов, в особенности каротинов и каротиноидов, а также убихинонов, описаны в следующей главе. [c.206]

Основная сложность нри псследовании состава пигментов заключается в их быстром разрушении под действием кислорода воздуха и света. Поэтому все операции по выделению липидов пз влажных осадков но разработанной ранее методике [И], выделению и разделению пигментов проводили в атмосфере инертного газа, без нагревания, в затемненном помеш ении, а спектральные характеристики снимали сразу же после выделения каротиноидов. [c.133]

Под ультрафиолетовой (УФ) спектральной областью будем понимать участок спектра 220—500 нм, т. е. собственно ультрафиолетовую область спектра 220—400 нм и область видимого света 400—500 нм. В УФ-обла-сти поглощают структурные, группы с сопряженными С = С-связями. К ним относятся полиеновые структуры типа каротиноидов и в особенности ароматические структуры [6—13]. Все остальные углеводороды прозрачны в УФ-области, что делает исследования в этой области чрезвычайно удобными для определения ароматических структур ввиду отсутствия маскирующего действия других структурных групп. С другой стороны, это является и недостатком метода УФ-спектроскопии, ограничивающим его применение единственным классом углеводородов, если не считать полиеновых, редко встречающихся в горючих ископаемых. В случае присутствия наряду с ароматическими значительных количеств полиеновых структур, с чем мы встречаемся, например, в продуктах термической переработки нефти, метод УФ-спектроскопии часто требует предварительного разделения смеси на ароматическую и непредельную фракции. [c.135]

Для разделения хлорофиллов методом жидко-твердофазной хроматографии пытались использовать практически все известные хроматографические сорбенты и большое число растворителей. Тем не менее не удалось разработать универсальную методику, пригодную для всех хлорофиллов и каротиноидов даже из одного вида растений. Вследствие лабильности хлорофиллов их разделяют на сорбентах средней силы, например на порошковой сахарозе, целлюлозе или крахмале. [c.269]

Поскольку каротиноиды более устойчивы по сравнению с хлорофиллами при контакте с неорганическими сорбентами, в этом случае имеется широкий выбор методов разделения [9,8]. Однако некоторые сорбенты (например, кремневая кислота и [c.275]

В результате различных обработок — светом, нагреванием, катализаторами (йодом, кислотами) — устойчивые природные транс-формы каротиноидов могут быть частично превращены в неустойчивые г мс-формы. Разделение полученных при этом смесей осуществляется хроматографическим путем. [c.886]

Хотя биологические методы определения витаминов и гормонов очень специфичны, но громоздки и требуют продолжительного наблюдения над животными. Мы ограничимся поэтому приведением химических способов определения витамина А и каротина, разделения каротиноидов, определения витамина В , никотиновой кислоты, витамина С и адреналина. [c.84]

РАЗДЕЛЕНИЕ КАРОТИНОИДОВ МЕТОДОМ ХРОМАТОГРАФИЧЕСКОЙ АДСОРБЦИИ ПО ЦВЕТУ [c.93]

Для целей разделения каротиноидов наиболее удобен метод хроматографии, разработанный М. С. Цветом. Принцип хроматографии заключается в применении адсорбции (или другого метода разделения) в динамике например, путем пропускания раствора исследуемого материала через колонку адсорбента. [c.93]

В спектрах зеленых листьев Любименко [64] не мог найти, максимумов поглощения, которые можно было бы сопоставить с полосами поглощения каротиноидов (они легко наблюдаются у 510—480 мц в спектрах желтых листьев или желтых частей пестрых листьев). Он указал, что первый максимум каротиноидов может маскироваться полосой VI хлорофилла (см. табл. 16) и что второй, у 470—450 мц, должен наблюдаться между полосами VI и VII хлорофилла. Любименко пришел к заключению, что желтые пигменты не существуют как таковые в зеленых пластидах. Это заключение, основанное на чисто качественном изучении спектров, неприемлемо. В спектрах экстрактов из листьев (в которых хлорофиллы и каротиноиды, несомненно, существуют как отдельные вещества) также не всегда обнаруживаются индивидуальные максимумы всех этих пигментов. Например, на фиг. 96 кривая поглощения цельного экстракта из листьев обнаруживает только три максимума между 400 и 500 мц (у 410, 428 и 450 мц) вместо шести максимумов, которые можно наблюдать у разделенных зеленых и желтых пигментов. Два главных максимума каротиноидов (у 422 и 467 мц) и один максимум хлорофилла (у 500 мц) пропадают вследствие наложения кривых поглощения. [c.113]

Определение Р-каротина в присутствии других каротиноидов является главной проблемой следующей стадии анализа. Для отделения Р-каротина от сопутствующих пигментов широко применяют адсорбционную хроматографию, реже — распределительную. Оба вида хроматографии могут быть проведены с использованием колонок или пластинок с тонким слоем адсорбента. Тонкослойная хроматография обеспечивает хорошее разделение и применяется для идентификации каротиноидов. Однако ее использование в количественном анализе лимитируется быстрым окислением и изомеризацией каротиноидов в тонком слое адсорбента. [c.202]

Прежде чем перейти к обсуждению хиральной хроматографии, целесообразно обсудить некоторые основные понятия хроматографии вообще. Годом рождения хроматографии считается 1900 г., именно тогда русский химик Михаил Цвет обнаружил, что растительный экстракт, пропущенный через стеклянную колонку, заполненную карбонатом кальция, образует окрашенные зоны. Вплоть до 1930 г. важность этого открытия, сделанного при изучении химии каротиноидов, не была должным образом оценена [1]. Однако после 1930 г. началось быстрое развитие хроматографии, и сегодня это наиболее мощный и универсальный метод разделения в химии. [c.46]

Принцип извлечения каротиноидов из растительных или животных источников основан на экстракции сухого измельченного сырья органическим растворителем с последующей отгонкой избытка растворителя из экстракта остаток подвергают обработке едкой щелочью с целью омыления липоидных веществ и каротиноиды извлекают петролейным эфиром или гек-саном. Экстракт смешивают с метиловым спиртом и после расслаивания получают два слоя углеводородный, содержащий каротиноидные углеводороды, в том числе а-, - и -каротины, и метанольный, в котором заключаются кислородсодержащие каротиноиды. Дальнейшее разделение каротиноидов производят хроматографически по методу Цвета [Щ] на окиси алюминия [368] или других адсорбентах с последующим избирательным вымыванием смесью бензола и метанола или другими растворителями (см. с. 191). [c.200]

Каротиноиды (гл. 2) являются полиенами, которые имеют хромофор, представляющий собой протяженную систему сопряженных двойных связей. Другие группы природных пигментов обязаны своей окраской другим хромофорам. В большинстве случаев в их образовании участвует сопряженная или ароматическая я-электронная система, в которой присутствуют добавочные электрон-донорные или электрон-акцеп-торные группы особенно важны атомы азота и кислорода. Разделение зарядов, характерное для молекул этого типа, может вносить значительный вклад в общую резонансную структуру, что приводит к высокой степени стабилизации, особенно в возбужденном состоянии. Поэтому необходимая для возбуждения энергия невелика, и может происходить поглощение видимого света. Этот случай хорошо иллюстрируют хиноны и аналогичные им системы, которые служат основой многих природных пигментов. Наиболее существенной особенностью других классов соединений является вклад в гетероароматиче-скую систему электронов атомов кислорода и азота, не участвующих в образовании связей. [c.21]

Нейтральная окись алюминия используется для разделения в неводных с дах органических веществ углеводородов, альдегидов, кетонов, спиртов, фс1 лов, слабых органических кислот и оснований, эфиров, красителей, гликозид( витаминов, каротиноидов, стероидов, алкалоидов и др., а также для обезвожи ния органических растворителей. [c.192]

Полярные адсорбенты общего назначения. Используются для хроматографр ческого разделения каротиноидов и других веществ. Ниже приведены марки мг терналов, вырабатываемых специально для хроматографических целей, [c.284]

Многие микроорганизмы продуцируют каротиноиды. Например, культура В1акез1еа Мзрога продуцирует р-каротин в количестве до 20 мг на 1 г сухой биомассы. Растения, синтезирующие каротины в значительных количествах, являются источниками промышленного получения витамина А. Принцип извлечения каротиноидов из растительных тканей основан на экстракции сухого измельченного сырья органическими растворителями с дальнейшим разделением каротиноидов хроматографическими методами. р-Каротин в кристаллическом виде получают из люцерны, моркови и тыквы. [c.97]

Для разделения различных каротиноидов Демоле [9, 10] использовал слои силикагеля с рисовым крахмалом в качестве связующего и проводил разделение смесью м-гексан — эфир (30 + 70). Излер с сотрудниками [28] применял гидроокись кальция + силикагель Г (6 + 1). Используя в качестве растворителя смесь петролейный эфир — бензол (98 + 2), они разделяли каротиноидные углеводороды, применяя бензол — каротиноидные кетоны, а используя смесь бензол — метанол (98 + 2) — гидроксилированные каротиноиды. На активированных слоях силикагеля Г при разделении смесью петролейный эфир (т. кип. 90—110°) — бензол (50 + 50) различные каротиноиды перемещаются с разной скоростью (см. табл. 27). [c.217]

Кроме того, при разделении смеси каротиноидов ТСХ в системе гексан — ацетон (8 3) над ярко-оранжевой зоной, соответствующей эхиненону, наблюдали нежно-розовую размытую полосу [c.143]

Вначале штаммы выращивают раздельно, а затем — совместно при 26°С и усиленной аэрации с последующим переносом в основной ферментатор. Условия культивирования сохраняют прежними. Длетельность ферментации — 6—7 дней. Каротиноиды извлекают ацетоном (можно каким-либо другим полярным растворителем), переводят в неполярный растворитель. В случаях извлечения белково-каротиноидных комплексов, то применяют поверхностно-активные вещества в концентрации 1—2%. В целях очистки и более тонкого разделения гомологов можно прибегать к методам хрюматографии или к смене растворителей. Витамин А, из 3-каротина сравнительно легко можно получить при гидролизе. [c.450]

Разделение хлорофиллов и каротиноидов было предметом классических хроматографических исследований Цвета [1], который испытывал для этой цели многие сорбенты. В злодифици-рованном виде метод Цвета находит широкое применение [c.267]

Разделение феофитинов проводят также на смоле дауэкс 50W-X4 (№), которая переводит хлорофиллы в феофитины [31]. Смолу в термостатированной колонке (1,0x20—24 см) обезвоживают ацетоном и сразу же вводят раствор пигмента в ацетоне. Феофитин Ь и сопутствующие каротиноиды элюируют ацетоном (скорость подачи 2— 3 мл/мин). Затем нагретым почти до кипения 85%-ным ацетоном элюируют феофитин а. [c.275]

Разделение каротиноидов в омыленных экстрактах проводят на колонках с сахарозой, крахмалом или порошкообразной целлюлозой, при элюир.овании петролейным эфиром с примесью 0,5—1% н-пропанола [8] или в градиенте петролейный эфир (т. кип. 40—60°С) — ацетон (0—10%) [35]. При хроматографии на целлюлозе обычно используют системы с ацетоном. В этом случае достигается полное разделение главных каротиноидов, но их зоны не столь резкие, как на других сорбентах. Адсорбционная способность и избирательность порошковой целлюлозы в отношении каротиноидов возрастают при растирании ее с полярными растворителями, например с ацетоном [36]. В работе [37] приведено описание автоматического прибора для фотометрического анализа каротиноидов. [c.276]

Каротиноиды настолько широко распространены в природе, что в дальнейшем изложении невозможно привести все содержащие их природные источники. Как правило, ксантофиллы в растениях этерифицированы высшими жирными кислотами. Поэтому после экстрагирования сухого природного материала в атмосфере инертного газа (Hj, Nj) растворителями (бензолом, петролейный эфиром, эфиром, метанолом, этанолом и т.д.) и удаления растворителя остаток гидролизуется метанольным раствором КОН. Первое разделение полученных при этом сырых каротиноидов осуществляется распределением между двумя песмешивающимися растворителями, например между петролейным эфиром и метанолом. Некоторые каротиноиды остаются растворенными в неполярном растворителе (эпифааоеые каротиноиды, к числу которых относятся все углеводороды), а другие переходят в полярный растворитель гипофааовые каротиноиды ксантофиллы с двумя гидроксилами, эпоксиды). Каротиноиды с одним гидроксилом распределяются приблизительно равномерно между обеими фазами. Тонкая очистка осуществляется, наконец, [c.873]

Так как в плоских тараис-полиенах осуществляется почти полный резонанс, дможно было бы ожидать, что они окажутся более стабильными, чем 1 ис-изомеры, но как уже указывалось, стабильность системы зависит не только от присутствия цис-двойных связей, но также и от их расположения и общей формы молекулы. Первоначально термическая устойчивость по мере повышения числа двойных связей снижается, причем эффект повышения жесткости и компактности при введении г мс-связей возникает только, когда они уже имеются в высокой пропорции. С другой стороны, при наличии цис-связей заметно возрастает чувствительность к освещению, и соединения с центральной цис-связью очень фоточувствительны из-за общей изогнутой формы молекулы. мс-Каротиноиды со стерическими препятствиями исключительно устойчивы к нагреванию, но, как и можно было ожидать, изомеризуются быстрее, чем соединения с тракс-конфигурацией всех связей и чем незатрудненные 1 мс-изомеры при освещении в присутствии иода. Подобно обсуждавшимся выше а, м-диарилнолиенам, различные изомеры каротиноидов также четко различаются по способности адсорбироваться на хроматографических колонках, что облегчает их разделение и установление строения, которое часто проводится с применением спектроскопических методов. [c.223]

Каротины располагаются в колонке ниже других каротИ ноидов, то их легко собрать при промывании колонки рас творителем и определить количественно колориметрически Способы количественного определения каротина с по мощью хроматографии по М. С. Цвету разработаны Государ ственной контрольной витаминной станцией. Эти способы однако, трудно использовать в студенческом практикуме так как они требуют много времени и реактивов. Мы ограничимся поэтому описанием качественного разделения каротиноидов на хроматографической колонке. Приборы. 1. Ступка с пестиком. [c.94]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология