Бумага насыщение

В литературе имеется ряд работ по аналитическому разделению смесей р. 3. э. методом хроматографии на бумаге. В результате чисто эмпирического подбора условий разделения было рекомендовано пропитывать бумагу-носитель раствором нитрата аммония, а в подвижную органическую фазу (часто — смесь ацетона с эфиром или метилэтилкетон) добавлять азотную или роданистоводородную кислоту. Проведенное нами совместно с Г. М. Вар-шал [22—24] детальное изучение влияния ряда параметров статического (экстракционного) и хроматографического опытов позволило установить основные черты механизма процесса хроматографического разделения смесей р. 3. э. на бумаге. Было показано, что пропитка бумаги нитратом аммония должна обеспечить образование на бумаге насыщенного раствора. Вследствие этого соотношение объемов водной и органической фаз, а также величина коэффициента распределения сохраняются постоянными, что отвечает важному условию хроматографического разделения смесей — линейной [c.282]

Оборудование и реактивы. Термостойкая пробирка, держатель для пробирки, горелка, лучинка фильтровальная бумага, насыщенный раствор фосфата аммония. [c.85]

Величины т и т определяют по формулам (208) и (209). Величину а рассчитывают из результатов взвешивания сухой и влажной бумаги и — по результатам взвешивания влажной бумаги и бумаги, насыщенной растворителем. Все измеренные и рассчитанные данные заносят в таблицу и по ним вычисляют значение коэффициента распределения Кр. [c.267]

Для обнаружения многих лекарственных препаратов в качестве универсального реагента зарекомендовал себя пиррол или пиррол в смеси с иодом [29]. В литературе описан и так называемый пиролиз с программированием температуры, в ходе которого идентифицируют летучие вещества и продукты пиролитического разложения [93]. Сравнительно часто обнаружение проводят карбонизацией веществ, нагревая пластинки при высокой температуре (около 150 °С). Редко применяемый способ, пригодный для обнаружения летучих веществ, состоит в сублимировании этих соединений из слоя сорбента. Хроматограмму нагревают и отдельные вещества последовательно сублимируются на стеклянную пластинку, приложенную к хроматографическому слою и охлаждаемую с противоположной стороны [8]. Иногда для обнаружения целесообразно использовать летучие продукты гидролиза. Хроматограмму опрыскивают раствором щелочи и покрывают тонкой полиэтиленовой пленкой. Поверх пленки кладут индикаторную бумагу, насыщенную соответствующим раствором (для обнаружения освобождающихся при гидролизе карбонильных соединений используют раствор 2,4-динитрофенилгидразина и л-толуолсульфо-кислоты в метилцеллозольве, для аминов — бромтимоловый синий, для аммиака — реагент Несслера и т. д.), а поверх бумаги помещают стеклянную пластину. Всю конструкцию нагревают снизу 20 мин при 50°С [18]. [c.72]

Развитие усадочных напряжений исследованных образцов показано на рис. 4 (цикл сушка—увлажнение). Уменьшение максимальных значений усадочных напряжений в бумаге, насыщенной катионами, в ряду исходная >Са — насыщенная > Зг — насыщенная >Ва — насыщенная является прямым доказательством влияния обменных катионов на [c.465]

Для непрерывного контроля за содержанием кислорода в природных водах разработано много электродных систем. Одна из них состоит из серебряного катода и свинцового анода катод представляет собой диск, а анод — кольцо. Эти два электрода концентрически прикреплены к плоскому отшлифованному концу пластмассового литого стержня, в стержень вделаны также соединительные провода к двум электродам. Затем конец пластмассового стержня с прикрепленными к нему электродами покрывают кружочком фильтровальной бумаги, насыщенной 1 F раствором гидроксида калия фильтровальную бумагу, в свою очередь, обертывают полиэтиленовой мембраной (толщиной 1 мил ), которая удерживается пластиковым хомутиком. Когда эту электродную систему помещают в пробы воды или газа, содержащие кислород (и к двум электродам налагают соответствующее напряжение), молекулярный кислород диффундирует через полиэтиленовую мембрану, проходит через влажную фильтровальную бумагу и восстанавливается у серебряного катода до гидроксид-иона [c.475]

Большое место в разработке метода разделения высших жирных кислот на бумаге принадлежит работам Кауфмана [4], Жирные кислоты наносили на бумагу, насыщенную ундеканом (т. кип. 190—220°), разделяли 70—90%-ными водными растворами уксусной кислоты. После удаления с бумаги обеих фаз нагреванием до 120 пятна обнаруживали получением окрашенных медных солей. Метод был видоизменен в позднейших работах других авторов [5—9]. Вследствие гидрофильных свойств применявшейся бумаги воспроизведение метода Кауфмана в нашей лаборатории натолкнулось на ряд затруднений, к числу которых следует отнести невозможность получения равномерно и в одинаковой степени пропитанной бумаги в последовательных опытах, а также набухание и разрывы бумаги при длительном промывании ее в проточной воде. [c.347]

Очищенный таким образом ацетилен не содержит ни мышьяковистого, ни фосфористого водорода (фильтровальная бумага, насыщенная 1%-ным раствором азотнокислого серебра, не чернеет) и пригоден для синтеза. [c.87]

Для измерения pH с помощью индикаторов используют растворы индикаторов или так называемые индикаторные бумажки, т.е. полоски бумаги, насыщенные раствором индикатора. На них помещают каплю исследуемого раствора. [c.63]

При капельном колориметрировании алюминия на бумаге исходят из алюмината натрия (или калия), который обрабатывают на бумаге насыщенным раствором роданида аммония [c.242]

Из разбавленных кислых растворов сероводород осаждает коричневый или желтый дисульфид олова (II), растворимый в желтом ульфиде аммония. Это свойство отличает сульфид олова от сульфидов ртути, свинца, висмута, меди и кадмия. Хлорид ртути (II) восстанавливается хлоридом олова (II) до белого осадка хлорида ртути (I) (Hgз l2) или до металлической ртути и хлорида ртути (П окрашенных в серый цвет. Эта реакция не особенно чувствительна, но если ее проводить в щелочном растворе, весь хлорид восстанавливается до черной металлической ртути. Для реакции рекомендуется применять анилин, щелочная реакция которого настолько слаба, что на нее не оказывает влияния присутствие солей сурьмы. При нанесении капли кислого раствора олова на слегка смоченную фильтровальную бумагу, насыщенную какотелином, образуется кольцо красного цвета. [c.156]

Электрофоретическое разделение красителей на бумаге основано на их подвижности в электрическом поле. Красители наносят на хроматографическую бумагу, насыщенную подходящим буферным раствором. Наиболее часто используется низковольтный метод с горизонтально расположенной бумагой, например в горизонтальных аппаратах Виля и Фишера или Кремера и Тизелиуса [16, 124, 125]. В этих приборах бумагу размещают горизонтально, а ее концы погружают в катодное и анодное пространства, заполненные подходящим электролитом. К электродам подключают постоянный ток низкого напряжения, обычно менее 10 В/см. [c.98]

Распределительная хроматография. Принцип распределительной хроматографии впервые описан Мартином и Синджем в их работе по аминокислотам. В этом случае, вместо равновесия между твердой и жидкой фазами, устанавливающегося при работе по методу Цветта, равновесие устанавливается между двумя жидкими фазами, причем одна из жидкостей поддерживается в состоянии геля или находится на подходящем субстрате. Сначала был применен силикагель, способный адсорбировать до 70% воды и сохраняющий при этом вид сухого порошка. При пропускании раствора исследуемой смеси в несмешивающемся с водой растворителе (например, в хлороформе) через колонку из силикагеля происходит разделение компонент смеси, обусловленное различиями их коэффициентов распределения. Впоследствии в качестве стационарной фазы стали применять листы фильтровальной бумаги, насыщенной водой. Наиболее подходящими органическими растворителями оказались фенол, н-бутиловый спирт, коллидин и некоторые другие растворители, частично смешивающиеся с водой. Индивидуальные аминокислоты были идентифицированы по цветным реакциям и охарактеризованы величинами Rf, представляющими собой отношения скорости движения зоны адсорбции к скорости движения фронта растворителя. Можно также измерять и использовать для идентификации отношение расстояния, на которое переместилось данное вещество, к расстоянию, на которое перемещается эталонное вещество (например [c.1512]

Образец нагревают 2—4 мин в кипящей воде. Добавляют хлористую медь и осторожно кипятят еще 2—4 мин. 1 каплю прозрачного раствора помещают на реактивную бумагу, насыщенную феррицианидом калия. В присутствии тиомочевины в центре появляется окраска от фиолетовой до синей, имеющая иногда коричневатый оттенок. [c.184]

Раствор, содержащий ионы роданида и железа(П), подвергают действию озона, в результате чего появляется красная окраска образующегося роданидного комплекса железа(П1) [18]. Для определения озона можно применять бумагу, насыщенную раствором железа(П) и роданида [19 . [c.205]

Несгораемую бумагу получают, пропитывая проклеенную бумагу насыщенным водным раствором алюмокалиевых квасцов и высушивая ее потом на воздухе. Эту операцию повторяют дважды. [c.223]

Ализариновую бумагу готовят пропитыванием толстой фильтровальной бумаги насыщенным спиртовым раствором ализарина и высушиванием. Хинализариновую бумагу готовят нро питыванием фильтровальной бумаги раствором хинализарина в смеси пиридина и ацетона (0,01 г хинализарина растворяют в 2 мл пиридина, разбавляют до 20 мл ацетоном) с последующим высушиванием. [c.142]

В отсутствие этих элемеитов смачивают кусочек фильтровальной бумаги насыщенным раствором реактива в ацетоне и на высушенную затем бумагу помещают каплю исследуемого растао ра. Уже а присутствии 0,02 т серебра появляется красно-фиолетовый осадок или пятно такого же цвета, который легко отличить от желто-бурого цвета самого реактива. [c.121]

Выполнение, Пропитывают фильтровальную бумагу насыщенным водным раствором какотелина и, не давая полностью высохнуть, наносят на же каплю испытуемого ра створа в зависимости от канцентра-ции олова на желтой бумаге образуется красный кружок или кольцо, окаймлен ное бесцветной зоной. [c.193]

Краевой эффект, проблема частичной ассоциации со смешанным растворителем должны быть устранены путем насыщения камеры парами растворителя. Краевой эффект вызывается различным испарением по ширине пластинки, причем скорость испарения больше у краев пластинки, чем в середине. Это обусловлено большим объемом камеры относительно объема пластинки и иенасыщенностью атмосферы позади пластинки. Поэтому значение Rf растворенного вещества выше вблизи краев пластинки, и линия, на которой расположены пятна растворенного вещества, нанесенного поперек пластинки, будет иметь впадины. Поскольку метод элюирования включает удаление ряда пятен или полоски сорбента по ширине пластинки, желательно, чтобы этот ряд был прямолинейным. Поэтому камера должна быть выложена фильтровальной бумагой, насыщенной смесью растворителей, и на соответствующее время оставлена для [c.55]

Определение с другими реагентами. Бензидин при окислении элементным хлором в сильнокислой среде дает продукт желтого-цвета [52]. Эта реакция уступает по чувствительности о-толидиновой, но превосходит иодкрахмальную. Существенными недостатками бензидина как реагента на хлор являются неустойчивость окисленной формы и малая избирательность. Реагент применяли главным образом для определения хлора в воде. Используя индикаторную бензидиновую бумажку, полученную пропиткой фильтровальной бумаги насыщенным раствором бензидина в уксусной кислоте, можно быстро определить хлор в воздухе [296]. В настоящее время реактив в аналитической практике используется редко. [c.66]

Приготовление реактивной бумаги. Пропитывают фильтровальную бумагу насыщенным раствором л-диметиламинобензилиденроданина в этиловом спирте и высушивают на воздухе. [c.52]

Тонкослойные пластинки с силикагелем, предназначенные для электрофореза, можно приготавливать обычным способом. Для приготовления суспензии используют либо воду, либо подходящий буферный раствор. Высушенный слой можно насытить водой, если при приготовлении суспензии применялся буферный раствор, или, наоборот, буферным раствором, если для нанесения слоя использовалась водная суспензия. Контакт между слоем и электролитическими ячейками осуществляется посредством полосок фильтровальной бумаги, насыщенных тем же буферным раствором, что и слой силикагеля. Пастушка и Тринкс [332] приготавливали тонкослойные пластинки несколько иным методом. Полоски фильтровальной бумаги приклеивали к двум краям обезжиренных стеклянных пластинок, причем клей наносили всего в нескольких точках, чтобы он не препятствовал прониканию электролита в бумагу. Бумага должна была заходить на край пластинки приблизительно на 10 мм. На другом конце бумажной полоски, погружаемом в электролит, делали многочисленные параллельные надрезы, чтобы улучшить капиллярность. После такой подготовки на пластинки наносили слой адсорбента. [c.168]

В присутствии Ва2+ эту реакцию выполняют следующим образом. Пропитывают фильтровальную бумагу насыщенным раствором К3СГО4 и высушивают ее. На эту же бумагу наносят каплю исследуемого раствора, после чего образуется осадок хроматов. Спустя 1—2 мин. прибавляют каплю 0,1%-ного водного раствора родизоната натрия. В присутствии ионов Sr2+ образуется буровато-красное пятно, которое обесцвечивается при действии [c.285]

Фиолетовая окраска фуксина (фуксин, очевидно, соосаждается по мере образования осадка) Внешний индикатор (бумага, насыщенная Н2О2, возникает голубая окраска) Термометрический [c.122]

Небольшое количество фульвокислоты растворялось в воде, а фульваты меди растворялись в 0.1 п. растворе NaOH. На бумагу, насыщенную бу- [c.273]

Полевой метод определения цианидов основывается на получении окрашенного пятна берлинской лазури на бумаге, насыщенной FeS04 и NaOH [25]. [c.412]

Л—лунка заполняется белком 5 — электрофорез приводит к движению белков. Затем ток отключают и в желобок добавляют антисыворотку В — иммунодиффузия приводит к образованию преципитиновых линий. 1 — предметное стекло микроскопа 2 — лунка, заполненная антигеном 5—желобок для смеси антител 4 —полоска фильтровальной бумаги, насыщенная буфером 5 — агаровый гель 5 — антисыворотка. [c.244]

С целью подсчета бактерий на мембранном фильтре в качестве красителя обычно применяют эритрозин. Даубнер и Петер [57] дают подробное описание процедуры окрашивания в этом случае. Для фильтрования подбирают объем воды, такой, чтобы всякий раз в поле иммерсионного микроскопа было видно по меньшей мере 30 окрашенных бактерий. После фильтрации быстро фиксируют бактерии пропусканием через мембрану 5 мл 5 %-ного раствора формалина (эту операцию можно не проводить, если в пробе нет патогенных бактерий). После окончательной промывки дистиллированной водой мембрану сушат на воздухе около получаса в прикрытой сверху чашке, затем пеоеносят ее в чашку, содержащую толстую фильтровальную бумагу, насыщенную 3 %-ным раствором эрит-розина в 5 %-ном феноле. Оставляют мембрану в контакте с красителем на 30 мин, затем несколько раз промывают ее водой (также с помощью фильтровальной бумаги), пока мембрана не будет иметь лишь слабый розовый цвет. При правильном приготовлении мембрана под микроскопом будет казаться бесцветной или слегка розоватой, а бактерии будут красными и хорошо контрастировать с мембраной. После окраски и высушивания мембрану делают прозрачной в иммерсионном масле и исследуют под покровным стеклом с помощью масляно-иммерсионного объектива. Замечено, что для обнаружения в поле зрения микроскопа статистически надежного числа бактерий необходимо отфильтровывать достаточное количество воды. Вообще говоря, для надежного подсчета необходимо около 30 бактерий на поле и подсчет следует вести по достаточно большому числу полей, чтобы стандартная ошибка снизилась до допустимого уровня. Некоторые общие правила статистического подсчета рассматриваются в разд. 8.8. [c.210]

Мембранные фильтры адсорбируют некоторые компоненты питательной среды, так что действительные их концентрации, с которыми имеют дело микроорганизмы на мембране, могут отличаться от концентрации этих компонентов в жидких средах или на поверхности агара. Еще в начале применения мембранной фильтрации было показано [123], что для получения наилучших результатов большинство сред нуждается в некотором изменении. Большой проблемой является адсорбция компонентов среды мембраной, особенно для ингибиторов, которые вводят в состав многих питательных сред для того, чтобы сделать их селективными [63]. Поэтому были разработаны специальные питательные среды, предназначенные для работы с мембранными фильтрами. Эти среды обычно обозначаются фирмой-изготовителем добавлением буквы М перед наименованием продукта. Американская ассоциация здравоохранения [3] дает точные составы М-сред, применяемых при анализе воды эти среды поставляются на рынок целым рядом фирм. Некоторые селективные питательные среды (например, эозин-метилен голубойшироко применяемые при проведении анализов воды, не работают с мембранными фильтрами. Для сравнения в табл, 9.1 приведены составы питательных сред Эндо п М-Эндо. Питательную среду в зависимости от того, как должна быть проведена инкубация, можно приготовить либо в виде бульона, либо с агаром. В лабораториях, где проводится большое число анализов, обычно используют пористые подложки из бумаги, насыщенные жидкой питательной средой, но нередко выделение микроорганизмов оказывается лучше, [c.247]

Единственная общая методика для подсчета определенной группы микроорганизмов заключается в проведении диагностического теста на образовавщиеся колонии. Шиманн [182] рассмотрел идею последовательного переноса, согласно которой мембрану, содержащую колонии, переносят во вторую среду или реагент для проведения диагностического теста, который обнаружит колонии конкретного вида. Например, бактерии семейства Pseudomonada eae можно отличить от ряда других групп грам-отрицательных бактерий с помощью оксидазного теста, на который псевдомонады дают положительную реакцию. Даубнер и Петер [57] показали, что для колоний, выросших на мембранных фильтрах, можно провести оксидазный тест, если поместить мембрану, содержащую полностью проросшие колонии, на фильтровальную бумагу, насыщенную ок-сндазным реагентом. Колонии, дающие при этом положительную реакцию, становятся окрашенными в голубой цвет, что и проявляется в течение 1—2 минут. [c.251]

Как при испытаниях на ФКП, так и при испытаниях на БГКП мембранные фильтры инкубируют после фильтрации, помещая их на поверхность слоя 1—1,5% агара, содержащего соответствующую питательную среду, или на подложку из фильтровальной бумаги, насыщенную культуральной средой (см. разд. 9.3). Последнюю операцию, вообще говоря, предпочтительнее проводить в лабораторных условиях при выполнении многочисленных анализов, так как она исключает процедуру разливания в чашки Петри раствора агара с питательной средой. [c.275]