Пробирки полиэтиленовые

Пробирки полиэтиленовые с для микропроб ТУ 62-1587—75 пробками V = 0,5 мл Я = 50 мм 1.5 р [c.54]

Коллекторы могут быть трех типов одни представляют собой диск, по окружности которого в один или несколько рядов расположены отверстия. В эти отверстия вставляются пробирки для сбора фракций. Объем пробирок зависит от размеров колонки и порций собираемого раствора. При заполнении пробирки заданным объемом или массой раствора автоматическое устройство передвигает коллектор так, чтобы под колонкой оказалась соседняя пробирка. Другой тип коллекторов представляет собой кассету прямоугольной формы с рядами пробирок, расположенных параллельно друг другу. Перемещение такой кассеты после заполнения пробирки происходит также автоматически. В третьем типе коллекторов применяется цепь, состоящая из сочлененных между собой полиэтиленовых пробирок квадратного сечения. Передвижение коллектора в любом случае происходит после заполнения пробирки до заданного объема или массы, что определяется специальными автоматическими устройствами. Принцип действия устройств для этой цели может быть различный. Одни системы имеют сифон, объем которого заранее задан, другие имеют на определенной высоте сосуда контакты, замыкаемые токопроводящим раствором. Возникает электрический сигнал, подающий команду на слив раствора из сборника или передвижение коллектора. В третьих системах передвижение коллектора осуществляется автоматически через определенное число капель раствора или же через определенный промежуток времени. При этом скорость вытекания раствора из колонки должна быть строго постоянной. [c.98]

Приготовление стандартных растворов. Готовят пять стандартных растворов, содержащих 4, 8, 10, 15 и 20 мкг/мл кадмия, из рабочего раствора. Для этого в мерные колбы вместимостью 100 мл переносят соответственно 4, 8, 10, 15 и 20 мл рабочего раствора соли кадмия, доводят объемы до метки 5-10 М раствором серной кислоты и тщательно перемещивают. Для получения экстрактов в пять кварцевых стаканов вместимостью 100 мл помещают по 5 мл стандартных растворов соответствующих концентраций, по 5 мл 0,1 М раствора Lil и по 5 мл метилизобутилкетона. Проводят экстракцию поочередно. Для этого погружают в экстракционную систему полиэтиленовую мешалку, соединенную с. мотором, так чтобы ее конец находился на границе двух фаз. Плавно поворачивая ручку автотрансформатора, увеличивают число оборотов мешалки до скорости, при которой образуется эмульсия, но разбрызгивания пробы не происходит. Время экстракции — 3 мин. Переливают эмульсию в пробирку и дают экстракционной системе расслоиться. Отбирают прозрачный экстракт (2—3 мл) пипеткой и фильтруют через бумажный фильтр ( синяя лента ) в стеклянные стаканы. [c.47]

Пробы для идентификации микроорганизмов рекомендуется отбирать следующими способами [16] взятием пробы металлической петлей или тампоном и переносом ее в пробирку с питательной средой снятием отпечатков на полиэтиленовую липкую ленту (метод реплик) отбором обрастаний с частицами поврежденного материала и покрытий скальпелем. Срок хранения и транспортирования проб при температуре 2...30°С — до 1 мес. [c.61]

Митохондрии сердца и печени крысы получают в соответствии с описанием на с. 405, 406 и хранят на льду. Отбирают часть полученной суспензии (около половины) в отдельную полиэтиленовую пробирку, быстро замораживают препарат жидким азотом или сухим льдом и вновь размораживают, нагревая до 0° С. Процедуру замораживания-оттаивания, при которой происходит разрушение митохондрий, повторяют еще дважды. Размороженный препарат митохондрий суспендируют пипеткой и хранят на льду. [c.437]

В предварительных опытах была выбрана следующая методика экстракции. В кварцевые пробирки наливали стандартный раствор тантала и доводили объем до 3 мл 4%-ным раствором оксалата аммония с той же концентрацией серной кислоты, что и в стандартном растворе. Затем приливали Г мл 5%-ной HF, 1 мл 0,5%-ного бриллиантового зеленого и 5 мл бензола. Пробирки закрывали полиэтиленовой пробкой и встряхивали 30 сек. Для лучшего разделения фаз пробирки центрифугировали. Оптическую плотность бензольного слоя измеряли на спектрофотометре СФ-4А в кюветах с / = 5 мм. [c.180]

Пробирки из дрота (трубки стеклянные) Пробки полиэтиленовые [c.58]

Ход анализа. Навеску 5—50 г анализируемой воды или кислоты упаривают в кварцевой чашке. При анализе воды перед выпариванием подкисляют 1—2 каплями НС1. Сухой остаток после выпаривания жидкости смывают 2 каплями 0,1 N раствора НС и 0,2 мл воды, применяя чистую полиэтиленовую палочку, и переносят в пробирку. Чашку ополаскивают водой, буферным раствором (1 мл) и доводят объем раствора в пробирке до 5 мл водой. [c.505]

Фтористоводородную кислоту в тигель добавляют из пипетки или из полиэтиленового стакана. При отсутствии изделий из полиэтилена стеклянные пипетку или стакан покрывают внутри и снаружи слоем парафина, а затем градуируют. На конец пипетки надевают резиновую грушу. После употребления пипетку промывают водой и хранят в цилиндре, покрытом внутри слоем парафина, или в пробирке из пластмассы. [c.131]

Этап 2. Осадок растворяют в минимальном объеме 3 М соляной кислоты и переносят в полиэтиленовую пробирку. На каждый миллилитр раствора добавляется 2 капли концентрированной плавиковой кислоты. (Если в растворе содержится много железа или урана, то плавиковую кислоту сначала прибавляют до обесцвечивания раствора, а затем дополнительно 2 капли на каждый миллилитр.) Раствор оставляют на 5 мин., затем центрифугируют, сливают водную фазу и промывают осадок [c.74]

Налить в полиэтиленовую пробирку исследуемый раствор и погрузить в него электрод (лучше поднять пробирку с раствором на электрод) так, чтобы раствор покрывал бугорок электрода с асбестовой нитью, [c.110]

Ход определения. Отбирают 5 мл анализируемого раствора, в котором должно содержаться 0,05—1 мкг бора. pH раствора должен быть меньше 3,2 и раствор должен содержать фторид-ионы, концентрация которых должна быть по крайней мере 0,8 М. Дают раствору постоять 18 ч, прибавляют 5 мл раствора хлорида тетрафениларсония в хлороформе и перемешивают механической мешалкой в течение 30 мин, после чего смесь центрифугируют. Отбирают водный раствор полиэтиленовой пипеткой, приливают к остатку 5 мл дистиллированной воды, перемешивают, снова разделяют слои центрифугированием и отбирают пипеткой водный слой. Эту операцию повторяют еще два раза. Полученный промытый слой хлороформа переносят в платиновую чашку, а полиэтиленовую пробирку, в которой проводили экстракцию, обмывают 1 мл хлороформа и присоединяют его к хлороформному раствору в платиновой чашке. Прибавляют 15 капель 0,1 н. раствора едкого натра, 1 каплю раствора фенолфталеина и выпаривают досуха, поместив чашку под нагревателем, состоящим из кварцевой трубки длиной 40 см, в которой находится раскаленная током спираль. [c.721]

Навеску 5—50 г анализируемой воды или кислоты упаривают досуха в платиновой или кварцевой чашке. При анализе Р.0ДЫ ее перед выпариванием подкисляют 0,1 мл соляной кислоты. Остаток смывают водой, применяя чистую полиэтиленовую палочку и переносят в пробирку. Чашку ополаскивают буферным раствором (1,0 мл) и доводят объем раствора г-пробирке до 5 мл. [c.39]

Пластмассовые центрифужные пробирки, полиэтиленовые трубки и другие инструменты, материал которых не выдерживает действия высокой температуры, обрабатывают в течение 15 минут смесью 0,1% ДДС — 0,1% ЭДТА при 40° и о.поласки-вают свежей дистиллированной водой. [c.55]

Озонирование полиэтилена проводят смесью кислорода с 5—10 % озона, получаемого разрядом тока высокого напряжения (10000 В) между электродами 6 и 7 в специальной ячейке — озонаторе 2. (рис. Ц.5). Для озонирования используют полиэтиленовую пленку, ИЗ" которой вырезают три полоски размером 20 X 50 мм и обезжиривают их гексаном. Образцы взвешивают на аналитических весах, отметив их номерами 1, 2 и 3. Третий образец используют как контрольный. Образцы 1 и 2 помешают в пробирку /, закрывают пробкой со вставленной в нее стеклянной трубкой и через поливинилхлоридный шланг присоединяют к озонатору (образцы не должны прилегать друг к другу). Пробирку помешают в сосуд Дьюара с водой, нагретой до температуры около 80 °С. С помощью редуктора 3 и реометра 4 устанавливают скорость подачи кисло-рбда из кислородного баллона, равную 6—8 л/ч. После установления постоянной скорости подачи кислорода включают высокое напряжение озонатора (трансформатор 5) и замечают время начала озонирования. Процесс продолжают в течение 2 ч, после чего отключают высокое напряжение и прекращают подачу кислорода. Пленки взвешивают на аналитических весах и рассчитывают изменение массы образца в результате озонирования. Затем один образец оставляют для определения изменения угла смачивания после озонирования, второй образец используют для проведения привитой сополимеризации. [c.76]

Для обнаружения воды можно воспользоваться рецептурой из предыдущего опыта. Пробирку со смесью этилового спирта, обезвоженного уксуснокислого натрия и серной кислотой закрывают кусочком полиэтиленового мешочка, в котором концом иголки сделано много от- [c.211]

Выполнение опыта. В одну пробирку налить 1 мл сырого, а в другую — очищенного бензола. В обе пробирки добавить по 1 мл концентрированной серной кислоты и по крупинке изатина, закрыть пробками с полиэтиленовыми прокладками и взболтать. [c.220]

В экспериментах по ионному обмену использовали аналогичную методику, 100 мг ионообменной смолы, предварительно приведенной в равновесие с соляной кислотой требуемой концентрации, смешивали с 0,5 мл раствора протактиния в полиэтиленовой пробирке и пробирку встряхивали в течение трех дней. [c.237]

Порошки, расфасованные в капсулы, отпускают больным в картонных коробках или склянках. Если в состав порошка входят летучие компоненты, его отпускают в склянках с плотно завинчивающимися пробками с полиэтиленовой прокладкой или в стеклянных пробирках с осмолкованной пробкой. Особо оформляют порошки, включающие ядовитые вещества. [c.129]

Упаковка тЩлеток в стеклянную тару. Стеклянная тара (банки, флаконы, пробирки) обеспечивает герметичность упаковки. Для фасовки в стеклянные ттробкрки используют автоматы типа 472 (НПО Прогресс ) с одновременной Укупоркой пробирок полиэтиленовой пробкой с амортизатором. Для накяейки этикеток на стеклянные трубки применяют автоматы типа 450, а для упаковки трубок в пеналы — автоматы типа 455. [c.587]

Споровой материал готовят поверхностным культивированием гриба на твердой или жидкой питательной среде в специальных аппаратах с кюветами. В первом случае гриб выращивают в пробирке на косом агаре до обильного образования спор, затем спорами засевают колбы со стерильными пщеничными отрубями, наконец, спороносящую культуру передают в специальный аппарат. По окончании спорообразования в этом аппарате отбирают споры посредством специального вибросепаратора прп тщательной аспирации. Споры фасуют в полиэтиленовые мещочки, стеклянные или дюралюминиевые банки, в которых они могут сохраняться прн температуре от 8 до 24°С около 1,5 лет. [c.153]

При своеобразном способе нанесения исследуемого материала на хроматографическую бумагу с помощью полиэтиленовой пленки дном нагретой на пламени стеклянной пробирки в пленке делают несколько углублений, в которые вносят примерно по 0,05 мл исследуемого материала, например кислотного гидролизата белка. На одной пленке можно разместить 3—5 проб (фиг. 39). Очень осторожно, остерегаясь размазать капли, пленку переносят для высушивания в вакуумный эксикатор. Примерно через 10—15 мин, когда капли подсохнут, пленку извлекают и на край каждого высохшего пятна наносят маленькую каплю воды заостренным концом стеклянной палочки, с помощью которой растворяют весь материал в этой капле. Лист хроматографической бумаги кладут на чистое стекло и отмечают карандашом места нанесения материала.Затем к этому участку бумаги прикладывают полиэтиленовую пленку с исследуемым материалом и с обратной стороны прижимают ее к бумаге пальцем. Если при этом площадь смоченной бумаги будет не больше 1 см , то в результате хроматографии исследуемый материал распределится небольшими пяхнами правильной формы. Этот метод нанесения обладает большими преимуществами в течение нескольких минут можно без потерь нанести 20—30 образцов. При этом отпадает необходимость готовить и мыть капилляры, применять при нанесении высушивание горячим воздухом и т. д. [c.190]

Суспензию митохондрий размораживают в бане с водой комнатной температуры и суспендируют в среде № 1 до концентрации белка 20 мг/мл. Значение pH суспензии (стаканчик с суспензией находится в сосуде со льдом) доводят 1 н. раствором NH4OH до 9,1—9,2. Суспензию обрабатывают на ультразвуковом дезинтеграторе MSE-100 в течение 2 мин (по 1 мин с перерывом в 30 с) при максимальной мощности и постоянном тщательном охлаждении. После этого ее центрифугируют 10 мин при 26 ОООg на центрифуге Весктап (ротор JA-20, 15 000 об/мин) при О—4° С. Супернатант сливают через марлю в центрифужные стаканы и при той же температуре центрифугируют 20 мин при 200ОООg на УЦП-75 (ротор 75, 47 000 об/мин). Осадок СМЧ суспендируют в среде для переосаждения и переосаждают в гех же условиях. Полученные СМЧ гомогенизируют в минимальном объеме 0,25 М сахарозы с помощью стеклянного гомогенизатора с тефлоновым пестиком, разливают на небольшие порции и замораживают в жидком азоте в полиэтиленовых пробирках. [c.410]

Едкое кали, ГОСТ 4203—48, 0,1 М раствор. Готовят следующим образом 1,2 г КОН растворяют в полиэтиленовом или кварцевом сосуде в 200 мл воды. Отбирают в кварцевую пробирку 10 мл полученного раствора, добавляют совочком 6 мг смеси хлористого калия с флуорексоном и титруют в ультрафиолетовом свете раствором соли ЭДТА до минимума флуоресценции (примерно Vio часть начальной интенсивности флуоресценции). [c.502]

Уу (рис. 41) фторид кальция (тв, 5,00 г) -t- сульфат кальция (тв, 1,00 г), смешать растиранием в ступке, внести в медную, свинцовую или фторопластовую пробирку-реактор -i- серная кислота (конц, 96 %-ная, 5 мл) -i-1 (водяная баня, 90—100 °С) — газ + вода - раствор (получать и хранить в полиэтиленовом сосуде, использовать вПьПгиПз). [c.132]

В качестве обратного холодильника используется трубка из жесткого полиэтилена диаметром 10—12 мм и длиной 200 мм с надетым на пее при помощи кусочков каучукового шланга стеклянным кожухом трубка приварена к крышке реактора. Капельной воронкой служит-полиэтиленовая пробирка е 1Костью 50 мл, к ее дну приварена полиэтиленовая трубочка диаметром 3—4 мм, другой конец которой приварен к крышке реактора. Скорость прибавления HF регулируется зажимом, [c.248]

I. Образец, содержащий 10,0 вес % раствора кремнефтористоводородной кислоты HjSiFee в воде, был налит в полиэтиленовую пробирку с внутренним диаметром 10,0. и.и и наружным 12,0 мм и помещен в ядерный резонансный спектрометр с низкой разрешающей способностью. Напряженность магнитного поля поддерживалась постоянной и равной 10 ООО гс, в то время как частота изменялась от О до 50 Мгц. Начертите на основе данных табл. 16,1 ожидаемый спектр соединения и объясните его. Примите вс [c.249]

В качестве первичной тары применяются ампулы стеклянные (А-1, Ао-1)и полиэтиленовые (А-2П) банки стеклянные (Б-1 и Бо-1) и полиэтиленовые (Б-б) склянки стеклянные (С-1, Со-1) и полиэтиленовые (С-6Ф) бутылки стеклянные (С-7, Со-7) и полиэтиленовые (БП-1) флаконы стеклянные (Ф-1) и полиэтиленовьв (Ф-2) пробирки стеклянные и пластмассовые, а также пакеты из полиэтиленов( й пленки, обернутые и не обернутые в светонепроницаемую бумагу. Полиэтиленовье пакеты применяют только для недорогостоящих продуктов, устойчивых на воздухе, с одноразовым использованием. Количество реактива в полиэтиленовом пакете не должно превышать 1 кг, а в полиэтиленовом мешке — 35 кг. Для реактива каждой квалификации имеется этикетка определенного цвета или полоса на этикетке [c.367]

В предыдущей главе изложены основные теоретические положения, которые в значительной степени помогут облегчить выбор электродного материала и условий электролиза для проведенш желаемого процесса, однакр в большинстве случаев перед постановкой препаративных электролизов целесообразно оценить восстановительную или окислительную способность изучаемого соединения. Для проведения таких предварительных экспериментов можно рекомендовать ячейку, изображенную на, рис. 2.1. Электролизер представляет собой Н-образный сосуд, состоящий из двух пробирок, имеющих отводы для газов и соединенных между србой трубкой, внутри которой находится диафрагма. Диафрагмой может служить пористое стекло или полиэтилен. Стеклянные фильтры обычно впаивают, полиэтиленовые диафрагмы крепят и уплотняют с помощью кольца из микропористой резины. Одна из пробирок образует катодное пространство, другая — анодное. Пробирки закрывают резиновыми пробками, в которых укреплены электроды. Электролизер термостатируют рубашкой из органического стекла. Система Для зайера количества газов включает измерительную бюретку 3, про-мен уточный сосуд и уравнительную склянку 7 соответственно для каждого отделения. [c.52]

Гуинн и Вагнер [112] использовали короткоживущие изотопы для определения многих элементов, в основном в органических соединениях. Образцы облучали с помощью электростатического ускорителя электронов с потоком тепловых нейтронов 10 нейтрон см - сек). Для измерений применяли гамма-спектрометр с кристаллом N31(11) размером 76x76 мм и колодцем диаметром 32 мм и глубиной 57 мм. В этот колодец вставляли полиэтиленовую пробирку объемом 30 мл, содержащую облученный образец. Спектры снимали с помощью 100-канального анализатора. [c.254]

В Англии выпускается бытовой водоотталкивающий препарат, содержащий 5—7,5% полиметилгидридсилоксанов (силикон М-492) [2, с. 181]. В СССР выпускаются бытовые гидрофобизирующие составы Гидрофоб-1 и Гидрофоб-2 . Первый представляет собой эмульсию жидкости ГКЖ-94 с катализатором, способствующим быстрому отверждению защитной пленки на поверхности обрабатываемого материала. Его упаковывают в полиэтиленовый флакон, внутри которого находится пробирка е катализатором. Гидрофоб-1 рекомендуется для обработки плащевых тканей. [c.269]

Рис. 1. Прибор для определения мышьяка I — полиэтиленовая пробирка TI — пробка III — реактивная бумага IV — соединительная трубка V — колпак VI — ватный тампон VII — сетка VIII — стружка из полиэтилена

Центрифуга. Штатив для хранения центрифужных пробирок. Горелка Фишера. Стеклянные палочки для перемешивания. Мешалки из платиновой проволоки. Пипетки и шприцы. Вакуумный сифон для декантации водной фазы (необязательно). Конические центрифул ные пробирки емкостью 40 мл. Конические центрифужные пробирки емкостью 3 мл. Полиэтиленовые пробирки емкостью 15 7иуг. Ионообменные колонки (изготовляются путем припаивания стеклянной трубки к центрифужной пробирке, нижний конец которой оттягивается). Стеклянные колонки длиной 6 см с внутренним диаметром 2 м.н. Стеклянные колонки длиной 14 см с внутренним диаметром 2 мм. Стеклянные колонки длиной 12 с.и с внутренним диаметром 8. им. [c.73]

Аппаратура. Аспирационное устройство. Фильтродержатель. Мерные колбы (вместимостью 50—100 мл), химические стаканы, воронки, цилиндры, колориметрические пробирки (120Х Х15 мм). Платиновые чашки, тигли, полиэтиленовые сосуды, стаканы. Агатовая ступка. Муфельная печь, баня водяная, паяльная горелка. Фотоэлектроколорйметр. [c.325]

Оборудование и посуда. Счетная установка с торцовым р-счетчиком и един-тилляционным детектором у излучения (кристалл счетчика имеет колодец для помещения пробирок с радиоактивными растворами). Центрифуга на 5000— 10 000 об1мин с набором стеклянных, полиэтиленовых и тефлоновых пробирок (пробирки должны помещаться в колодец сцинтиллятора). Прибор для электрофореза (рис. 5.1). Прибор для электродиализа (рис. 5,2). рН-Метр и универсальная индикаторная бумага. Прибор для встряхивания. Лампа для выпаривания. Склянки на 30—50 мл (7 шт.). Эксикатор. Пробирки из стекла, полиэтилена и тефлона (по 10 шт.). Пипетки на 0,2 1,0 и 5 мл со шприцами. Стеклянные пробирки с пришлифованными пробками на 5—10 мл (7 шт.). Воронка Бюхнера. Чашечки для измерения активности. [c.180]

Определение следов различных компонентов в биологических образцах часто вызывает затруднения. Для выделения сульфидов из таких материалов можно использовать микродиффузию, применив стандартные ячейки [15]. Чтобы предотвратить травление внутренних поверхностей ячейки 40%-ным раствором NaOH, используемым для поглощения НгЗ, в ячейку помещают маленькие полиэтиленовые чашки с поглотительным раствором (рис. 66). Для полного отделения H2S необходимо 3 ч, затем полиэтиленовые чашки переносят в пробирки и определяют содержание сульфидов. [c.562]

Ход анализа. Фильтр с отобранной пробой помещают в пробирку и заливают 5 мл смеси диметилформамида и толуола. Пробу слегка подогревают и интенсивно встряхивают 3 мин. Для дальнейшего анализа собирают установку, состоящую из трех пробирок, последовательно соединенных стеклянными трубками, концы трубок не доходят до дна пробирок на 1 — 1,5 см (рис. 2.8). В пробирку / помещают 0,100 г нитрозоме-тилмочевины, 2 мл диэтилового эфира и 1 мл гидроксида натрия (готовят в день анализа проб—6,00 г гидроксида натрия растворяют в 10 мл дистиллированной воды). В пробирку 2 вводят 3 мл раствора пробы и в пробирку 3 — 1 мл этанола. Через систему пропускают азот со скоростью 2—3 пузырька в 1 мин до слабого пожелтения раствора в третьей пробирке. Содержимое второй пробирки переносят во флакон, который закрывают полиэтиленовой пробкой или крышкой. Затем к раствору добавляют 1 каплю 1,5%-ного раствора уксусной кислоты в этаноле, тщательно перемешивают и через пробку мик- [c.110]

Ход анализа. Переносят 1 мл пробы из поглотительного прибора в пробирку вместимостью 2 мл, В пенициллиновый флакон вносят 2 мл 40%-ного раствора гидроксида калия. Затем во флакон пинцетом вносят пробирку с пробой так, чтобы жидкости не соприкасались. Флакон закрывают резиновой пробкой и герметизируют с помощью алюминиевого колпачка и пресса ПОК. Между фланцами флакона и резиновой пробкой прокладывают кружок диаметром 20 мм из полиэтиленовой пленки для устранения сорбции углеводородов резиновой пробкой. После этого флакон переворачивают так, чтобы кислота и щелочь полностью смещались, и оставляют на 15 мин. Газовую фазу из флакона отбирают медицинским щприцем, прокалывая иглой резиновую пробку, и 2 мл вводят в испаритель прибора для хроматографического разделения в условиях температура испарителя 180 °С, колонок — 90 °С расход газа-носителя (азота) — 20. мл/мин, водорода — 30 мл/мин, воздуха — 300 мл/мин. [c.165]

Методика экспериментов. Все эксперименты, за исключением особо отмеченных, проводили следующим образом. 5 мл растворителя или смеси растворителей, которая готовилась в объемном отношении, приводили в равновесие с большим объемом соляной кислоты той концентрации, котора я предназначалась для данного опыта. 1 мл растворителя, предварительно приведенного в равновесие с кислотой, встряхивали с лы раствора НС1 той же концентрации, содержащего известную активность Ра2зз Последний раствор готовили путем добавления достаточно малой аликвотной части исходного раствора Ра к известному объему НС1 желаемой концентрации, с тем чтобы не происходило заметного изменения концентрации кислоты в растворе. Смесь приводили в равновесие встряхиванием в полиэтиленовой пробирке. Равновесие всегда наступало в течение 1—2 мин. Температура менялась от 17 до 2Г. Во всех опытах исходная концентрация Ра зз g водной фазе составляла примерно 5 10 ° моль 1л. [c.218]

Во всех экспериментах по экстракции в равновесие приводили 1 мл растворителя и водного раствора. Водную фазу готовили путем введения соответствующей аликвотной части протактиния из исходного раствора в значительно больщий объем раствора, содержащего кислоту и в некоторых случаях соли в желаемых концентрациях. Использованные объемы были такими, что прибавление раствора протактиния не влияло заметно на концентрацию хлорида и свободной кислоты в водной фазе. Это эпизодически проверялось объемным анализом конечного раствора. За исключением экспериментов с трибутил-амином, все растворители перед использованием приводили в равновесие с соответствующей неактивной кислотной водной фазой. Равновесие достигалось за 10 мин. путем встряхивания смесей в закрытых полиэтиленовых пробирках на механической трясучке. Комнатная температура менялась в интервале 20— [c.236]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология