Поглощение контрольных растворов измерение

Для определения по этому методу прежде всего строят калибровочную кривую 0,25 г 2-метил-4,6-динитрофенола растворяют в 10%-ном растворе едкого натра и разбавляют в мерной колбе до объема 250 мл. К 25 мл полученного раствора прибавляют 10%-ный раствор едкого натра до объема 100 мл. В пять пробирок вносят последовательно 0,5 1,0 2,0 4,0 6,0 мл этого раствора. Далее в каждую пробирку градуированной пипеткой добавляют такое количество 10%-ного раствора едкого натра, чтобы общий объем жидкости в каждой пробирке составлял 10 мл. К полученным растворам прибавляют по 5,0 мл этилового спирта и 1,0 мл 1%-ного водного раствора глюкозы. После этого содержимое пробирок хорошо перемешивают и выдерживают на водяной бане при 60 °Св течение 20 мин. Одновременно приготовляют контрольный раствор, для чего к 10 мл 10%-ного раствора едкого натра в шестой пробирке прибавляют 5 мл спирта и 1 мл раствора глюкозы и обрабатывают так же, как и пробы с препаратом. После охлаждения водой до комнатной температуры содержимое каждой пробирки переносят в соответствующий градуированный цилиндр и разбавляют в нем дистиллированной водой до объема 100 мл. Растворы тщательно перемешивают и измеряют поглощение света растворами (экстинкцию) при помощи колориметра в кювете с толщиной слоя 1 см. Измерения производят относительно контрольного раствора, не содержащего 2-ме-тил-4,6-динитрофенола. По полученным данным строят кривую зависимости интенсивности поглощения света растворами от содержания в них 2-метил-4,6-динитрофенола. В исходных растворах соответственно содержится 0,125, 0,25, 0,5, 1,00 и 1,50 мг 2-метил-4,6-динитрофенола. [c.101]

Свободные амины. Отношение поглощения Ат испытуемого раствора Та к поглощению Ав контрольного раствора Вь измеренное при количественном определении, не должно быть более 6. Количественное определение. Готовят испытуемый раствор Т путем растворения около 0,050 г (точная навеска) препарата в 50 мл раствора гидроокиси натрия ( — 80 г/л) ИР, перемешивая и доводя раствором гидроокиси натрия ( — 80 г/л) ИР до объема 100 мл. [c.26]

Гитоксин. Растворяют около 5 мг препарата (точная навеска) в 1 мл метанола Р и разводят до 25 мл смесью равных объемом соляной кислоты ( 250 г/л) ИР и глицерина Р. Оставляют стоять на I ч. Поглощение этого раствора) в кювете с толщиной слоя 1 см при 352 нм при намерении против контрольной кюветы, содержащей смесь равных объемов соляной кислоты ( 250 г/л) ИР и глицерина Р, не более 0,28 (для измерения предпочтительно использовать кюветы с толщиной слоя 2 см и сделать пересчет на поглощение в кювете с толщиной слоя 1 см) содержание гитоксина около 50 мг/г. [c.114]

Разность спектра, снятого при 280—400 тц с интервалами 2—3 тц, определялась измерением поглощения щелочного раствора по отношению к нейтральному раствору, который применялся как холостой, и помещался в контрольную ячейку спектрофотометра. [c.289]

Контрольный раствор смеси солей редкоземельных элементов помещают в кювету (прямоугольную или цилиндрическую). Снимают спектр поглощения этого раствора по отношению к дистиллированной воде в интервале длин волн от 220 до 1100 ммк первоначально измерения производят через 5—10 ммк и в области намечающихся максимумов повторяют исследование спектра через 0,5—1 ммк. Пользуясь кривыми поглощения растворов солей редкоземельных элементов (стр. 229). определяют, какие из них присутствуют в смеси. [c.217]

К силикагелю приливают 3 мл хлороформа и экстрагируют пероксид дикумила, интенсивно встряхивая колбу в течение 2 мин. Затем доливают хлороформ до метки, раствор тщательно перемешивают и сразу фильтруют через воронку с бумажным фильтром- в кювету с толщиной слоя 10 мм. Измерение поглощения полученного раствора пероксида дикумила проводят при 258 нм относительно контрольной пробы, которая отфильтрована через фильтр той же марки и того же размера. [c.288]

Ток может быть непосредственно измерен гальванометром или компенсирован контролируемым ослаблением (например, с помощью щелевой диафрагмы) светового потока, проходящего через контрольный раствор. Легко измеряемая степень ослабления потока характеризует поглощение света анализируемой пробой раствора. [c.80]

Точность фотометрических измерений существенно зависит от степени поглощения света раствором. Анализ показывает, что ошибка измерений достигает минимальной величины при пропускании ///о = 36,8% и существенно возрастает при отклонении от этого значения. В связи с этим интервал концентраций, пригодных для фотометрирования, ограничен со стороны как низких, так и высоких значений. При малых концентрациях невелико различнее интенсивности рабочего и контрольного светового потоков и значительна ошибка измерений. В концентрированных растворах мала [c.82]

Включают аппаратуру, устанавливают на выходной щели монохроматора линию 328 ммк и расширяют шкалу измерений в два раза. Прибор подготовлен к проведению анализа, если при распылении контрольного раствора поглощение линии серебра составляет 12—15%. [c.115]

Включают и настраивают аппаратуру. Распыляют в пламя контрольный раствор хрома. Если поглощение линии Сг 357,9 нм составляет 12—15%, шкалу измерений расширяют в 5 раз. [c.90]

Для построения калибровочной кривой берут навески германия от О до 50 у и обрабатывают их так же, как указано в последнем абзаце. Измеряют поглощение по сравнению с контрольным раствором, содержащим соляную кислоту и фенилфлуорон в тех же концентрациях, что и анализируемый раствор. Если измерения производят на спектрофотометре, калибровочная кривая должна представлять собой прямую вплоть до концентрации Ое 1 ч. на млн. [c.439]

К нейтральному или слабокислому раствору пробы, содержащему <300 мкг урана (VI). добавляют 5 мл маскирующего раствора, 5 мл буферного раствора, 2 мл раствора ПАР и разбавляют водой до 50 мл. Поглощение раствора измеряют при 530 нм относительно контрольного раствора реагентов. В присутствии более 200 мкг Ре измерение проводят через 10— 15 мин. [c.408]

Британская фармакопея -определяет, что при измерении поглощения раствора при определенной длине волны поглощение контрольной кюветы и растворителя не должно превышать 0,4 и в общем должно быть меньше чем 0,2, когда измеряется по отношению к воздуху п ри той же длине волны . Растворители должны быть свободны от флюоресценции, что может привести к возникновению эффекта рассеяния света и последующей ошибке при измерении. [c.196]

Газ из бюретки непрерывно переводят в первый поглотительный сосуд, где происходит поглощение иОг. и обратно — до получения постоянного объема, т. е. до тех пор. пока измеренный объем газа не совпадает с последующим объемом, измеренным после двухтрех контрольных прокачиваний газа. За КОг принимают количество газа, поглощенное раствором щелочи. [c.217]

Ангидропроизводные. Растворяют около 0,2 г препарата (точная навеска) в достаточном количестве соляной кислоты (0,02 моль/л) ТР до получения 50 мл. Помещают 10,0 мл этого раствора в делительную воронку, прибавляют 10 мл хлороформа Р, 10 мл цитратного буферного раствора, pH 5,4, ИР и встряхивают в течение 2 мин. Отделяют хлороформный слой и измеряют поглощение при 437 нм против контрольной кюветы, содержащей хлороформ Р поглощение должно составлять не более 0,18 (для измерения предпочтительно использовать кювету с толщиной слоя 2 см и сделать пересчет на поглощение в кювете с толщиной слоя 1 см). [c.296]

Гидрозоли чистого теллура имеют две полосы поглощения одну в видимой, а другую в ультрафиолетовой области спектра (рис. 1). Полоса в видимой области заметно сдвигается от красного к ультрафиолетовому участку спектра с уменьшением размера частиц и соответственно изменению окраски золя от темно-синей при размере частиц около 600 ммк, через пурпурные и красноватые оттенки до янтарной при размере частиц около 300 ммк. При уменьшении размеров частиц наблюдается небольшое, но существенное увеличение коэффициента погашения. Максимум полосы светопоглощения в ультрафиолетовой области почти не зависит от размера частиц однако коэффициент погашения значительно колеблется величина его для красных золей примерно на Уд выше, чем для синих золей. В связи с изменением оптических свойств золей в зависимости от размеров частиц рекомендуется чаще проводить контрольные опыты (до тех пор, пока метод не будет хорошо освоен в лаборатории), контролируя условия образования частиц. Длину волны для измерения оптической плотности в видимой области необходимо выбирать с учетом специфических условий получения данного золя. По этой причине более удобно проводить измерения в ультрафиолетовой области. Однако видимая область дает возможность широкого выбора длин волн, когда в растворах могут присутствовать другие поглощающие вещества. Воспроизводимость измерений оптической плотности золей повышается при уменьшении размеров частиц величина ошибки колеблется от 0,3 мкг/мл для синих золей до 0,1 мкг/мл для красных золей. [c.373]

Холодильник поднимают, конец и трубку холодильника промывают небольшими порциями воды. Затем объем раствора доводят до 45 мл и переносят в колбу на 100 мл. Далее раствор фильтруют через складчатый фильтр из обычной фильтровальной бумаги в колбы 10—12 мл (для этой цели можно использовать пузырьки из-под антибиотиков). Воронки должны иметь диаметр 2—2,5 см. Раствор в воронку вносят небольшими порциями — по 2—3 мл. Когда объем фильтрата достигает 8—9 мл, то его отбрасывают и продолжают фильтрацию через этот же фильтр. Полученный раствор помещают в кювету спектрофотометра и измеряют спектр поглощения при длине волны 455 нм. Измерение проводят, беря в качестве контроля раствор, полученный тем же путем, но при отгонке контрольного, необработанного образца. При этом навески опытного и контрольного образцов должны быть одинаковыми. [c.111]

ПО 50 мл раствора хлористого кадмия. Пипетку 2 или сухой газометр с образцом исследуемого газа помещают между поглотительными склянками 2 и 3. На анализ берется вся проба газа (объем пипетки или газометра должен быть точно измерен). Количество газа, взятое на анализ, рассчитывают по объему пипетки(газо-метра), давлению в пипетке и температуре рабочего помещения. Давление в пипетке (газометре) измеряют манометром 5. Пропускание газа через систему осуществляют путем отсасывания с помощью водоструйного насоса или эвакуированной буферной емкости, присоединенных к склянке 4. Перед началом работы систему проверяют на герметичность. Газ пропускают отдельными пузырьками со скоростью, позволяющей считать пузырьки. Появление осадка в склянке 4 (контрольной) указывает на неполное поглощение сероводорода в склянке 3. В этом случае скорость пропускания газа следует уменьшить. При пропускании газа кран 6 должен быть закрыт, кран 7 — открыт. По прекращении пробулькивания пузырьков газа приоткрывают кран 6 и поступающим в систему воздухом вытесняют оставшийся в пипетке газ. Через 10 минут кран 6 закрывают и отсоединяют склянки 3 ж 4. [c.104]

Две камеры соединены между собой капилляром. В одну из них помещают объект, дыхание которого предполагают исследовать, а в другую, контрольную, камеру — все вещества, содержащиеся в первой камере, за исключением самого объекта (ткани или клетки). Перемещение капельки керосина в капилляре обусловлено потреблением кислорода биологическим веществом и поглощением углекислого газа капелькой раствора едкого натра. Чувствительность прибора можно варьировать в широких пределах, главным образом в зависимости от размера капилляра. Перемещение капли керосина не зависит от изменений атмосферного давления и относительно мало зависит от изменений температуры, так как температура оказывает одинаковое влияние на обе камеры. Для смешения реактивов внутри камер без их вскрытия, а также для контроля газов, находящихся в начале измерения, предусмотрены специальные приспособления. [c.261]

Представляют интерес также те вещества, которые непосредственно подавляют метаболизм. К ним относится, например, 2-дезокси-0-глюкоза. Это вещество дезорганизует энергетический обмен клетки тремя основными путями конкурируя с глюкозой при поглощении клетками, конкурируя с глюкозой в процессе ее фосфорилирования гексокиназой, а также путем подавления 2-дезокси-0-глюкозо-6-фосфатом изомеризации глю-козо-6-фосфата в фруктозо-6-фосфат. Поскольку 2-дезокси-0-глюкозо-6-фосфат далее не подвергается метаболическим изменениям, эти эффекты стимулируют распад АТФ и подавляют активный транспорт. В исследованиях кожи лягушки, находящейся в контакте с 1 мМ раствором глюкозы, при концентрации 16 мМ 2-дезокси-0-глюкозы активный транспорт подавлялся, по данным измерений тока короткого замыкания, в среднем на 58 % от контрольного уровня. Это было связано со значительным понижением сродства, в данном случае на 53 % от контрольного значения (рис. 8.12). Такое понижение А легко объяснить исходя из известных типов влияния 2-дезокси-0-глю-козы на метаболизм. [c.167]

У1 уравнительной склянки 10. Все узлы и детали соединены резиновыми трубками и смонтированы на штативе. Для измерения СОг служат бюретки трех типов (для измерений от О до 4,5 % С). Сосуд 4 для поглощения ЗОг состоит из стеклянного корпуса с впаянной трубкой, заканчивающейся барбатером, через которую поступают га-.зообразные продукты сжигания. В нижней части сосуда находится кран для сливания раствора, в верхней части— переходник, через который газообразные продукты сгорания поступают далее в холодильник 5. Сосуд для контрольного раствора 2 состоит из стеклянного баллона с краном в нижней части. Змеевиковый холодильник 5 служит для охлаждения смеси газов (СО2+О2), поступающих в газоизмерительную бюретку 6, с которой он сообщается через центральный трехходовой кран соединительной гребенки 8. Через центральный кран бюретка может соединяться с поглотительным сосудом 9, а через малый одноходовой кран — с атмосферой. Измерительная бюретка 6 представляет собой узкий цилиндрический сосуд с расширением в верхней части. Стенки бюретки двойные, пространство между ними заполнено водой через специальное отверстие в верхней части. Водяная рубашка служит для поддержания постоянной температуры в бюретке. Температура газов измеряется термометром 7. Капиллярный конец верхней части бюретки соединяется встык резиновой трубкой с соединительной гребенкой 8, а через нее — с атмосферой, холодильником 5 и поглотительным сосудом 9. В верхней части бюретки имеется стеклянный затвор — пустотелый поплавок, всплывающий при заполнении бюретки жидкостью и автоматически закрывающий верхнее выходное отверстие. В нижней части бюретки имеется шкала для измерения объемов газов. Деления шкалы соответствуют процентному содержанию углерода при навеске вещества 1 г. Бюретка калибрована при температуре 16 °С и давлении (0,1 МПа) 760 мм рт. ст. Если объем газа измеряется при других условиях, то вводят поправку по таблице, которая прилагается к каждому прибору. Поглотительный сосуд 9 снабжен автоматическими поплавками-затворами, которые запирают его при наполнении жидкостью, благодаря чему исключается возможность попадания раствора щелочи из поглотительного сосуда в бюретку. Уравнительная склянка с жидкостью 10 соединена при помощи рези- [c.326]

Газоанализатор (рис. 175) состоит из штатива и измерительной системы. Штатив 1 представляет собой деревянную раму, на которой монтируются все части газоанализатора. В измерительную систему входит сосуд для поглощения сернистого газа 4, сосуд для контрольного раствора 2, экран 3, холодильник 5, измерительная бюретка 6 с те змометром 7, соединительная гребенка 8, поглотительный сосуд 9 и уравнительная склянка 10. Все эти узлы и детали соединены между собой резиновыми трубками и смонтированы на штативе. Для измерения двуокиси углерода служат бюретки трех типов (от О до 4,5% С). Сосуд для поглощения сернистого газа 4 состоит из стеклянного корпуса, в который впаяна заканчивающаяся барботером трубка, через которую поступают га- [c.288]

Необходимое количество экстракта или эфирного масла, содержащего цитраль (1—25 г), вливают в мерную колбу на 50 мл и разбавляют до метки этиловым спиртом масла, содержащие терпены, — 95%-ным масла, лишенные терпенов, 50—90%-ным. 2 мл этого раствора (или больше в зависимости от содержания цитраля) вливают в трубку колориметра, добавляют 10 мл реагента и разбавляют до требуемого объема. Окраску раствора сравнивают с окраской стандартов, содержащих различные количества цитраля. Колори-метрирование может быть осуществлено как визуально, так и фотоколориметрически с использованием синего фильтра для измерения при 420 нм с параллельным контрольным измерением поглощения самого раствора масла без реагента. [c.207]

Спектры поглошения измеряли визуально при помощи спектрофотометра Хильгера—Наттинга. Растворы находились в кювете с толщиной слоя в 1 см. Результаты измерений изображали в виде кривых зависимости оптической плотности от длины волны. Контрольным раствором в каждой серии измерений служил раствор красите. 1я, не содержащий желатины. Это позволяло непосредственно сравнивать спектры поглощения красителя, растворенного в чистой воде и в растворе желатины. [c.309]

Методика. К исследуемому раствору, содержащему 3—15 мкг N-ацилнейраминовой кислоты в 0,2 мл, прибавляют 0,1 мл раствора перйодата. Пробирки встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 20 мин. После прибавления 1,0 мл раствора арсенита пробирки встряхивают до исчезновения образующегося вначале желто-коричневого окрашивания. Затем прибавляют 3,0 мл раствора тиобарбитуровой кислоты. Закрытые стеклянными пробками пробирки вновь встряхивают и нагревают в течение 15 мин на сильно кипящей водяной бане. Затем пробирки охлаждают 5 мин в холодной воде и 2 мл (или более) охлажденного раствора прибавляют к равному объему циклогексанона. Смесь встряхивают и центрифугируют 3 мин. Прозрачный циклогексаноновый раствор переносят в подходящую кювету и измеряют оптическую плотность при 549 ммк на спектрофотометре. Измерения проводят, сравнивая с контрольным раствором, полученным при проведении через все стадии анализа 0,2 мл воды. Коэффициенты молярного поглощения N-ацетил- и N-гликолилнейраминовой кислоты равны соответственно 57 ООО и 46 ООО. [c.232]

Методика. Раствор белка (10—100 мкг) помещают в пробирку (12х Х100 мм) и разбавляют до 0,1 мл 0,15 М раствором Na l. Добавляют 5 мл раствора красителя и перемешивают на вибромешалке. Через 2 мин начинают снимать кривую поглощения (при 595 нм) против контрольного раствора (0,1 мл соответствующего буфера-М мл раствора красителя) измерения продолжают в течение —1 ч. [c.297]

В первой части настоящей работы были рассмотрены новые возможности и приемы изучения фотосинтеза, основанные на измерении количества углерода, поступившего в лист растения и вошедшего в состав его органических веществ. Одиако интенсивность фотосинтеза и различных процессов обмена углекислоты, осуществляемых растением, можно определять и другим путем, изучая измепения концентрации и количества СО2 в воздухе или газовой смеси, окружающей лист. Этот путь, как известно, в течение многих лет использовался для определения количества поглощенной листом углекислоты из струи проходящего над ним воздуха или из воздуха замкнутой листовой камеры. В большинстве широко распространенных методов этого рода, детально описанных в нескольких сводных работах (Ничинорович, 1940 Бриллиант, 1950 Set-lik, 1954, и др.), интепсивность фотосинтеза устанавливается по разности количеств углекислоты в воздухе контрольной и листовой камер, что, конечно, связано с рядом погрешностей. Многие из перечисленных методов (например все методы, основанные на титровании растворов, поглощающих углекислоту) в целях более точного определения количества СО2, усвоенной при фотосинтезе, связаны с необходимостью продолжительной экспозиции листа в камере, что устраняет возможность изучать динамику процесса в течение коротких интервалов времени. Применение радиоактивного углерода С в качестве средства для определепия вызываемого фотосинтезом изменения концентрации и количества углекислоты в окружающей лист атмосфере позволяет устранить приведенные выше затруднения и открывает некоторые новые перспективы для исследования обмена углерода между растением и окружающей средой. [c.51]

Бенчер и др. [123] определяли сахара, разделенные методом ТСХ, используя усовершенствованный бензидиновый метод Джонса и Придхэма [124]. С этой целью с пластинки соскребали отдельные пятна в кювету, смешивали с 0,2 мл 60 %-ного этанола, добавляли 2 мл 0,2 %-ного раствора бензидина в уксусной кислоте и нагревали смесь на кипящей водяной бане. Длительность нагревания каждого нз видов сахаров была различной. Пентозы нагревали 15 мин, гексозы 30 мин, а дисахариды 60 мин. (При определении дисахаридов хроматограммы сначала, до соскребания пятен, опрыскивают концентрированной соляной кислотой.) После нагревания смесей в течение заданного времени их охлаждают и разбавляют до 2,5 мл бензиди-новым реактивом. Анализ завершают центрифугированием и измерением поглощения при 350 нм. Параллельно проводят контрольный опыт с холостым экстрактом силикагеля и, анализируя растворы известных сахаров, строят стандартные кривые. [c.571]

При анализе проб крови удаление мешающих определению примесей достигается выбором соответствующего растворителя. Найдено, что гексановые экстракты контрольных проб крови прозрачны в области длин волн 260—280 нм, т. е. в области максимумов поглощения карбина (табл. 2). Анализ препарата в крови сводят к экстракции w-гексаном и измерению оптической плотности раствора после его фильтрования при 276 нм. [c.64]

Измерения были выполнены на радиоспектрографе ЭПР типа РЭ-1301. Образцы растворов аминов в спиртах помещались в кварцевые тонкостенные ампулы диаметром 4 мм, допускающие вакуумную тренировку раствора. Контрольные опыты, проведенные с эвакуированными образцами и с неоттренированными образцами, показали отсутствие существенных различий в ходе реакции. Б качестве источника света использовалась ртутная, лампа ДРШ-250 с различными стандартными светофильтрами, применявшимися для выделения спектральных областей, соответствуюнщх длинноволновым участкам полос поглощения аминов (опыты показали, что свет с длиной волны X 313 нм разрушает спиртовые радикалы). Например, в случае трифениламина и дифениламина применялись фильтры УФС-4 и УФС-2 соответственно. [c.94]

Флуоресценция — это испускание света флуорофо-)ом, который поглощает свет при меньшей длине волны. Тоскольку измерение основано на сравнении энергии излучения в измеряемой пробе с очень низким уровнем излучения в контрольном образце, отношение сигнала к шуму очень высоко и, следовательно, флуориметричес-кие измерения более чувствительны, чем абсорбционные. Например, определение ЫАОН, основанное на флуоресценции, приблизительно в 100 раз чувствительнее, чем спектрофотометрический метод. Интенсивность флуоресценции зависит как от концентрации флуорофо-ра, так и (в отличие от поглощения) от интенсивности возбуждающего излучения. Поскольку возбуждение и излучение флуоресценции возникают при различных длинах волн, прибор должен быть устроен так, чтобы энергия возбуждения не доходила до фотодетектора. Это обычно достигается путем помещения детектора под углом 90° к световому пучку, возбуждающему излучение. Светорассеяние как в растворе, так и от поверхности может создавать большие трудности, но его можно свести к минимуму с помощью граничных фильтров с крутым фронтом, пропускающих энергию флуоресценции, но задерживающих энергию возбуждения. [c.179]

Улавливание радиоактивности с помощью мембран. Один из наиболее щироко применяемых методов — это измерение радиоактивности, поглощаемой бактериями или другими микроорганизмами, которые инкубировались в присутствии какого-либо растворенного радиоактивного вещества. После того как инкубация закончена, образец пропускают через мембрану, которая отделяет ставшие радиоактивными клетки от непоглощенной радиоактивности. Обычно пользуются мембранами из эфира целлюлозы с размером пор 0,45 мкм, хотя при желании можно использовать мембраны с большими и меньшими порами. Если растворенное радиоактивное вещество удаляется с трудом или если желательно прибегнуть к процессу просеивания (см. разд. 11.5), то можно использовать трековые мембраны Нуклепор. Как правило, при исследованиях, связанных с поглощением радиоактивности, основная часть последней остается в растворе, так что задача состоит в отделении незначительного количества радиоактивности частиц от высокой радиоактивности раствора. Подчеркнем исключительную важность того, чтобы это отделение было полным и чтобы на мембране не оставалось даже следов растворенных радиоактивных веществ, так как в противном случае неизбежна грубая ошибка в результатах. Обычная процедура после фильтрации заключается в том, чтобы промыть мембрану нерадиоактивной жидкостью с целью полного удаления радиоактивного раствора из мембраны. Эффективность промывки следует проверить с помощью соответствующего отрицательного контроля (например, поглощения, измеренного в присутствии клеточного ингибитора), а также провести контрольный опыт, когда раствор радиоактивного вещества пропускается через мембрану без какой-либо предварительной инкубации с образцом. Совершенно необходимо удостовериться в том, что в отсутствии клеток на мембране совсем не остается радиоактивности в противном случае следует использовать мембрану другого типа. Кроме того, возможно загрязнение самих радиоактивных растворов микроорганизмами последние при этом могут приобретать некоторую радиоактивность и вносить погрешность в измерения. Стерильность растворов должна поддерживаться в любом случае, и, прежде чем использовать радиоактивные растворы, их необходимо обязательно профильтровать. [c.314]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология