Биологические материалы pH раствора

Минерализация биологического материала. Пробу, содержащую 10—20 мг белка, помещают в колбу Кьельдаля, добавляют 0,5 мл концентрированной серной кислоты и проводят минерализацию (с. 44). Для учета количества аммиака в реактивах и воде параллельно опытным пробам ставят контрольные, в которых минерализации подвергается дистиллированная вода. После этого пробы количественно переносят в мерные колбы на 25—50 мл, осторожно нейтрализуют до слабокислой реакции на метиловый красный (индикатор добавляют в пробу, следя за тем, чтобы реакция не стала щелочной) и доводят водой до метки Из раствора берут пробы для определения аммиака. [c.86]

Если внутренний электролит амперометрического датчика отделить от анализируемого раствора мембраной, содержащей биологический материал ферменты, ткани растений и животных, бактерии, дрожжи, антигены/антитела, липосомы, органеллы, рецепторы, ДНК, то такой датчик приобретает специфическую чувствительность к определяемым компонентам. На рис. 14.2 приведена 498 [c.498]

Анализ твердых объектов (кусочки тканей, органов) требует дополнительных операций при подготовке пробы для выделения определяемых веществ из биологического материала. Для этой цели обычно используется экстракция р астворителем или отгонка с водяным паром. Полученный раствор в органическом растворителе или воде анализируется так же, как и жидкий биологический материал, однако при оценке точности анализа необходимо учитывать полноту выделения вещества из твердых тканей. Типичными случаями такого анализа являются определения ацетона [62], ароматических углеводородов [63] и хлорированных алифатических углеводородов [64] в твердых биологических тканях, пред- [c.134]

Определение ртути внутренним электролизом. Внутренний электролиз используется для определения ртути при ее содержании от 0,1 до 0,01 мг/мл раствора. В работе [95] использовали внутренний электролиз для определения ртути в биологических материалах. Биологический материал (консервы, мука, фрукты, мясо) разрушали смесью концентрированной азотной и серной кислот. Раствор помещали в пробирку емкостью 20 мл. В качестве катода использовали графитовый стержень цинковая пластина служила анодом. Максимальная ошибка определения ртути равна 4,2%. Увеличение температуры до 80° С, перемешивание и постоянное вращение электродов увеличивает скорость осаждения ртути. Время полного осаждения ртути 1 час. [c.78]

На начальных стадиях выделения биополимеров из растворов, осадков, а в ряде случаев и из исходной биомассы нередко используют экстракцию. Например, для выделения из биологического материала суммарной фракции липидов применяют экстракцию серным эфиром. Для очистки нуклеиновых кислот от основной массы белков и других биополимеров широко используется фенольная [c.234]

Методика изолирования алкалоидов, разработанная В. Ф. Крамаренко, сводится к следующему тщательно измельченный биологический материал заливают в колбе разбавленным раствором серной кислоты до покрытия твердых частей объекта, хорошо перемешивают и с помощью серной кислоты доводят pH до 2,5. Через 2 часа убеждаются в сохранении pH 2,5 и твердые части объекта отделяют процеживанием через марлю. Операцию извлечения повторяют 2—3 раза, настаивая по 1—2 часа с водой, подкисленной серной кислотой до pH 2,5. [c.129]

При химико-токсикологическом анализе новокаин изолируется из биологического материала подкисленным спиртом или подкисленной водой с последующей экстракцией органическим растворителем из щелочного раствора. [c.198]

Изолируется из биологического материала подкисленным спиртом или подкисленной водой, а затем органическим растворителем из щелочных растворов. [c.199]

Изолирование морфина из биологического материала при химико-токсикологическом анализе производится подкисленным спиртом или подкисленной водой, при этом оба метода приводят к потерям морфина, достигающим 97—98,5% при извлечении хлороформом. Из водных растворов морфин лучше всего экстрагируется изоамиловым спиртом, примерно 73—76% при pH 8,5— 9,5 хлороформом при pH 8,6—10,2 экстрагируется --28—30% морфина. [c.204]

Исследование биологического материала, содержащего морфин, с учетом pH среды в процессе изолирования и экстрагирования алкалоидов (метод Крамаренко) позволяет обнаружить в 2 раза больше морфина, чем при исследовании без учета pH среды. Л. М. Власенко для улучшения результатов исследования биологического материала на наличие морфина применила хроматографический метод выделения его на колонке катионита СДВ-3 и КУ-2 в Н-форме последний катионит дает худшие результаты. Через колонку пропускают водное извлечение из биологического материала, подкисленное щавелевой кислотой до рн 5,0—6,0. Десорбция производится 5% водным раствором аммиака. Чувствительность обнаружения морфина увеличивается в 7 /2—12 /2 раз при использовании смолы СДВ-3 и в 3— [c.204]

Для изолирования промедола применяют экстрагирование подкисленным спиртом или подкисленной водой. Из водных растворов после обычно применяемой обработки основные количества промедола извлекаются хлороформом из щелочных и частично из кислых растворов. Границей обнаружения промедола при извлечении спиртом является 0,15 мг в 100 г биологического материала, а подкисленной водой — 0,5 мг при использовании как реакций окрашивания, так и микрокристаллической. [c.206]

Для получения более точных результатов определения Ba + рекомендуется следующая методика. Новую навеску тщательно измельченного биологического материала (100 г) подвергают минерализации смесью серной и азотной или серной, азотной и хлорной кислот. Выпавший осадок сульфата бария на следующий день отфильтровывают, промывают и переосаждают из аммиачного раствора трилона Б, для чего сульфат бария растворяют при нагревании в аммиачном 0,05 н. растворе трилона Б. Горячий раствор отфильтровывают, фильтр промывают горячей [c.309]

В качестве примера подобного рода анализа может служить изучение дыхания в пробе биологического материала. В боковую трубку реакционной склянки вводят 0,5 мл 3 н. раствора серной кислоты, а в центральную вставку—0,2 мл 6 и. раствора едкого кали. Реактивы выдерживают в термостате до установления постоянной температуры в незаполненную часть колбы помещают [c.364]

Анализ биологического материала по предлагаемой схеме осуществляется следующим образом. В одну из параллельных проб производится добавка стандартов (аналитической степени чистоты) определяемых веществ. Добавка производится точной дозировкой (из бюретки или калиброванной пипеткой) разбавленного раствора стандартов определяемых веществ в количестве, соответствующем примерно ожидаемому содержанию каждого их них в исходном биологическом материале. Очевидно также, что добавку следует вводить до той стадии выделения, где ожидаются потери или изменения состава анализируемой смеси. [c.85]

Необходимо считаться с образованием осадка или мут в водном растворе, подлежащем экстрагированию дитизоном. Так, растворы образцов, содержащих много фосфора (биологический материал), при добавлении аммиака дают осадок фосфата кальция даже в присутствии цитрата, и такой осадок, увлечет с собой большую часть свинца, находящегося в растворе. Метаоловянная кислота также увлекает с собой свинец- [c.114]

К исследуемому веществу добавляют ничтожные следы (самую маленькую крупинку) йода и несколько кристаллов хлоргидрата папаверина (или сульфата хинина). При хлороформе фиолетовая окраска йода переходит в желтую или красновато-желтую, при четырех-хлористо углероде она не изменяется. Реакция пригодна для водных растворов хлороформа или четыреххлористого углерода, но не всегда удается с дистиллятом из биологического материала. [c.39]

При исследовании биологического материала на наличие фенолов часть второго дистиллята подщелачивают бикарбонатом натрия и извлекают 2—3 порциями эфира. Реакции на. фенол производят с остатком, полученным после испарения эфира, растворяя его в нескольких каплях воды. [c.66]

Г измельченного биологического материала помещают в колбу Кьельдаля емкостью 250 мл и заливают 25 мл концентрированной азотной кислоты и 35 мл 42— 57% раствора хлорной кислоты. Колбу Кьельдаля помещают на асбестовую сетку и осторожно нагревают на слабом пламени до разрушения форменных элементов. [c.120]

С какой целью проводят пробу с концентрированным раствором аммиака на минерализат, полученный после обработки биологического материала серной, азотной и хлорной кислотами [c.121]

Минерализация биологического материала. Пробы, содержащие азот, подвергают сжиганию в присутствии хлорной кислоты (0,06 мл 57%-НОГО раствора или 0,1 мл 5 н. раствора H IO4). Минерализацию проводят в термостойких пробирках, которые помещают в песчаную баню или специальный алюминиевый блок с отверстиями для пробирок. [c.87]

После соответствующей обработки навески биологического материала массой т (мг) получили 20,00 мл щелочного раствора, содержащего билирубин [М(СззНзеОеМ4) = 584,67 г/моль]. Измерили диффузионный ток катодного восстановления билирубина. В электролизер добавили 5,00 мл стандартного раствора билирубина с концентрацией 5,00 10 моль/л и измерили при тех же условиях. [c.265]

Навеску биологического материала массой т (мг) подвергли гидролизу, к полученному гидролизату протеина добавили растворы хлорида кобальта, аммонийного буферного раствора и разбавили до 50,00 мл. Полярографическая волна этого раствора вызвана каталитическим выделением водорода на катоде в присутствии образующегося комплексного соединения кобальта(П) с цистином, содержащимся в гидролизате протеина. Измерили высоту каталитической волны при Е = -1,6 В. К раствору добавили 5,00 мл стандартного раствора цистина [М((НООССН(КН2)СН28)2 = 240,291 г/моль] с концентрацией 2,00 10 моль/л. Увеличение высоты каталитической волны при том же потенциале А1 составило [c.265]

Простота эксперимента и малые количества необходимых веществ и биологического материала делают этот метод идеальным для ирименекня в качестве методики общего скрининга. Так, удовлетворительные ауторадиограммы легко могут быть получены путем встряхивания в течение ночи менее одного грамма ( влажная масса) свежевыросших микробных клеток с 2 мл (или меньшим количеством) буферного раствора, содержащего небольшое количество (например, 10 мкКи) меченного С предшественника типа ацетата, мевалоната или аминокислоты. Такая методика позволяет селективно обнаруживать метаболиты индивидуальных предшественников ее использовали при изучении многих продуктов метаболизма микробов, в том числе пенициллинов [49], тетрациклинов [54], альтернариола [51] и грибных феналенонов [52]. [c.365]

Количественное определение. Новую навеску биологического материала в количестве 200—300 г измельчают, подкисляют виннокаменной кислотой ы подвергают дистилляции с водяным паром. Дистиллят собирают в количестве 250—300 мл. Полноту отгонки метилового спирта устанавливают качественной реакцией. Для освобождения от летучих кислот дистиллят подш,ела-чивают 10% раствором бикарбоната натрия и подвергают двукратному дефлегмированию. При этом отгоняют в первый раз 100 мл, во второй — 14 мл жидкости. Последний дефлегмат служит для количественного определения метилового спирта колориметрическим методом, основанным на окислении метилового спирта до формальдегида и последующем определении его по реакции с фуксиносернистой кислотой. Летучие продукты гниения снижают чувствительность реакции. [c.89]

Границей обнаружения фенола (по реакции образования трибромфенола) после дистилляции с водяным паром является 50—55 мг в 100 г биологического материала. При больших количествах фенола при насыщении им дистиллята ощущается характерный запах и заметны молочповидная муть и даже бесцветные или красноватые капли, растворяющиеся вследствие образования феиолята от добавления раствора едкого натра. [c.111]

В 1956—1961 гг. проф. В. Ф. Крамаренко и его сотрудники -своими исследованиями показали необходимость учета р 4 среды как в процессе изолирования алкалоидов из биологического материала, так и при экстрагировании их органическими растворителями из водных вытяжек (стр. 126). При учете этих данных исследование объектов растительного происхождения (мука, хлеб, крупа и т. д.) на наличие в них алкалоидов производится следующим образом 5 г исследуемого объекта тщательно смещивают с 60 мл дистиллированной воды , подкисленной насыщенным водным раствором винной (или щавелевой) кислоты до pH 2,0—2,5 (по универсальному индикатору), и оставляют при комнатной температуре на 2 часа. Периодически смесь взбалтывают. Водный слой сливают декантацией и подвергают центрифугированию 30 минут при 3000 оборотов в минуту. Прозрачную жидкость переносят в делительную вороику и трижды новыми порциями (по 15—20 мл) осторожно, чтобы избежать образоваиия эмульсии, экстрагируют хлороформом. Для разделения эмульсии (в случае ее образоваиия) пользуются цептрифу- [c.124]

С водяным паром никотин перегоняется без разложения. С водой он образует азеотропную смесь, перегоняющуюся при температуре 99,99°. Способность никотина перегоняться с водяным паром используется наряду с экстракцией водой из подщелоченных растворов при извлечении алкалоида из растений, а также при изолировании его из биологического материала животного просхождения. [c.183]

Для изолирования пахикарпина из биологического материала при химико-токсикологических исследованиях применяют извлечение подкисленным спиртом или подкисленной водой. В. П. Крамаренко и С. У. Закалик изучали возможность изолирования пахикарпина из биологического материала водой, подкисленной до pH—2,5 серной кислотой. В качестве органических растворителей для экстрагирования алкалоида сравнивали изоамиловый спирт, хлороформ, дихлорэтан и бензол. В случае экстрагирования хлороформом и изоамиловым спиртом им удавалось определить 80—90% пахикарпина, содержащегося в водном растворе. Максимум экстрагирования достигается при pH—9,8—10,8. [c.188]

Изолирование кодеина из биологического материала происходит легче, чем морфииа. В отличие от морфина кодеин экстрагируется органическим растворителем из водных растворов, под- [c.207]

Для изолирования стрихнина из биологического материала при химико-токсикологических исследованиях прилтеняют извлечение подкисленным спиртом или подкисленной водой. Лучшее экстрагирование стрихнина и бруцина из водных растворов хло-роформо.м достигается при pH 9,0—12,0, при этом извлекается 92—94% алкалоида. [c.215]

Реакция образования рейнеката платифиллина с 1% раствором соли Рейнеке — игольчатые кристаллы, собранные в сфероиды. Чувствительность реакции 2,7 мкг при предельном разбавлении 1 7430. Для исследования биологического материала первую реакцию применили В. Т. Позднякова и Э. И. Егорова, а вторую — Э. И. Егорова. [c.226]

Кофеин изолируется из биологического материала по общему ходу химико-токсикологического анализа как подкисленным спиртом, так и подкисленной водой, а затем извлекается хлороформом из кислого раствора (константа дпссоциацпи К=4,1 10 ). Еще легче извлекается хлороформом из растворов, подщелоченных аммиаком, если он не был предварительно извлечен из кислых растворов. Максимум экстракции хлороформом наблюдается при pH 4,0—7,0. [c.228]

Техника окисления серной, азотной и хлорной кислотами. Тщательно измельченный биологический материал помещают в колбу Кьельдаля емкостью 500 мл или в колбу для сжигания аппарата Бетге. Аппарат Бетге представляет собой замкнутую систему и позволяет улавливать летучие продукты окисления. К исследуемому материалу прибавляют через воронку по 25 мл концентрированной азотной и серной кислот и 35 мл 37% или 42% раствора хлорной кислоты. Окисление органических веществ ведут при постепенном усилении нагревания, добавляя при обугливании минерализата концентрированную азотную кислоту. Вскоре обугливание усиливается и над поверхностью минерализата появляются пары хлорного ангидрида. Нагревание либо прекращают, либо сильно ослабляют и продолжают окисление, добавляя по каплям 35—45% раствор азотной кислоты. Как только минерализат станет прозрачным, проверяют полноту окисления органических веществ, для чего к капле слегка охлажденного и разбавленного дистиллированной водой минерализата прибавляют 25% раствор аммиака. Если окисление прошло до конца, раствор должен окраситься в слабо желтый, но не в оранжевый цвет (реакция на наиболее трудно окисляемые аминокислоты фенилаланин, тирозин и триптофан). При наличии в минерализате хрома критерием конца минерали- [c.284]

В работе /11/ порощковый активированный уголь использовался в качестве средства, которое создавало в биомембранной системе, не содержащей активного ила, благоприятные условия для работы мембран. Уголь, очевидно, предохраняет мембраны от загрязнения жирами и маслами. В результате биохимических превращений общее содержание твердых веществ во всей системе изменяется, а уголь, по-видимому, регенерируется биохимически. Эти исследования показали, что удерживание малых молекул возрастает быстрее, чем это происходит при наличии в системе биологического материала, и что нормальный поток через мембраны достигается быстро. Удерживание веществ и предохранение поверхности мембран от загрязнения обеспечиваются именно углем, как и можно было ожидать, исходя из основного принципа действия угля. В общем случае адсорбция органических веществ на активном угле подчиняется закону Траубе, из которого следует, что чем выше липофильность молекул, тем выше степень их адсорбции. Поэтому уголь должен в большей мере предохранять мембрану от тех материалов, которые растворяют ся в воде и увеличивают засорение поверхности мембран. [c.287]

Биологический материал, в котором определяют кадмий, вследствие летучести последнего обрабатывают мокрым путем при соответствующей предосторожности можно также проводить минерализацию сухим путем [53 ]. Клейн [45 , 47 , 50 ] и Вихман [49 ] подробно исследовали возможность определения следов кадмия (ср. раздел г, 2). Ширли, Бенне и Миллер [49 ] особенно учитывали присутствие умеренных количеств ионов Со + и N 2+. Чорч [47 ] работал с растворами дитизона в хлороформе. Зальтцман [53 ] принимал во внимание при [c.267]

Холак и Хаббард [44 ] встряхивали подготовленный для определений раствор биологического материала, содержащий ионы с раствором дитизона в хлоро- [c.367]

Холак и Хаббард [44 ] иодшелачивали раствор биологического материала для полярографирования едким натром таким образом, чтобы концентрация последнего равнялась 1,25 п., и отделяли кадмий от цинка, свинца и других мешающих ионов экстракцией дитизоном в хлороформе. Экстракт ионов кадмия разрушали кислотой, водный раствор выпаривали досуха и остаток растворяли в 3 мл смеси из 0,1 и. растворов КС1 и НС1. От 2 до 500 мкг кадмия в 3 мл раствора дают отчетливые полярограммы. [c.370]

Костяковой 118] была разработана методика обнаруишния в биологическом материале хинина, риванола и акрихина по цвету флуоресценции этих веществ в водных растворах. Методика извлечения хинина, риванола и акрихина из биологического материала довольно проста. Измельченный материал сначала подкисляется щавелевой кислотой и заливается 90°-нн, е [c.328]

При длительном стоянии формальдегида, особенно при низкой температуре, в нем образуется белый осадок полимера формальдегида, называемого параформом (параформ был впервые получен А. М. Бутлеровым). Формальдегид обладает способностью свертывать белки и благодаря этому вызывать гибель бактерий. На этом свойстве основано применение формальдегида для дезинфекции. Парами формалина окуривают дезинфецируемые помещения. Растворами формальдегида обрабатывают руки хирурга, хирургические инструменты. Растворы формальдегида используют также для консервирования биологического материала, при изготовлении анатомических препаратов и гистологических срезов. Формальдегид является источником получения медицинского препарата уротропина. [c.99]

Навеску биологического материала массой т г после минерализации и соответствующей обработки растворили в 25,00 мл воды. В две колбы вместимостью 25,00 мл поместили по 5,00 мл полученного раствора, в одну из них добавили 1,00 мл стандартного раствора иодида с концентрацией 0,5 мкг/мл. В обе колбы при одинаковых условиях добавили растворы реагентов (КЮз, NaзAsOз, цитратный буфер), объемы довели до метки водой и из полярографических данных определили время окончания реакции в каждой колбе X и 1х+ст- [c.292]

Ввиду чрезвычайно высокой чувствительности многих биологически активных веществ к изменению pH среды представляет интерес очистка их с помощью смеси ионитов, поскольку деминерализация раствора происходит практически в нейтральной среде. Для поддержания нейтральности раствора при очистке биологического материала, чувствительного к pH, могут применяться в смеси не только Н- и ОН-формы ионитов, но и такие, которые обладают бу-фериым действием в нейтральной области (например, NH4-KaTH0-нит и СНзСОО-анионит). [c.193]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология