Аминогруппа аналитическое определение

В его молекуле содержатся две группы ЫНг, из которых одна (4) — аминогруппа — сообщает ему основные свойства, а другая (1) — амидогруппа, один водород которой обладает кислотными свойствами. Поэтому препарат образует соли и с кислотами и со щелочами. Аминогруппа легко диазотируется, чем пользуются для аналитического определения белого стрептоцида и остальных препаратов этого ряда. Температура плавления 164—167°. [c.284]

Показано, что анионит, содержащий первичные аминогруппы, обладает резко выраженной селективностью к ацетальдегиду. Анионит № 374 может быть использован для технологии извлечения ацетальдегида из смеси органических веществ, а также для аналитического определения ацетальдегида. [c.288]

Реагент для фотометрического определения выбирают, прежде всего, исходя из специфичности взаимодействия анализируемого вещества с определенными аналитическими группами органических реагентов. Например, для никеля специфическими реагентами являются органические вещества, содержащие оксим-ную группу =К—ОН, для кобальта— реагенты, содержащие в орто-положении группы —N=0 и —ОН, для меди — реагенты, содержащие тио- и аминогруппы одновременно и т. д. Необходимо также, чтобы окрашенные соединения удовлетворяли требованиям устойчивости и постоянства состава. [c.288]

Изучение азотистых соединений нефтей нами было начато с разработки аналитических методов определения общего азота, групп азотистых оснований (первичные, вторичные и третичные аминогруппы) и амидного азота. [c.67]

Бензидин кристаллизуется из горячей воды в листочках (те ,яь плавл. 122 ). В бензидине, а также в его сульфокислотах, обе аминогруппы легко ди азотируются. Сочетанием образующегося бис-ди-азосоединения с сульфокислотами аминов и фенолов получаются многие важные азокрасители. Бензидин применяется также в аналитической практике для определения сериой кислоты, так как сульфат бензидина обладает ничтожной растворимостью. [c.414]

Обсуждение практических подробностей применения специально созданных аддиционных полимеров, аналогичных упомянутым выше, выходит за рамки данной главы. Целесообразнее сконцентрировать внимание на полимерах, которые обладают функциональными концевыми группами известного строения, определяемыми аналитически, т. е. на конденсационных полимерах. В последующих разделах не делается попыток дать перечень всех возможных методов, а описываются лишь некоторые способы анализа конденсационных полимеров, имеющих важное техническое значение. Рассматриваются методы определения следующих концевых групп карбоксильных групп в полиамидах карбоксильных групп в полиэфирах аминогрупп в полиамидах ацетильных групп в полиамидах гидроксильных групп в полиэфирах восстанавливающих групп в целлюлозе. [c.279]

К аналитическим методам, представляющим ценность для определения некоторых концевых групп, относится колориметрия и инфракрасная спектроскопия. Концевые аминогруппы некоторых полиамидов реагируют с динитро-фторбензолом с образованием окрашенных производных динитробензола, которые можно определять колориметрически [18]. Гидроксильные и карбоксильные концевые группы полиэтилентерефталата можно определять по поглощению этими группами инфракрасного излучения, если предварительно провести калибрование специальным методом с применением дейтерирования [19]. [c.281]

ПодготоЕ ленная путем модифицирования реакцией с -амино-пропилтриэтоксисиланом поверхность достаточно крупнопористого силохрома или силикагеля может быть использована для иммобилизации белков и, в частности, ферментов, нужных для проведения -биокаталитических реакций. Для этого, как указывалось в лек-дии 5, надо провести дальнейшее модифицирование поверхности адсорбента-носителя прививкой агента (глутарового альдегида), способного вступить в реакцию с аминогруппами как модификатора, так и балка. Адсорбент-носитель с привитыми теперь уже альдегидными концевыми группами вводится в реакцию с различными белками. Ра ссмотрим иммобилизацию уреазы — важного фермента, находящего также применение в аналитическом определении мочевины и в аппарате искусственная почка . На рис. 18.9 представлена зависимость активности иммобилизованной уреазы от количества иммобилизованного белка. Адсорбентом-носителем является макропористый силохром со средним диаметром пор 180 нм. Этот размер пор значительно превышает размер глобулы уреазы. Вместе с тем удельная поверхность этого силохрома еще достаточно высока (5 = 41 м /г), чтобы обеспечить иммобилизацию значительного количества уреазы. Из рис. 18.9 видно, что при этом удается иммобилизовать до 120 мг белка на 1 г сухого адсорбента-носителя (это составляет около 3 мг/м ). Активность уреазы снижается не более, чем наполовину, даже при большом количестве уреазы в силикагеле, зато иммобилизованный так фермент можно многократно применять в проточных системах, и он не теряет активности при хранении по крайней мере в течение полугода. [c.341]

Белый стрептоцид (ГФУШ, 576)—белый порошок горьковатого вкуса, слабо растворимый в холодной воде, хорошо растворимый в кипящей воде, в спирте и ацетоне. Температура плавления 164—167°. Образует растворимые соли как с кислотами, так и со щелочами. Аминогруппа легко диазотируется, чем пользуются для аналитического определения как белого стрептоцида, так и всех остальных препаратов этого ряда (также и при медицинских анализах для определения концентрации препарата в крови). [c.359]

Аналитическое определение остатков фолитиона проводится по известной методике Аверелла и Норриса [101 путем восстановления нитрогруппы цинком и соляной кислотой до аминогруппы и последующего диазотирования и титрования раствором нитрита натрия. [c.333]

Белки дают ряд цветных реакций, обусловленных наличием определенных аминокислотных остатков нли общих химических группировок. Эти реакции широко используются для аналитических целей. Среди них широко известны нингидриновая реакция, позволяющая проводить количественное определение аминогрупп в белках, пептидах и аминокислотах, а также биуретовая реакция, применяемая для качественного и количественного определения белков и пептидов. (При нагревании белка или пептида, но не аминокислоты, с Си 01 в щелочном растворе образуется окрашенное в фиолетовый цвет комплексное соединение меди, количество которого можно определить спектрофотометрически.) Цветные реакции на отдельные аминокислоты используются для обнаружения пептидов, содержащих соответствующие аминокислотные остатки. Для идентификации гуанидиновой группы аргинина применяется реакция Сакагучи — при взаимодействии с а-нафтолом и гипохлоритом натрия гуанидины в щелочной среде дают красное окрашивание. Индольное кольцо триптофана может быть обнаружено реакцией Эрлиха — красно-фиолетовое окрашивание при реакции с п-диме-тиламинобенэальдегидом в Н 804. Реакция Паули позволяет выявить остатки гистидина и тирозина, которые в щелочных растворах реагируют с диазобеизолсульфокислотой, образуя производные, окрашенные в красный цвет. [c.32]

Гидроксильная группа легко определяется самыми различными методами ацетилированием и омылением ацетильных производных метилированием различными агентами и последующим определением метоксилов по Цейзелю по реакции взаимодействия с фенилизоциа-натами и их производными ацилированием галоидоангидридами с меченым галоидом и последующим определением галоида по интенсивности полос поглощения гидроксила в инфракрасной области спектра сульфохлорированием и многими другими аналитическими методами. Применяя методы определения гидроксильных групп, необходимо обращать внимание на абсолютное исключение примеси воды в полимере, растворителях и реагентах, а также защищать систему от попадания влаги из воздуха. Необходимо также учитывать наличие других жтивных групп со сходной реакционноспособностью, например аминогрупп. [c.269]

В химии аминокислот используется много других аналитических способов. Определение азота по Къелъдалю дает содержание всего азота в белке или белковом гидролизате. При. этом определении органическое соединение разлагается путем, нагревания со смесью концентрированной серной кислоты и катализаторов, таких, как двуокись селена. Образующиеся аммонийные соли превращаются в аммиак, который отгоняют и титруют. Общее содержание азота заметно меняется в зависимости от характера аминокислот в белке. Количество азота, присутствующего в виде первичных аминогрупп, определяется по методу Ван-Слайка. Неизвестное вещество обрабатывают азотистой кислотой и измеряют объем выделяющегося азота. [c.539]

Ограничения. метода 1) неполное присоединение С-конце-вой ампиокпслоты к бензильным группам полимера может приводить к образованию примесей, например при синтезе пента-пептида А —А —А —А —А может быть образована цепь А2—.-V—А —А при реакции второй аминокислоты с оставшейся в первой стадии бензнльной группой. Эта реакция конкурирует со стадией Б 2) неполное присоединение Х-защищенной ампиокпслоты к свободной аминогруппе (стадия Б) может привести к образованию сокращенных пептидов (например. А — А —и неправильной последовательности (например, А — А2—А —А ) 3) отсутствие аналитических методов определения примесей, которые могут применяться без отделения пептида от полимера. Такое определение может быть очень расточительным, требовать много времени и само по себе приводит к распаду продукта. [c.333]

Реакцию азосочетания можно применять для аналитических целей в клинической практике. Так, известная диазореакция, предложенная Эрлихом, основана на том, что к моче добавляют диазотированной сульфаниловой кислоты. При наличии в моче ароматических или гетероциклических соединений, содержащих фенольную или аминогруппу, после подщелачивания аммиаком происходит реакция сочетания и образование соответствующего красителя красного цвета. С помощью диазореакции можно производить не только качественные, но и количественные определения лекарственных веществ (например, сульфаниламидов) в моче или в сыворотке крови. [c.296]

Одной из существенных проблем аналитической биохимии является определение характера и количества нуклеозидов в гидролизатах нуклеиновых кислот. Производные нуклеозидов, в которых гидроксильные или аминогруппы модифицированы метиль-ными, ацетильными либо изопропилиденовыми радикалами, могут быть успешно разделены хроматографией в газовой фазе при использовании низких весовых отношений стационарной фазы к твердому носителю (рис. 12) [64]. [c.271]

Взаимодействие аминогрупп кислот с арилсульфокислотами и сложными эфирами органических кислот широко применяется для аналитических и синтетических целей. В частности, как уже указывалось выше, для определения Ы-концевых аминокислот используют реакцию аминогруппы с производным йодфенил-сульфокислоты — п-йодфенилсульфонилхлоридом. При синтезе пептидов для прикрытия свободной аминогруппы очень полезными оказались бензиловые эфиры хлоругольной кислоты (кар-бобензоксихлориды) [c.56]

По определению содержания гидроксильных групп могут быть определены молекулярные веса полиэфиров, полимерных окисей, полимерных углеводов и других классов соединений, содержащих на концах макромолекулы гидроксильные группы или группы, легко переводимые в гидроксил. Гидроксильная группа определяется ацетилированием и омылением ацетильных производных, метилированием и определением метоксилов по реакции взаимодействия с фенилизоцианатами и их производными, ацилированием гало-идоангидридами с меченым галоидом и последующим определением галоида по интенсивности полос поглощения гидроксила в инфракрасной области спектра и другими аналитическими методами. При определении гидроксильных групп необходимо тщательно следить за абсолютным исключением примеси воды в полимерах, растворителях и реагентах и тщательно защищать систему от попадания влаги из воздуха. Единой методики определения содержания гидроксильных групп и единой формулы для вычисления молекулярного веса, как и в случае вычисления молекулярного веса по содержанию карбоксильных, не имеется. В каждом отдельном случае необходимо учитывать строение макромолекул полимера, а также наличие других активных групп со сходной реакционной способностью (например, аминогруппы). [c.172]

Реакция дезаминирования азотистой кислотой лежит в основе общеизвестного метода определения аминогрупп по Ван-Сляйку он описан выше. Если соответствующим образом учитывать ограничения этого стандартного метода и тщательно контролировать условия реакции, то он окажется наиболее удобным способом определения количества свободных аминогрупп в белках. Легче всего реагируют концевые, а-аминогруппы, несколько медленнее—е. -аминогруппы и уже весьма постепенно выделяют азот гуанидинные группы. Тот факт, что количество свободных аминогрупп, определенных по методу Ван-Сляйка, превосходит содержание лизина, рассчитанное на основании аналитических данных, является первым доказательством наличия М-концевых групп в белках. Реакция с азотистой кислотой протекает быстро и количественно она нашла широкое применение для определения степени замещения аминогрупп в модифицированных белках. В последнее время предпочтение стали отдавать нингидринному методу. [c.313]

При исследовании белковых волокон особое внимание уделялось крашению кислотными красителями из кислых растворов. В этом случае не было выявлено четкой зависимости между геометрией молекул волокна и красителя. По-видимому, молекулы красителя могут иметь любую форму при условии, что они содержат сильные кислотные группы, например сульфоновые. Ясно, одиако, что существует определенный предел выбираемости красителя белковым волокном и что эта величина насыщения почти одинакова для всех равномерно окрашивающих кислотных красителей аналитическим путем было установлено, что она соответствует величине максимального поглощения минеральных кислот волокном и содержанию в нем основных групп. Если удалить из шерсти обработкой азотистой кислотой некоторые аминогруппы, то величина насыщения красителем понизится, и это понижение будет соответствовать уменьшению поглощения соляной кислоты. Следовательно, основной причиной адсорбции красителя белковыми волокнами из кислого раствора является притяжение между положительно заряженными основными группами в волокне и отрицательно заряженными группами в молекуле красителя. Для объяснения большего сродства к шерсти ионов красителя по сравнению с ионами неорганических веществ, а также способности ионов красителя вытеснять неорганические ионы из волокна необходимо принять во внимание дополнительные связующие силы—водородные связи или связи типа ван-дер-ваальсовых. Но и в этом случае общая картина процесса крашения представляет собой адсорбцию молекул красителя на особых участках в волокне. [c.465]