Реактивы первая помощь

Результаты анализа запишите в таблицу, составленную из трех вертикальных колонок. В первой колонке Ион перечислите анализируемые ионы во второй колонке Реактив запишите формулу реактива, который необходим для обнаружения катиона или аниона в образце в третьей колонке + / — , отметьте наличие или отсутствие иона в исследуемом образце с помощью знаков -f- и — — соответственно. [c.143]

Для создания оптимальных условий образования характерных кристаллов рекомендуют следующую технику выполнения реакции. Каплю исследуемого раствора помещают на тщательно промытое и сухое предметное стекло. Капля должна быть небольшой, диаметр ее на предметном стекле не должен превышать 5-7 мм. Рядом помещают каплю раствора реагента так, чтобы между каплями оставался промежуток около 2 мм. Капли осторожно соединяют с помощью тонкой стеклянной палочки узкой перемычкой. Это обеспечивает медленное увеличение концентрации осадителя за перемычкой за счет процесса диффузии и позволяет получать более крупные и правильные кристаллы. В случае органических соединений определение можно проводить и без введения реактивов путем медленного испарения растворителя. Этот прием используют и при осаждении неорганических осадков, например, А (КНз)2С1. Иногда каплю при слабом нагревании лишь слегка подсушивают, особенно при анализе очень разбавленных растворов. В разных точках капли условия роста кристаллов различны. По периферии, где в большей степени испаряется растворитель, кристаллы образуются в первую очередь. В центре капли, где испарение не так важно, кристаллы появляются позже. Реактив можно вводить в каплю в твердом состоянии в виде отдельного кристаллика размером не более 0,1 мм. При проведении микрокристаллоскопических реакций в разбавленных растворах капли анализируемого раствора и реагента рекомендуют перемешивать на предметном стекле. В некоторых случаях обрабатывают каплю газо- или [c.171]

Одна из первых диффузионных установок камера Конвея состоит из двух отделений — внешнего и внутреннего [44, 45]. Подготовленную для анализа пробу помещают во внешнее отделение и прибавляют насыщенный раствор карбоната калия для выделения аммиака. Затем камеру накрывают. Аммиак диффундирует при комнатной температуре в течение 1,5 час во внутреннее отделение, в котором находится раствор кислоты. При 38° продолжительность диффузии может быть уменьшена до 1 час. Абсорбирующий раствор переносят при помощи сифона или пипетки с резиновой грушей в мерную колбу, прибавляют реактив Несслера и измеряют оптическую плотность полученного раствора. [c.79]

Ясно, что если мы имеем дело с трипептидами, то для однозначного установления аминокислотной последовательности достаточно первых двух этапов. При расшифровке строения более длинных пептидов весьма полезным оказывается реактив Эдмана. Последовательная, в несколько этапов, идентификация аминокислот с N-конца наряду с выяснением аминокислотного состава пептида и природы С-концевой аминокислоты в ряде случаев оказывается достаточной для установления аминокислотной последовательности в пептидах, содержащих от 8 до 10 аминокислот. Аналогичные исследования, правда по большей части не столь успешные, можно проводить также с помощью лейцинаминопептидазы и карбоксипептидазы. [c.91]

Метод обратного титрования основан на применении двух рабочих растворов. Сначала к титруемому раствору приливают заведомый избыток первого рабочего раствора, который содержит реактив, непосредственно реагирующий с определяемым ионом. Объем прилитого первого рабочего раствора точно измеряют с помощью пипетки или бюретки, концентрация его также должна быть точно определена. Не вошедший в реакцию с определяемым ионом избыток реактива, введенного с первым рабочим раствором, далее титруют вторым рабочим раствором, который реагирует с первым. [c.115]

Для того чтобы получить другой энантиомер в оптически чистом состоянии, в большинстве случаев следует использовать второй асимметрический реактив. С этой целью маточный раствор, полученный при первоначальном расщеплении, освобождают от первого асимметрического реактива путем удаления растворителя и добавления кислоты (в случае основного асимметрического реактива) или основания (в случае кислого асимметрического реактива). Затем второй не вполне оптически чистый энантиомер отфильтровывают или экстрагируют. Далее снова проводят расщепление обычным путем, подбирая наиболее выгодные для него условия, как и в случае первоначального расщепления, но с тем преимуществом, что вещество, подлежащее расщеплению, уже обогащено нужным энантиомером и поэтому желательный диастереомер образуется в избытке по сравнению с нежелательным диастереомером. Целый ряд расщеплений был завершен с помощью этого метода. [c.63]

Имеется и другая проблема, вероятно, кажущаяся более сложной, чем есть на самом деле. С помощью спектроскопии было показано [195], что замещенные бензофеноны и метилмагнийбромид в этиловом эфире частично ассоциированы в комплекс и что при обычном течении процесса одновременно расходуются незакомплексованный и закомплексованный кетоны при этом скорость реакции подчиняется первому порядку, когда реактив Гриньяра [c.845]

Если используют два раствора реактивов, а именно раствор вольфрамата натрия и 0,66 н. серную кислоту, то лучше всего сначала ввести в пробирку с помощью пипетки соответствующий объем одного из реактивов. Объем образца исследуемой крови или другой жидкости должен составлять одну десятую или одну пятую часть объема пробирки. Образец помещают в пробирку, промывают сосуд, в котором содержался образец, первым раствором, после чего перемешивают раствор с образцом. С помощью пипетки добавляют при перемешивании второй раствор. Перемешивание осуществляют или с помощью вышеописанной мешалки с вибрирующей нитью, или же, еще проще, прикрепив трубку к какому-нибудь вибрирующему телу, например к вибратору обычного электрического звонка, который очень удобен в применении для этой цели. После того как в пробирку введен второй реактив и содержимое пробирки полностью перемешано, объем доводят до метки, еще раз перемешивают и отделяют осадок белка центрифугированием. Раствор, не содержащий белка, извлекают из пробирки с помощью капиллярной пипетки. Подробности проведения операции отделения белков применительно к каждому отдельному случаю указаны ниже при описании соответствующих методов анализа. [c.118]

Приступая к анализу катионов первой аналитической группы, необходимо первоначально открыть ион NHI, так как он мешает открытию иона К+ и может помешать открытию иона Л а+, если употреблять реактив К[5Ь(ОН)д1. Кроме того, присутствие солей аммония мешает открытию Mg2+ с помощью гипоиодита калия, титанового желтого и других реактивов, дающих с магнием цветные реакции. [c.269]

Спектрофотометрическое определение. При помощи небольшого сифона 2 (рис. 4) в прибор для заполнения переносят около /з содержимого мерной колбы и хорошо промывают им присоединенную проточную кювету. Толщина слоя 0,01 0,05 0,1 или 0,2 см. Только после повторной промывки заполняют кювету окончательно, отсоединяют ее и измеряют экстинкцию ири 500 Л1 1, сравнивая ее с экстинкцией чистого бензола. Было установлено, что реактив при 500 мц не обладает собственной экстинкцией. Однако через несколько недель экстинкция все же появляется и тогда проводят измерения, сравнивая с измерениями раствора реактива, разбавленного так же, как и первая проба. Это необходимо также тогда, когда измерение производят при. большой толщине слоя — около 0,2 см. Окраска подчиняется закону Ламберта—Беера до е = 1,0, что вообще должно быть верхней границей спектрофотометрического определения. 1де при 500 лф для всех исследованных до сего времени диалкилалю-минийгидридов одинаков (2,31). Это значит, что навеска 77,0 мг чистого диизобутилалюминийгидрида, растворенная в 25 мл при й = 0,05 см, дает экстинкцию 0,224. Отклонения отдельных измерений от теории колеблются в пределах 2%. Для измерения необходимо применять спектрофотометр с монохроматором, так как обычные светофильтры для 460 и даже 480 мр. не полностью защищают от желтого окрашивания, обусловленного наличием алюминийтриалкилов. [c.44]

Саивииовым [260] проводилось изучение реакции С02-1-С = 2С0 методом непрерывного взвешивания реагирующего шарика с помощью крутильных весов. Аг тор исследовал скорость реагирования шарика пз электродного угля = 0,75 до 1,5 см в интервале температур / = 743927°С. При этом зависимость от диаметра частицы не обнаружена, но, по Хитрину [59], это объясняется очень малой величиной внутренней поверхности 8 данного угля, оцененной из опытов Головиной ве.иичпной Л , = 10,3 см /см . При малой величине нельзя ожидать пропорциональности между 8 и диаметром частицы. Наличие внутреннего реагирования в опытах Саввинова подтверждается заметным разрыхлением поверхности угля после реакт ,ии, а также некоторым возрастанием скорости реакции с течением времени. Нз опытов установлены величина энергии активации =51000 кал/моль, а также первый порядок реакции в пределах концентраций от О до 100 /о- [c.198]

Реактив получается прн конденсации двух молекул антипирина (с помощью формальдегида). Диантипирилметан (Diant) представляет собой очень слабое основание. Его первая константа диссоциации [c.342]

Характерной особенностью катионов этой группы еляется образование трудно растворимых карбонатов легко растворимых хлоридов и сульфидов. Благо-аря этому при осаждении катионов подгруппы хло-идов, катиоеов группы НгЗ и группы (ЫН4)гЗ ка-яоны второй группы остаются в растворе. От атио-ов первой группы они отделяются при помощи НН4)2СОз в виде карбонатов. Карбонат аммония яв-яется групповым реакт чвом для катионов второй группы. [c.201]

Обычно водную экстракцию или выщелачивание проводят в стеклянном или фарфоровом стакане. Чем труднее или меньше растворяется извлекаемое вещество в воде, тем больше должно быть отношение растворитель твердое вещество (ж т), чтобы больше извлечь за один прием. После добавления воды или водного раствора необходимо некоторое время перемешивать смесь или механизированным путем (см. гл. 8 Растворение ), или просто стеклянной палочкой. Затем, прекратив перемешивание, жидкости дают отстояться. Отстоявшуюся чистую жидкость сливают при помощи стеклянной палочки в воронку на фильтр. Воронку вставляют в заранее заготовленную посуду (приемник). Сливать нужно так, чтобы экстрагируемое вещество по возможности не попадало на фильтр. Пусть лучше над твердым веществом останется небольшой слой жидкости. После этого оставшуюся массу снова заливают растворителем и повторяют операцию до полного извлечения нужного вещества. Окончание экстракции определяют по специфической реакции на извлекаемое вещество. Одну-две капли фильтрата из конца воронки помещают на часовое стекло и добавляют нужный реактив. Если проба дает положительную реакцию—выщелачивание продолжают. Если же проба будет отрицательной—выщелачивание заканчивают. В лабораторных условиях можно создать батарею для выщелачивания. Для этого берут несколько стаканов, помещают в них твердое вещество, подлежащее выщелачиванию, и в каждый стакан вставляют воронку (вставлять в воронку фильтр в данном случае нет необходимости). Воду или водный раствор наливают в первый стакан, перемешивают и дают отсто- [c.392]

Причины, вследствие которых эта область объемного анализа не развивалась, непосредственно вытекают из трех основных требований, предъявляемых к реакциям в объемном анализе. Эти реакции, во-первых, должны быть достаточно быстрыми, затем они должны протекать однозначно, и равновесие реакции должно быть сильрю сдвинуто в сторону образования продуктов реакции. Другими словами, титрующий реактив и титруемое вещество должны во время титрования реагировать в определенном и постоянно одинаковом соотношении с тем, чтобы перед окончанием титрования концентрацией титрующего реактива в растворе по отношению к продуктам реакции можно было пренебречь и, наоборот, чтобы по окончании титрования можно было пренебречь концентрацией титруемого вещества. Если эти условия выполняются, то конец титрования характеризуется внезапным уменьшением концентрации титруемого вещества и возрастанием концентрации титрующего реактива. Указанные изменения концентраций вблизи эквивалентной точки имеют величину в несколько порядков и позволяют не только точно указывать конец титрования (например, при помощи индикатора или физико-химического метода), но и графически изображать ход титрования, нанося на одну ось числа эквивалентов прибавленного титрующего реактива, а на другую ось — отрицательный логарифм концентрации катиона рМ. [c.280]

Фактически метод тонкослойной хроматографии был впер-вые применен голландским биологом Бейеринком в 1889 г. [21], который наблюдал диффузию капли смеси соляной и серной кислот по тонкому слою желатины. Соляная кислота переме-щалась быстрее, чем серная, и образовывала кольцо вокруг пятна серной кислоты. Зона соляной кислоты становилась видимой при нанесении на слой раствора нитрата серебра, а зона серной кислоты обнаруживалась при нанесении раствора хлорида бария. Девятью годами позднее Вийсмен [22] с помощью аналогичного метода доказал присутствие двух ферментов в диастазе солода и показал, что только один из них расщепляет мальтозу в растворимом крахмале. Вийсмен первым использовал явление флуоресценции для обнаружения зон на тонком слое. Он ввел живущую в морской воде флуоресцирующую бактерию в слой желатины, содержащей крахмал, и наблюдал диффузию амилазной смеси по слою. Флуоресцирующая полоса появлялась только в том месте, где р-амилаза реагировала с крахмалом. Этот реактив оказался одним из наиболее чувствительных в тонкослойной хроматографии. Вий-смену удалось обнаруживать до 1/28000000 мг мальтозы, т. е. около 40 пг. История этого откры дча№С5 а [23 -— [c.17]

Метод замещения. Первые органогалоидсиланы были получены с помощью органических соединений цинка, ртути или алюминия или по реакции Вюрца с натрием. Киппинг применил для этой цели только что появившийся в то время реактив Гриньяра, оказавшийся наиболее удобным. Одна из реакций этого классического синтеза такова [c.503]

Сырые концентраты готовятся из цельных желез крупного рогатого скота, хотя активное начало содержится только в корковом слое. Первую экстракцию производят ацетоном или спиртом, которые осаждают белковые вещества. Для выделения гормонов используется их относительно большая растворимость в воде, и с помощью различных методов разделения получают водный концентрат, не содержащий жиров . Для удаления кислотных и щелочных примесей можно применять слабые основания или кислоты. Для отделения реакционноспособных кетонов от неактивных кетонов или некетонных веществ Рейхштейн применил реактив Жирара так как кетоны обладают различной реакционной способностью, то для их разделения может быть использовано как образование производных Жирара, так и их гидролиз. Самое эффективное разделение индивидуальных компонентов достигается хроматографическим фракционированием их ацетатов, являющихся более устойчивыми . Обычные методы гидролиза вызывают разложение нестойких гормонов, но гидролиз ацетатов можно с успехом осуществить, действуя на них при 20° водным метанолом, содержащим карбонат или бикарбонат калия . [c.393]

В качестве первого подхода к анализу последовательности Сэнгер использовал реактив динитрофторбензол, который взаимодействует со свободной а-аминогруппой аминокислоты, расположенной на одном из концов полипептидной цепи —так называемом аминоконце, или Н-конце. Реакция с динитрофторбензолом дает сильно окрашенное динитрофениль-ное (ДНФ) производное Ы-концевой аминокислоты (фиг. 41). На другом конце полипептидной цепи, так называемом карбоксильном, или С-конце, расположена аминокислота со свободной а-карбоксильной группой. У всех других аминокислот, входящих в полипептидную цепь, а-амино-группы и а-карбоксильные группы участвуют в пептидных связях и поэтому не являются свободными . После реакции с динитрофторбензолом полипептидную цепь можно подвергнуть полному кислотному гидролизу и получить в свободном виде входящие в нее аминокислоты. Из этих аминокислот с помощью хроматографии легко можно выделить и идентифи- [c.88]

Если глюкоза содержится в реактиве А , а АТР используется как реактив В , то глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа медленно окисляет глюкозу и к концу дня поглощение раствора возрастает. Этого можно избежать, если АТР включить в реактив А и добавить туда глюкозу в последнюю минуту. Следует отметить, что если не используются очень лабильные соединения, то реактив А не следует хранить во льду его температура должна быть близка к температуре, при которой проводится тестирование, чтобы на установление температурного равновесия в кювете уходило меньше времени. Это не относится к периодическим методам, так как в этом случае можно легко провести короткую предынкубацию. Контроль температуры в спектрофотометрах может быть осуществлен с помощью кюве-тодержателя с циркулирующей водой. Этот способ позволяет достаточно точно контролировать температуру, однако следует помнить две вещи. Во-первых, истинная температура в уравновешенной кювете может несколько отличаться от установленной в термостате температуры циркулирующей воды из-за потерь тепла на пути от термостата к кювете. Во-вторых, требуется около 10 мин, чтобы холодный раствор в кювете нагрелся до [c.308]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология