Гидролиз агар-агара

Пектины. Агар-агар. Наряду с клетчаткой в опорных тканях растений встречаются так называемые пектины, которые при гидролизе дают до 83 % галактуроновой кислоты. Пектиновые вещества содержатся в яблоках, смородине, крыжовнике и других плодах. Характерна их способность в присутствии органических кислот образовывать плотные студни с сахарозой, что используется в кондитерской промышленности для приготовления мармелада, желе, пастилы и т. д. Благодаря наличию большого количества галактуроновой кислоты пектины содействуют детоксикации организма (стр. 210) и являются важным фактором в диетпитании. [c.222]

Влияние температуры на кинетику гидролиза этилового эфира Г4-бензоил-Ь-аргиннна, катализируемого трипсином. Условия опыта 2%-ный гель агар-агара pH 5,4 ионная сила [c.256]

В таблице 9 приведена температурная зависимость каталитической константы гидролиза этилового эфира Ы-бензоил-Ь-аргинина, катализируемого трипсином, в 2%-ном геле агар-агара. Вычислить значения стандартных энтальпии и энтропии активации реакции. [c.255]

Полисахариды агар-агара и слизи льняного семени при гидролизе дают как -галактозу, так и рацемат /)/.-галактозу. [c.547]

В качестве ингибиторов часто применяются также органические коллоидные вещества для устранения действия щелочей. Например, агар-агар или гуммиарабик могут снизить скорость растворения алюминия в 10-процентном растворе едкого натра на 80%. Органические соединения, содержащие азот, например триэтиламин, предотвращают действие кислот. Они добавляются в обезжиривающие растворы на основе хлорированных углеводородов, в которых нейтрализуют соляную кислоту, образующуюся в результате гидролиза трихлорэтилена или других растворителей. Акридин, фенилхинолин и другие родственные им соединения предотвращают действие на алюминий ЗЛ соляной кислоты. [c.28]

Это явление было также подробно изучено на примерах агар-агаровых студней разных концентраций [102] и пектина в водном растворе с разными количествами диоксана [ЮЗ]. В этих работах было показано, что набухшее состояние полисахарида, близкое к началу его растворения, создает условия для снижения скорости его гидролиза по сравнению со скоростью гидролиза полисахарида в гомогенном состоянии. Перешедшие в раствор коллоидные мицеллы до их полного распадения на отдельные макромолекулы гидролизуются медленнее, чем в гомогенной среде. Некоторые полисахариды, такие, как слабо растворимые в воде фракции гемицеллюлоз, гидролизуются медленнее, чем те же полисахариды, но перешедшие в раствор. Это указывает на то, что на скорость гидролиза полисахаридов решающее влияние оказывает их надмолекулярная структура. [c.406]

М. Фробишер (1965) описал следующий ускоренный метод выявления гидролиза желатина. Пробирки, содержащие питательный агар с 1 % желатина, засевают большим количеством молодой (4—8-часовой) культуры, ин- [c.209]

При частичном гидролизе агар-агара наряду с другими продуктами получается кислый сульфат полисахарида. В этом соединении присутствуют [305] в связанном виде галактоза (39,5%), иентоза (8,2%), кислый сульфат (около 8%), неидентифициро-ванная гексоза и вещество, дающее реакцию кетозы. Электродиализ продажного агара ведет к образованию агаровой кислоты, имеющей молекулярный вес 3000 или более [306], которая, повидимому, и служит исходным веществом для получения вышеупомянутого соединения. [c.55]

Кинетика гидролиза этилового эфира Ы-ацетил-Ь-тиро-зина, катализируемого а-химотрипсином, иммобилизованным в геле агар-агара, изучалась согласно методике, описанной в предыдущей задаче. Концентрация фермента в геле равна 1-10- М, концентрация субстрата в растворе равна 1-10- м. Коэффициент диффузии субстрата в геле агар-агара в условиях опыта равен 2-10- см7оек. Найти, при какой толщине пластинки геля реакция будет полностью (с ошибкой не более 5%) контролироваться диффузией, если кинетика ферментативного гидролиза в гомогенном [c.274]

Связь между способностью подавлять максимум и степенью гидролиза была установлена и у других полимерных молекул — карбоксиметилцеллюлозы, гуммиарабика, желатины, агар-агара, ксантогената целлюлозы и т. д. [c.227]

Среды, уплотненные агар-агаром, при культивировании бактерий ие изменяют своей консистенции лишь очень немногие бактерии заметно разрушают агар-агар. Среды с желатином разжижаются очень многими бактериями с резко выраженными протеолитическими свойствами. Этот признак всегда используется для характеристики и определения вида бактерий. Определяется гидролиз крахмала. По характеру роста на жидких питательных средах также судят о некоторых свойствах изучаемой культуры. Образование пленки или кольца на стенках пробирки, равномерное помутнение или выпадение хлопьевидных или пылевидных осадков составляют дополнительную характеристику вида. Учитываются максимально физиологические и биохимические признаки окислительно-восстановительные функции, в частности редукция метиленовой сини и нитратов, образование индола, сероводорода, ам.миака, свертывание молока, иептонизация казеинового сгустка, сбраживание сахаров с образованием кислот и газов либо с образованием только кислот. Чем подробнее будет дана характеристика культуры, тем надежнее результаты ее идентификации. [c.53]

Агар-агар (от малайского agar — желе) относится к группе гетерополисахаридов, при гидролизе которых помимо D-галактозы и L-галактозы образуется серная кислота. [c.222]

Рушнак, Фуккер и Кралик [40], изучая реакцию конденсации и кинетику деструкции макромолекулярных веществ, использовали полярографическую методику. Были найдены [41] оптимальные условия использования кислородных максимумов для указанных целей. Эти же авторы опубликовали ряд работ, в которых представлены данные по полярографическому исследованию зависимости между степенью гидролиза крахмала и высотой максимума на полярограмме кислорода. Связь между способностью подавлять максимум и степенью гидролиза была установлена и у других полимерных молекул карб-оксиметилцеллюлозы, гуммиарабика, желатины, агар-агара, ксан-тогената целлюлозы и т. д. Выявлено, что размер молекулы играет основную роль в подавлении максимумов, благодаря чему, по мнению авторов, открывается возможность полярографического определения молекулярных весов полимерных веществ [42, 43]. [c.221]

Ионофорез можно определить как электрический перенос ионов относительно небольших размеров от, очевидно, применим к разделению пептидов [338, 339]. Ионофорез может быть проведен в простом приборе с тремя ячейками. Нейтральный раствор пептида помещают в среднюю ячейку, а два электрода располагают в боковых отделениях, которые заполняют водой или соответствующим раствором соли. Пептиды, суммарный заряд которых положителен, перемещаются по (направлению к катоду, в то время как пептиды, заряд которых является нулевым или очень слабым, остаются в центральной ячейке. Таким образом можно обе группы пептидов разделить и подвергнуть дальнейшему фракционированию. Кислые пептиды стремятся проникнуть в анодное отделение, в котором они обычно подвергаются значительному распаду. Эффективность разделения снижается диффузией и элек-троэндосмотическими явлениями. Результаты ионофореза можно заметно улучшить двумя путями применением дополнительного анодного отделения [340] или стабилизированием фронтов миграции с помощью твердого вещества, пропитанного каким-либо буферным раствором. В последнем случае как на кислотной, так и на щелочной стороне образуется ряд четких границ [341, 342]. Удовлетворительное фракционирование пептидов цистеино-вой кислоты и продуктов неполного гидролиза шерсти было достигнуто на силикагеле [343]. Силикагель можно заменить агар-агаром [344], асбестом [345], стеклянным порошком [346, 347] или бумагой. На бумаге можно осуществлять либо простой Ионофорез [348, 349], либо ионофорез в сочетании с хроматографиче-ским разделением [350, 351]. При надлежащем использовании ионофорез на бумаге является, повидимому, хорошим [c.150]

Агар-агар содержится в красных морских водорослях. При гидролизе агар-агара образуется D-галактоза и серная кислота. Остатки молекул галактозы соединены друг с другом глюкозидными связями. Основной структурной единицей агар-агара является цепочка, состоящая из шести соединенных друг с другом глюкозидными связями остатков галактозы к первичной спиртовой группе галактозиого остатка присоединен остаток серной кислоты—Д-галактоза-0-галактоза-/)-галактоза-Д-галактоза-Б-га-лактоза-0-галактоза-6-сульфат. Молекула агар-агара возникает в результате конденсации большого количества структурных единиц (до 140). [c.76]

Ферментативная активность. При изучении биохимических особенностей культуры определяют активность протеиназ по разжижению желатины (скорость и характер разжижения при уколе столбика желатины, рис. 12) свертывание и пептонизацию молока (отмечается кислотное свертывание по покраснению синей лакмусовой бумаги с образованием устойчивого сгустка и коагуляции с последующей пептонизацией), а также пептонизацию без предварительного свертывания и скорость изменения молока активность амилазы по величине зоны гидролиза крахмала (проба с раствором Люголя на 3—4-е сутки посева культуры штрихом на крахмалоаммиачном агаре) активность целлюлозы по степени распада клетчатки на среде Гетчинсона активность р-фруктофуранозидазы (инвертазы) по гидролизу сахарозы (с помощью реактива Фелинга ) активность уреа-зы по накоплению аммиака (используется реактив Нес-слера), нитратредуктазы по восстановлению нитрата (на среде Гильтая) до нитрита (нитрит проверяют в кислой среде реактивом цинк-йод-крахмалом). [c.82]

Активность амилазы определяют по величине зоны гидролиза крахмала, для этого делают пробы с раствором Люголя на третьи-четвертые сутки после посева культуры на крахмалоаммиачном агар-агаре. Активность целлюлазы устанавливают по степени распада целлюлозы на среде Гетчинсона активность р-фруктофуранозидазы (инверта-зы) - по гидролизу сахарозы при действии реактива Фелинга (щелочной раствор оксида меди), который окисляет альдегидные соединения, при этом оксид меди переходит в закись - появляется красный осадок. Активность уреазы определяют по накоплению аммиака, используя реактив Несслера нитратредуктазы по восстановлению нитрата на среде Гильтая до нитрита (нитрит устанавливают в кислой среде реактивом цинк-йод-крахмал). [c.61]

Выбирая режим стерилизации, учитывают pH среды. В случае кислой реакции среды при стерилизации могут подвергнуться гидролизу входящие в ее состав полимеры. Hpji pH ниже 5,0 частично гидролизуется и теряет способность образовывать гель агар-агар. Если среда щелочная, то при стерилизации выпадают в осадок соли железа, карамелизуются и становятся недоступными для микроорганизмов сахара. Чтобы избежать этих явлении, среды стерилизуют при нейтральных значениях pH, а после стерилизации подкисляют яли подщелачивают. Кроме того, растворы ряда компонентов можно стерилизовать. отдельно при таком режиме, при котором они не изменяются, а затем стерильно добавлять в среды в необходимом ко-Л11чсстве. [c.318]

Нек-рые линейные регулярные гомополисахариды (целлюлоза, хитин, маннаны) не раств. в воде из-за прочной межмол. ассоциации более сложные, особенно разветвл. П. (гликоген, декстраны), раств. в воде или склонны к образованию гелей (агар, альгиновые кислоты, пектины). Гидроксильные группы П. алкилируются, ацилируются, окисляются. Кислотный гидролиз приводит к полному или частичному расщеплению гликозидных связей и образованию моно- или олигосахарндов. [c.466]

Установлено, что агар является смесью полисахаридов агарозы и агаропектина отличающихся по содержанию сульфатных групп и некоторым другим показателям детальное строение агаропектина еще не выяснено. 1 лавный компонент смеси — агароза — построен из D-галактозы и 3,б-ангидро-/.-галактозы методом метилирования установлено, что остатки D-галактопиранозы замещены в положении 3, а остатки 3,б-ангидро-/--галактозы — в положении 4. При мягком кислотном гидролизе агароза с высоким выходом превращается в дисахарид агаро-биозу 11, а при ферментативном — в неоагаро иозу 111, что окончательна доказывает положение и конфигурацию гликозидных связей и свидетельствует о высокой регулярности строения агарозы [c.537]

Желчно-эскулиновый тест проводят для оценки способности микроорганизмов гидролизовать эскулин в присутствии 40 % желчи. Культуру засевают на желчно-эскулиновый агар в чашке или пробирке (на скошенную часть) и инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С. Энтерококки гидролизуют эскулин до глюкозы и эскулетина, который реагирует с цитратом железа, входящим в состав среды, в результате чего образуется коричнево-черный преципитат. При отрицательной реакции цвет среды не меняется. [c.116]

Выделение диэтилтиоацеталей 3,6-ангидро-Л-галактозы и дисахарида 4-0-(Р-2)-галактопиранозил)-3,6-апгидро- -галактозы при частичном маркаптолизе агара [88] иллюстрирует ценность данной методики, так как остатки 3,6-ангидрогалактозы очень легко разрушаются в обычных условиях кислотного гидролиза [42]. [c.305]

МИ И об ИХ первичном воздействии на нее мало что известно. У них не удалось обнаружить ни внеклеточной целлюлазы, ни каких-либо продуктов расщепления целлюлозы. Клетки этих бактерий тесно прилегают к волокнам целлюлозы, располагаясь параллельно оси волокна. По-видимому, они гидролизуют целлюлозу лишь при тесном контакте с волокном, и продукты гидролиза тотчас же поглощаются. На агаре с целлюлозой колонии ytophaga никогда не бывают окружены прозрачной зоной, в которой находились бы продукты ферментативного расщепления целлюлозы. [c.405]

Одним из доказательств строения агарозы является мягкий кислотный гидролиз, дающий агаробиозу I при ферментативном гидролизе, расщепляющем избирательно Р-1,4-связи, образуется неоагаробиоза 11. Ряд других методов подтверждает приведенную выше структуру агарозы. Сульфатные остатки содержатся в агарозе в небольших количествах. В агаре агароза присутствует в смеси с другим полисахаридом агаропектином. [c.147]

Слизи, которые похожи на камеди, представляют собой несколько менее определенную группу углеводов, С водой они образуют слизистую жидкость при гидролизе распадаются на углеводы и вещества неуглеводного характера. Обычные слизи, хондрус и агар, при гидролизе дают углевод, сульфат кальция и серную кислоту. [c.198]

Синге и Тизелиус [15] впервые наблюдали эффект молекулярного сита в гелях при фракционировании продуктов гидролиза амилозы в агар-агаровом геле. Для детального исследования механизма молекулярного сита Лейт и Ратвен [16] использовали зерна крахмала. Они нашли, что белки не проникают в обычный гидратированный [c.218]

Вопрос об условиях образования 3,6-ангидрогалактозы пока еще не выяснен. Известно, что сернокислые эфиры сахаров склонны к образованию ангидропродуктов при действии гидролизующих реагентов, поэтому вполне вероятно, что ангидропроизводные являются вторичными продуктами, образующимися прл отщеплении групп ОЗОзН в процессе метилирования. Одиако количество 2-метил-3,б-ангидрогалактозы, образующейся при гидролизе метилированного эфира, больше, чем число звеньев галактозы, этерифицированных серной кислотой это указывает на пр ь сутствие 3,6-ангидроцикла в макромолекуле агара [c.542]

На DEAE-сефадексе А-50 можно фракционировать заряженные полисахариды например, агары, различающиеся содержанием пируватных и сульфатных групп, были разделены на этом ионообменнике в хлоридной форме при ступенчатом элюировании водой и растворами с возрастающей (от 0,5 до 3 М) концентрацией хлорида натрия [105]. Олигогалактуроновые кислоты (СП 2—9), образующиеся при ферментативном гидролизе пектовой кислоты, были выделены в относительно больших количествах хроматографированием гидролизата на том же самом ионообменнике (элюирование водой с pH 6,0 и далее 0,05— 0,275 М растворами хлорида натрия в 9 ступеней) [106]. [c.26]

А — активность I мл исходного раствора до гидролиза, определенная методом диффузии в агар с тест-микробом Staphylo o us aureus 209-Р (стр. 943) [c.386]

Для выделения микоплазм из дыхательных путей к Е-агару (разд. 8.5.17) и Е-бульону (разд. 8.5.18) добавляют ацетат таллия в концентрации 0,032%. Экстракты проб тампоном переносят в жидкую среду (2 мл), содержащую соевую муку и гидролизах казеина (разд. 8.5.45) и 0,5% бычьего сывороточного альбумина. 0,1 мл суспензии инокулируют в двухфазную среду Е (разд. 8.5.17), а также в чашки с агаром, приготовленным на среде Е. Культуру выращивают в аэробных условиях при 37 °С, поместив чашки в закрытые контейнеры. В течение 30 дней с помощью препаровальной лупы (Х20—60) следят за появлением мелких колоний (10— 100 мкм в диаметре), напоминающих яичницу-глазунью. В случае двухфазной культуры наблюдают в микроскоп через боковую стенку пробирки, стараясь обнаружить так называемые сферулы , т. е. колонии в жидкой среде. Контролируют также подкисление среды, сопровождающееся пожелтением индикаторного красителя фенолового красного. Для получения отдельных колоний содержимое двухфазной среды инокулируют в чашки с агаром Е. [c.298]

Морские микроорганизмы С. fermentans и С. salmoni olor, являющиеся факультативными анаэробами, способны гидролизовать и сбраживать агар. Эту особенность используют для получения их накопительных [c.309]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология