Ткани для электронной микроскопии

ИЛИ биохимической реакции выпадает в осадок в виде тяжелого металла, такого, как соли свинца, урана или висмута. Большинство окрашивающих и гистохимических методов, которые используются в РЭМ, является модификацией методов, используемых в оптической и просвечивающей электронной микроскопии, и читателю рекомендуется просмотреть эти источники для выявления методик, которые можно приспособить для растровой электронной микроскопии. Метод авторадиографии может быть использован для локализации областей со специфической физиологической активностью, в то время как проявленные зерна серебра можно отобразить в режиме отраженных электронов. В работе [357] ири изучении клеточного цикла культуры тканей с успехом использовались в совокупности оптический микроскоп, метод авторадиографии и РЭМ. Обзор этих методов представлен в работе [358]. [c.244]

Исследования с помош ью электронного микроскопа. Исследования с помощью электронного микроскопа выявляют тонкие, субмикроскопические изменения в различных тканях и клетках. Все, что до сих пор описывалось под названием дистрофических, дегенеративных и других изменений, обнаруживаемых с помощью светового микроскопа, приобретает при этом методе исследования уже конкретное содержание. Под влиянием различных химических и физических факто- [c.140]

В сочетании с разнообразными методами приготовления и окрашивания тканей электронная микроскопия позволила выявить много важных деталей в строении мембран. На приведенных ниже фотографиях видны три разных изображения плазматической мембраны эритроцита, полученные при электронной микроскопии препаратов, приготовленных тремя различными методами. [c.343]

Экспресс-диагностика. Для экспресс-диагностики герпетической инфекции используют электронную микроскопию, РИФ, ИФА. Они позволяют выявить вирусные частицы с характерной морфологией или вирусспецифический антиген (см. цв. вклейку, рис. 26). Вирионы обнаруживают в содержимом везикул, в ядрах клеток мозговой ткани, реже в жидкой фракции растертых в дистиллированной воде корочек, в смывах, мазках-отпечатках, полученных с высыпаний на коже. [c.283]

В настоящее время имеется много надежных биохимических и механических методов, которые дают возможность изолировать отдельные клетки и органеллы. Эти методы не будут обсуждаться, но будет рассмотрено, как такие клетки и фрагменты тканей можно изучать в рентгеновском микроанализаторе. В качестве примера плодотворного исследования одиночной клетки служит рис. 12.2, на котором представлены результаты исследований и анализа клеток спермы человека в электронном микроскопе-микроанализаторе [208]. В некоторых отношениях изолированные клетки и органеллы, толщина которых составляет всего лишь несколько микрон, можно рассматривать как самостоятельный объект исследования, но их чрезвычайная мягкость и высокое содержание воды налагают серьезные ограничения на возможные используемые способы препарирования. В зависимости от их размера изолированные клетки и органеллы, а по этой причине неорганические материалы в виде частиц для аналитических целей могут рассматриваться либо как массивные образцы, либо как срезы. Некоторые примеры препарирования изолированных клеток приведены в недавно опубликованных работах [392, 393]. [c.271]

В общем задержка по времени при получении кусочка ткани илн клеток нз экспериментального организма должна быть минимальной. Имеется достаточно сведений о морфологических эффектах аноксии, стресса и посмертных изменений, чтобы предположить, что, по-видимому, также изменяются локальные концентрации элементов. Необходимо предпринимать также меры предосторожности при удалении всех загрязняющих организм жидкостей, таких, как кровь, слизь, межклеточные жидкости, которые могут собираться в организме и привести к возникновению ложных сигналов рентгеновского излучения. Подробности необходимых процедур приведены в гл. 11 по препарированию образцов для растровой электронной микроскопии. [c.275]

Первые электронные микроскопы появились в продаже в 1939 г. и с тех пор стали одним из важнейших приборов, применяющихся при изучении биологии клетки. Обладая разрешением 0,4 нм, электронный микроскоп позволяет увидеть молекулы белков и нуклеиновых кислот, а также детали строения клеточных органелл. Еще более широко электронный микроскоп стал использоваться с 1950 г., когда были сконструированы микротомы и ножи, позволяющие делать ультратонкие (20—200 нм) срезы тканей, предварительно залитых в пластмассу. [c.19]

Рис. 3. Микрофотографии, полученные с помощью сканирующего электронного микроскопа, целлюлозных тканей — исходной (а) и разрушенной (б) при испытаниях на двойные изгибы.

Для исследования препаратов в электронном микроскопе вместо предметных стекол применяются специальные пленки, незначительно поглощающие электроны. Они крепятся на опорные сетки. Материалом для приготовления пленок служат коллодий, окись алюминия и кварц. Тщательно очищенный от различных примесей и нанесенный на пленку исследуемый материал после испарения жидкости оставляет на ней тончайший слой, который и подлежит микроскопии. В электронном микроскопе можно также исследовать срезы тканей, клеток, микроорганизмов, полученные с помощью ультрамикротома. Препараты контрастируют с помощью электронно-плотных (задерживающих электроны) веществ, используя разные методы напыление тяжелых металлов, обработка фосфорно-вольфрамовой кислотой, уранилацета-том, солями осмиевой кислоты и др. [c.11]

В электронном микроскопе вместо светового излучения используется пучок ускоренных электронов. Изображение изучаемого объекта наблюдается на флуоресцентном экране или фиксируется фотографическим способом. Увеличение в электронном микроскопе примерно на два порядка выше, чем у оптических микроскопов, и достигает 10 . . 10. Разрешающая способность в зависимости от техники исследования может составлять от 6... 10 нм до 0,2.. 0,5 нм. Это позволяет изучать разнообразные надмолекулярные образования у синтетических полимеров, фибриллярную структуру целлюлозосодержащих клеточных стенок древесины и других растительных тканей, ультраструктуру волокнистых полуфабрикатов целлюлозно-бумажного производства. [c.144]

Белки мышц. Мышцы позвоночных содержат 15—20% белков. Последние подразделяются на нерастворимые белки, выполняющие функцию опорной ткани, и растворимые белки, некоторые из которых выполняют сократительную, а другие — ферментативную функции. В результате исследований при помощи электронного микроскопа установлено, что мышечная фибрилла имеет форму трубки диаметром [c.444]

Вирус выявляют в препаратах мозга с помощью электронной микроскопии. Вирусный антиген в мозговой ткани, отпечатках под- [c.306]

В то же время вирусы животных — вирусы, которые растут на тканях животных,— имеют, как это можно видеть в электронном микроскопе, вполне определенную структуру. Эти вирусы, как правило, крупнее, чем вирусы растений, их молекулярный вес порядка 1 ООО ООО ООО. Вирус коровьей оспы (используемый при прививке оспы) имеет, как показано при помощи электронного микроскопа, форму прямоугольного параллелепипеда, внутри которого находятся круглые частицы вещества, поглощающего пучок электронов сильнее, чем остальное вещество. [c.479]

Рис. 24-16. Фотография клеток жировой ткани (адипоцитов), полученная при помощи сканирующего электронного микроскопа. Адипоциты окружены в жировой ткани поддерживающей сетью, состоящей из кровеносных капилляров и коллагеновых волокон. Адипоциты заполнены капельками жира, активно участвующего в обмене веществ.

Уже с начала сороковых годов неоднократно предпринимались попытки применить микротомы для получения достаточно тонких срезов препаратов, пригодных для изучения в электронном микроскопе. Предложенные вначале различные варианты конструкций микротомов, в том числе основанные на быстром вращении ножа, оказались недостаточно эффективными. Удовлетворительные модели ультрамикротомов, позволившие получать срезы толщиной в сотые доли микрона благодаря регулируемой термической подаче объекта, были разработаны в 1953 г. [149—151]. С тех пор метод ультратонких срезов получил широкое распространение в биологии, так как появилась возможность исследовать массивные ткани. В каждом типе ткани были обнаружены сложные мембраны, каналы и частицы в области величин, начиная от макроструктур и вплоть до предела разрешения. Выло показано, что жизненные процессы в клетке зависят от этой сложной структуры. В последнее время ультрамикротомы начинают все чаще при- [c.116]

На рис. 2.13 и 2.14 воспроизведены два снимка, полученные при помощи электронного микроскопа. На них показаны молекулы вируса, вызывающего заболевание томатных растений. Диаметр каждой такой молекулы вируса кустистой карликовости равен приблизительно 23 нм. Молекула этого вируса состоит примерно из 750000 атомов. Молекулы вируса некрии (отмирания тканей) несколько меньше — их диаметр достигает примерно 19,5 нм. На обеих фотографиях ясно вид ны отдельные молекулы. [c.41]

Применение. В электронной микроскопии в качестве фиксатора ткани [1—31i [c.103]

Приведенные примеры иллюстрируют трудности независимого использования отдельных подходов для исследования биогенного ферримагнетизма и показывают необходимость детального обсуждения основных методов, которые могут применяться в данной области. В этой части книги рассмотрены принципы и применение сквид-магнито-метрии, методов экстракции магнетита из тканей, электронной микроскопии биогенных минералов, а также устройство экранированных лабораторий. Впервые описания всех этих подходов собраны воедино. В четвертой части рассмотрены мессбауэровская спектроскопия и различные модификации электронной микроскопии. Мы надеемся, что все эти материалы, и в особенности те из них, которые представлены во второй части книги, будут интересны не только биомагнитологам, но и геофизикам. [c.146]

И. Л. Горелова и Т. Ю. Любимова [142] методом растровой электронной микроскопии установили, что дисперсность кристаллизационной структуры цементного камня после достижения максимальных значений в период до одних суток уменьшается к трем суткам, вследствие роста отдельных волокнистых кристаллов гидросиликатов, в дальнейшем — за счет взаимного переплетения кристаллов, способных огибать препятствия, создавать объемную ткань и полностью срастаться с исчезновением межкристалличе-ских границ. Образование однородных, плотных участков структуры, постепенно сливающихся друг с другом, является завершающей стадией формирования микроструктуры цементного камня. [c.168]

Актуальным является изучение механизма оссификации. Процесс минерализации возможен лишь при наличии строго ориентированных коллагеновых волокон. Как было отмечено, непосредственное образование кол-лагенового волокна происходит во внеклеточном пространстве в результате специфического соединения между собой тропоколлагеновых молекул. С помощью рентгеноструктурного анализа и электронной микроскопии показано, что коллагеновое волокно имеет поперечную исчерченность с интервалом 68 нм. Следовательно, период повторяемости структуры (исчерченности) коллагенового волокна в несколько раз меньше, чем длина составляющих волокно молекул тропоколлагена. Это доказывает, что ряды молекул тропоколлагена располжены не точно друг над другом. Иными словами, один ряд тропоколлагенов смещен по отношению к соседнему ряду примерно на /4 длины молекулы. В результате основу структурной организации коллагенового волокна составляют сдвинутые на четверть ступенчато расположенные параллельные ряды тропоколлагеновых молекул. Структурная особенность коллагенового волокна состоит также и в том, что расположенные в ряду молекулы тропоколлагена не связаны по типу конец в конец. Между концом одной молекулы и началом следующей имеется промежуток. Этот промежуток играет особую роль при формировании кости. Вполне вероятно, что промежутки вдоль ряда молекул тропоколлагена являются первоначальными центрами отложения минеральных составных частей костной ткани. [c.675]

Биохимических исследований структуры и механизма действия электрических синапсов до сих пор не проводилось. Однако щелевыми контактами связаны не только нервные клетки, но также и клетки печени, эпителия, мышц и многих других тканей. Из них удалось выделить и охарактеризовать биохимическими методами и электронной микроскопией мембранные фрагменты, которые определенно сохраняли зоны межклеточных контактов. Электронные микрофотографии показывают упорядоченные структуры частиц, которые Гудинаф назвал коннексонами [1] и которые образуют каналы между клетками, отстоящими друг от друга на 2 нм. Из этих мембран были выделены два полипептида с М 25 000 и 35 000, названные коннексинами. Возможно, что два коннексона соседних клеток посредством дпме-ризации могут образовать канал (рис. 8.1). Показано, что этот канал пропускает не только ионы щелочных металлов, но п молекулы с М 1000—2000. Таким образом, коннексоны, кроме электрического сопряжения, обеспечивают для клеток возможность обмена метаболитами. Проницаемость таких каналов могут регулировать ионы кальция. [c.189]

В тканях человека и других животных, а также в зеленых растениях и грибах значительная часть железа находится в форме ферритина, красновато-коричневого водорастворимого белка . Ферритин представляет собой резервную форму Fe(lII) в растворимом и нетоксичном состоянии, легко пригодном для использования. Ферритин — несколько необычный белок. Содержание железа в ферритине составляет 17—23%, причем оно находится в виде расположенной в центре плотной массы гидратированной гидроокиси железа (III), заполняющей пространство диаметром 7 нм. Эта масса окружена белковой оболочкой из 24 субъединиц, распол( женных в соответствии с кубической симметрией, во многом аналогично тому, как это показано на рис. 8-17. Внешний диаметр частицы составляет 12 нм. Молекулярный вес апоферритина равен 445 ООО, а каждая субъединица имеет молекулярный вес 18 500. Полностью заполненная (до 23% Ре) молекула ферритина содержит свыше 2000 атомов железа, упакованных почти как в кристаллической решетке. Сердцевина молекулы легко различима в электронном микроскопе, н в микроскопии ферритин часто используют как своеобразный маркер. Другая резервная форма железа, гемосидерин, по-видимому, состоит из молекул ферритина вместе с добавоч- [c.126]

Многие из фиксаторов, используемых для растровой электронной микроскопии, были заимствованы из просвечивающей электронной микроскопии. Однако имеется много важных принципиальных моментов, которые нужно иметь в виду при выборе фиксатора. Если исследователь собирается изучать естественную поверхность объекта или ткани или поверхность, которая была открыта и очищалась перед фиксацией, тогда важно, чтобы фиксирующий раствор был приблизительно изотоническим жидкостям клетки или ткани. В данном контексте термин фиксирующий раствор относится ко всем другим компонентам, нежели сам фиксатор. Он включает компоненты водного буфера, компенсирующие ионы, электролиты и неэлектролиты, такие, как сахароза. В работе [330] показано, что осмотичность фиксирующего раствора также важна при получении удовлетворительной фиксации, как и реальная концентрация фиксатора. Если образец или блок ткани после фиксации должен разрезаться или разламываться, то фиксирующий раствор должен быть гипертоническим. Время фиксации в первом случае обычно может быть достаточно коротким, но во втором случае оно должно быть достаточно продолжительным, чтобы фиксатор мог проникнуть в центр образца. Более продолжительные вре- [c.228]

Срезы тканей могут быть изготовлены с помощью стандартных методик, используемых в обычной оптической и просвечивающей электронной микроскопии, и рассмотрены в РЭМ либо в режиме на просвет, либо на отражение. Одно из преимуществ РЭМ состоит в том, что в просвечивающем режиме в нем при данном ускоряющем напряжении можно исследовать срезы в 20 раз большей толщины, хотя и с несколько худшим разрешением. На срезах, исследованных в релшме на отражение, обнаруживается больше деталей, если перед исследованием удаляется заливочная среда и обнажается биологический материал. В случае тонких срезов (20—200 нм) материал подвергается фиксации, обезвоживанию и залив е в одну из эпоксидных [c.231]

Каждый акт заключительной фиксации, когда образец в течение пары часов находится в четырехокиси осмия, повышает содержание тял<елого металла в образце. Как указывалось ранее, полезно также разделить на блоки окрашенные образцы после фиксации солями таких тяжелых металлов, как свинец, висмут, уран и т. д. Свойства блоков тканей или больших образцов, оказывающие влияние на формирование изображения, улучшаются, если поместить эти блоки или образцы на 2 ч в свежеприготовленный насыщенный раствор уранилацетата при комнатной температуре. Перед обезвоживанием блоки тщательно промываются в дистиллированной воде и могут быть использованы как для просвечивающей, так и растровой электронной микроскопии. [c.256]

Как указывалось ранее, биолог должен выбрать компромисс между свойствами образца и условиями, в которых должен проводиться анализ. Оказывается, компромисс за счет рабочих характеристик приборов дает малый выигрыш, и это означает, что мы должны внимательно рассматривать способы препарирования биологического материала. Большая часть разработанных процедур основывается на методах, используемых в просве-чиваюш,ей электронной микроскопии. Это неоптимальное наследие, так как просвечивающая электронная микроскопия полагается на адекватную сохранность макромолекул, в то время как в рентгеновском микроанализаторе определяются элементы и он, таким образом, лучше всего подходит для анализа неорганических материалов. Тщательные исследования, проведенные в работе [184], показывают, что на всех этапах стандартных гистологических методов имеют место огромная потеря и перераспределение почти всех элементов. Потеря вещества также далеко неоднородна, например, большое количество калия удаляется, а количество удаляемого фосфора различно и зависит от строения ткани. Концентрации элементов, которые могут быть введены в ткань в процессе препарирования, должны быть одинаковы. Методы препарирования при рассмотрении делятся на две группы (проводимые при обычной температуре и проводимые при низкой температуре) и представлены в поряде проведения процедуры препарирования от лживого объекта до образца, исследуемого внутри рентгеновского микроанализатора. Мы кратко обсудим высокотемпературный метод препарирования — микроозоление . Для достижения необходимого представления о состоянии и перспективе методов препарирования мы в первую очередь рассмотрим виды аналитических исследований в применении к биологическим системам, типы исследуемых образцов, а также стратегию и критерии препарирования. [c.267]

Криобиологические методики приобретают возрастающее значение в рентгеновских аналитических исследованиях биологических объектов. Они, вероятно, являются единственным способом, когда можно надеяться проанализировать растворенные ионы и элементы. Криофиксация является целиком физическим процессом и создает значительное механическое напряжение на иную мягкую биологическую ткань. Превращение воды из жидкого в твердое состояние останавливает физиологические процессы и сильно уменьшает движение растворенных веществ. Вероятно, это единственная процедура, в результате которой биологическая ткань сохраняется в почти естественном состоянии. Дополнительные преимущества, которые имеют место при работе с образцами при низкой температуре, заключаются в заметном уменьшении скорости загрязнений и уменьшении теплового повреждения образца под электронным пучком. В работе [277] сделан обзор некоторых низкотемпературных методик, используемых в растровой электронной микроскопии многие из которых пригодны для рентгеновского микроанализа. Необходимо также сделать ссылки на обзоры [427, 201] и книги [387, 320, 388, 205], каждая из которых содержит много статей, описывающих низкотемпературные методики. Теперь криобиологические процедуры будут рассмотрены в порядке их применения в процессе препарирования. [c.287]

Рис. 12.7, Замороженные а гидратированном состоянии и высушенные методом лиофильиой сушки срезы ткани корня Lemna, залитого полимерными криопротектантами, нарезанные при температуре 200 К и исследованные при 113 К на столике с охлаждением растрового электронного микроскопа.

Чтобы изучить образование белков в динамике и установить, например, изменения белковых структур в процессе их хранения, можно ввести в органы или ткани предшественник белка, меченный тритием или углеродом " С, и с помощью радиоавтографии выявлять радиоактивные соединения. При световой и электронной микроскопии биологический материал обрабатывают с таким расчетом, чтобы получить тонкие или сверхтонкие срезы, которые затем покрывают подвижной ядерной эмульсией, как, например, эмульсия Ильфорсд Г5 или Л4 (1Иог5с1 Оз или Ь4) по методу Ларра и Дроза [52]. После удаления эмульсии местонахождение радиоактивных участков определяется по присутствию зерен восстановленного серебра, которые задерживают фотоны или электроны. - [c.128]

Исследование состава полисахаридов в сформировавшихся клеточных стенках дает основание судить о содержании и расиреде-лении ГМЦ в клеточных стенках лигнифицированных тканей. Оиределение расиределения ГМЦ в радиальном наиравлении клеточной стенки является трудной задачей и решается обычно только совместно с изучением распределения лигнина и целлюлоз, количество которых легче определить, применяя современные методы исследований. К исследованию расиределения лигнина в клеточной стенке привлекаются специфические цитохимические реакции, УФ- и электронная микроскопия [[8, 36, 37, 40]. Расиределение лигнина в клетке исследовано также под микроскопом иосле удаления полисахаридов клеточной стенки и получения лигнинных скелетов . Распределение лигнина в клеточной стенке древесины исследовали Асунма и Ланге, Фрей, Вергин и Фергус и др. (цит. по [8]). Они пришли к выводу, что доля лигнина в срединной пластинке (М) и первичной оболочке Р) древесины составляет 60—90%. В районе вторичной стенки лигнин распределен равномерно, и вблизи люмена содержание его составляет 12—20% [36, 46], [c.40]

Рис. 4. Микрофотографии, полученные с помощью сканирующего электронного микроскопа, тканей из сополимеров целлюлозы, акрилонитрила и бутилме-такрилата — исходной (а) и разрушенной (б) при испытаниях на двойные изгибы.

На тонких срезах многих биологических объектов наблюдаются системы рядов, образованных стопками параллельных арок (рис. 11 и 12). Эти серии дугообразных линий особенно ясно видны в тонких срезах наружных покровов ракообразных. Мы можем, например, для этих целей воспользоваться панцирем краба Сагстиз таепаз). Он состоит из органической матрицы, построенной в основном из белков и хитина — линейного полимера аце-тилглюкозамина — и минералов (главным образом кальцита). Органическую матрицу можно исследовать либо после удаления минеральной части (растворение кальцита в кислоте, ЭДТА и т. д.), либо до наступления минерализации — сразу же после одной из линек, многократно повторяющихся на протяжении жизни этих животных. Арочная структура часто видна и в оптическом микроскопе, но гораздо лучше разрешается с помощью классического просвечивающего электронного микроскопа [70]. Много удивительно похожих черт арочной конфигурации мы находим в самых различных биологических материалах, весьма далеких от покровов ракообразных. Так, аналогичной структурой обладает панцирь насекомых. Во многих местах срезов костных тканей наблюдаются арочные построения. Многие другие оболочки, различные соединительные ткани и клеточные стенки некоторых растений обнаруживают сходную арочную организацию (см. литературу к статье [c.290]

Для сохранения структуры оводненных образцов предложен также метод критической точки . Он основан на том хорошо известном факте, что если, нанример, гидрогель кремнеки-слоты поместить в автоклав, нагреть выше критической температуры воды и затем удалить газ, то полученный так называемый аэросиликагель сохраняет очень рыхлую структуру оводненного геля (нри обезвоживании гидрогеля в обычных условиях получаются силикагели с плотной упаковкой частиц). Этот способ в электронной микроскопии также применяется почти исключительно для изучения биологических препаратов. Но так как критическая температура воды составляет 374°, а нагревание биологических препаратов до этой температуры является нежелательным, то Андерсон [43, 44] предложил последовательно заменять в них воду на спирт, амилацетат и жидкую двуокись углерода, после чего нагревать препараты в закрытом сосуде выше 31°— критической температуры двуокиси углерода. Этот оригинальный способ позволяет получить высушенные биологические объекты, хорошо сохранившие свой внешний вид, но в некоторых случаях смена жидкостей внутри тканей приводит к деформации их внутренней структуры. [c.78]

Методы определения. Определение в организме может иметь экспертное значение, например в сомнительных случаях связи злокачественных новообразований с воздействием А. Для посмертного исследования ЕЬгепгекЬ е а1. рекомендуют оптическую электронную микроскопию срезов и сподограмм срезов легких. Распознавание А. в ткани затруднено тем, что с годами происходит фрагментация волокон. [c.386]

Вейсбейн и Ковен [163] недавно описали прямой способ установления связи между субмикроскопическими размерами частиц и устойчивостью окраски тканей на свету. Вискозные пленки, содержащие водорастворимые красители, исследовались с помощью электронного микроскопа. Из девяти изученных красителей два оказались неагрегированными (предел разрешения прибора составлял 30 А). Будучи нанесенными на искусственный шелк, эти два красителя имеют гораздо меньшую устойчивость по отношению к свету по сравнению с остальными семью агрегированными красителями. Работа, однако, еще не доведена до стадии изучения систем с тем же красителем, но различными размерами частиц. [c.314]

Если из тканей, которые активно синтезируют белок, например из поджелудочной железы, осторожно выделить рибосомы, они часто оказываются собранными в группы, состоящие из нескольких или из многих рибосом, число которых иногда доходит до 80 и даже больше. Такие скопления, названные полирибосомами, или полисомами, были изучены с помощью электронного микроскопа и химическим путем. Под действием рибонуклеазы полирибосомы разобщаются на индивидуальные рибосомы. Это указывает на то, что они удерживаются с помощью цепи РНК. Действительно, цепь, соединяющую соседние рибосомы, можно увидеть на электронных микрофотографиях (рис. 29-18). Она является не чем иным, как мРНК, которая одновременно транслируется многими рибосомами, расположенными довольно близко друг к другу (рис. 29-18). Такая одновременная трансляция одной мРНК многими рибосомами значительно увеличивает эффективность использования матрицы. [c.942]

Новый период в развитии наших знаний об обмене белков и связанных с ними веществ в живых организмах начался в последние 15 лет, после того как в биохимических исследованиях стали щироко применять новейшие физические, химические и физико-химические методы. Метод меченых атомов, электронная микроскопия, дифференциальное центрифугирование, хромаго-фия, электрофорез и многие другие методы позволили биохимикам перейти от изучения процессов обмена в отдельных органах и тканях организма к исследованию этих процессов в клетке и даже взаимодействию между молекулами, получить многие новые данные об обмене веществ и преж де всего обмене белков и связанных с ними нуклеиновых кислотах. [c.286]

Применение. В качестве гистохимического реактива для выявления гиалу-роновой кислоты [Пирс 539—545] в электронной микроскопии для предварительной обработки тканей, трудно фиксирующихся осмиевой кислотой [1], [c.99]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология