Тритон Х разделение

Рис. 10.3 показывает разделение другого поверхностно-активного вещества тритон Х-45 на поверхностно-пористых насадках (корасил II). В этом случае пики были разрещены менее чем за 10 мин, причем первые четыре пика — менее чем за 5 мин. Хотя общая проблема элюирования все еще существует, на насадке с твердым ядром она проявляется не так резко, как с большими частицами пористого носителя, о которых говорилось ранее. Сравнение характеристик разделения, полученных на двух насадках [c.253]

Разделение тритона Х-45 и Х-100 методом гель-проникающей хроматографии высокого разрешения показано на рис. 7.4 (гл. 7). Это разделение было проведено на очень длинной колонке (5 м), [c.254]

Рис. 11.2. Разделение компонентов тритона Х-100 (детергент на основе ноли-

Традиционные методы извлечения каротиноидов из природных объектов состоят в гомогенизировании биомассы при охлаждении (процесс проводят обычно в, присутствии антиоксидантов в темноте), извлечении пигментов полярными растворителями, например ацетоном или метанолом. Далее каротиноиды переводят в неполярные растворители — гексан или петролейный эфир. Индивидуальные пигменты получают путем хроматографирования в тонком слое адсорбента (силикагель, алюминий). При использовании последнего сорбента разделение каротиноидов целесообразнее проводить в системе растворителей, содержащей различное количество гексана и ацетона. При разделении ксантофиллов перед тонкослойной хроматографией иа силикагеле проводят предварительный щелочной метанолиз. Если каротиноиды связаны с белками, то для их извлечения используют детергенты, например тритон Х-100 (2%) или додецилсульфат натрия (1%). [c.312]

При электрофорезе в первом направлении для улучшения растворимости белков нередко вводят неионный детергент, например 1%-ный раствор Тритона Х-100. Можно вести электрофорез в агарозе и в присутствии ДДС-Na (также только в интересах растворимости, ведь разделение белков по размерам в геле агарозы производить не целесообразно). ДДС-Na при перекрестном иммуноэлектрофорезе под действием поля может переходить в слой агарозы, смешанной с антисывороткой. Этого следует избегать, так как уже упоминалось, что ДДС-Na мешает образованию иммунного комплекса антиген — антитело. В этом случае гель первого направления предварительно вымачивают в буфере, содержащем избыток Тритона Х-100, а иногда его вводят и в состав геля агарозы с антисывороткой. Тритон Х-100 вытесняет ДДС-Na из комплекса с белком й образует с ним смешанные мицеллы, не препятствующие иммунопреципитации. [c.149]

Жидкие вещества, как правило, можно вводить в реакцию с акрилони рилом без растворителя, учитывая, что акрилонитрил хорошо смешивается с различными органическими соединениями, Применение растворителей может быть рекомендовано в тех случаях, когда желают ослабить слишком энергичное течение реакции или облегчить разделение смеси продуктов цианэтилирования. В качестве нейтральных растворителей можно применять бензол диоксан пиридин ацетонитрил бутиловый спирт 221,224, 234 Послсдний удобен тем, что растворяет едкое кали, но при 60° он сам реагирует с акрилонитрилом 103,216, 255 В раде случаев употреблялись в качестве растворителей соединения, хотя и реагирующие с акрилонитрилом, но значительно медленнее, чем растворенное вещество. Так, например, аммиак и некоторые алифатические амины можно успешно цианэтилировать в водном р.астворе >55 1 7 тин в присутствии тритона В цианэтилируется с удовлетворительным выходом (50%) в спиртовой среде [c.102]

Крыс обучали менять лапу при доставании пищи и затем изучали влияние этого обучения на выделенных нервных клетках контрольного участка гиппокампа. Не принималось никаких хирургических мер для того, чтобы пробудить животное заменять предпочитаемую лапу другой при доставании пищи, находящейся на дне длинной и узкой стеклянной трубки (рядом с трубкой и параллельно ей ставили стенку). Поскольку животное из-за конструкции трубки не может достать пищу предпочитаемой лапой, оно старается сделать это другой лапой и в конце концов обучается. В день крысе дают два урока. На четвертый— пятый день обучения крысы находятся еще на восходящей ветви кривой обучения. Затем из мозга крыс этого периода обучения выделяют участок гиппокампа САЗ, содержащий парамидные клетки (средние). За полтора часа до этого крысам в оба боковые желудочка мозга вводят Н-лейцин (60 X 2 мкл с радиоактивностью 1 мкКи/мкл). Берут образцы нервных клеток из участков САЗ гиппокампа, гомогенизуют и экстрагируют для солюбилизации белков солевым раствором, содержащим Тритон Х-100, как это было описано в разд 7.1.3. При разделении белков на микрогеле получаются 2 основные белковые фракции в кислой половине геля (рис. 3 Л). [c.294]

Парри и Андерсон [119] использовали нормальную импульсную полярографию для определения Fe(II) и Ре(П1), а также Си (И), в травильных растворах производства микроэлектронных приборов травление состояло в окислении меди железом(III).. Концентрации компонентов определяли по силе токов, получавшимся при наложении импульсов напряжения, смещавших потенциал электрода к площадкам предельного тока восстановления Си(II) и Ре(III) и окисления Fe(II). Фоном для определения обеих форм железа служил 0,1 М раствор Na4P207, содержащий 1,3-10 % (масс.) тритона Х-100 (pH = 8). Тритон вводили для обеспечения необратимости электродного процесса, Необходимой для разделения волн окисления Ре (II) и восстановления Fe(III), поскольку нормальная импульсная полярография в отличие от классической полярографии не позволяет установить положение линии нулевого тока. [c.156]

Рис. 7.4. Разделение методом ГПХ с высоким разрешением поверхностноактивных веществ (аддукты поп ил-фенола — окиси этилена) [8]. Колонка 48 мХ 7,2 мм (внутренний диаметр), стирогель 500 А растворитель тетрагидрофуран образец 2,5 мг скорость потока 0,4мл/мин. Тритон Х-45 — поверхностноактивное вещество, выпускаемое фирмой Rohm and Haas o. цифры указывают отношение между количеством окиси этн-лена и нонилфенола в молях.

На рис. 7.6 показана хроматограмма, полученная методом высокоскоростной ЖХ на колонке с полужесткими гелями. За 80 с было проведено разделение до базовой линии трех компонена-ов при линейной скорости растворителя 2 см/с [2]. Разделение тритона, показанное на рис. 7.4, проводилось на колонке длиной 48 м, которая работала более 6 месяцев при 70 атм и при скорости потока [c.187]

Рис. 10.3. Однократное разделение тритона Х-45 на поверхностно-пористом адсорбенте. Колонка 50 смх2,3 мм (внутренний диаметр), корасил И подвижная фаза и-гексан —10% изопропанола скорость потока 1,55 мл/мин.

Горячие атомы трития получались по ядерной реакции Ы (п, а) Т. В качестве датчика тритонов использовалась соль ЫгСОз. Облучение проводилось в вертикальном канале реактора ИРТ-1000 при потоке тепловых нейтронов 10 — 10 нейтрон/см сек. Мощность сопутствующей дозы у-излуче-ния реактора 1 10 эв/см сек. Для работы использовался этилен с чистотой 99,8%. Облучение проводили в кварцевых ампулах. После облучения содержимое ампул анализировалось методом газовой радиохроматографии. Продукты разделялись на колонке с силикагелем ШСК-57 (длина колонки 3 м, газ-носитель—аргон, скорость 30—40 см /мин). Для разделения НТ [c.33]

Нитрофенилендиамины — единственный пример исходных материалов, в которых наличие изомеров заранее известно. Описано применение газовой хроматографии для обнаружения изомерных диаминотолуолов в виде их трифторацетильных производных [3]. Изомерные фенилендиамины могут быть разделены на колоннах с тритоном Х-305 [4] и апиезоном Ь со щелочью [5]. Описано разделение аминовых компонентов красителей для волос на колонне с 10% иСОМ50НВ-5100 и 5% гидроокиси натрия с использованием в качестве внутреннего стандарта Л ,Л -диэтил-1-нафтиламина [6]. Согласно сведениям автора настоящей статьи, фенилендиамины, толуилендиамины и аминофенолы, используемые в качестве компонентов красителей для волос, свободны от изомеров в пределах ошибки измерений менее 0,1%. [c.494]

Нет сообщений об определении примесей в халькогеноводородах газохроматографическим методом. Известны. лишь работы по хроматографическому анализу смесей, в которых сероводород является одним из компонентов, присутствующих в соизмеримых количествах. Сообщается [24] о разделении смеси, состоящей из СОз, HjS, SO2, OS и S2, па колонне с диатопорт-S, обработанным тритон-Х-305 или бензолцеллозольвом. В работе [25] разделение приведенной выше смеси газов осуществлялось на колонне длиной 2 м, заполненной норанаком-(2 при 120° С. [c.86]

Рис. 23.7. Влияние ГЛБ на неионные микроэмульсии. Вверху разделение фаз при отношении вода/ гексадекан 1 1 и содержании этоксилированного октил-фенола 9 об.%. Тритон Х-15 (1 ЭО) и тритон Х-114 (7,5 ЭО). Отношение вычисляли из соответствующего мольного отношения Х-15/Х-114, считая для групп ЭО, ОН-и октилфенола молярные объемы равными 39, 8,5 и 202,5 мл соответственно. Внизу Кривые поглощения воды V / пдв) масла (VfJ / Температура 25°С.

Тиолы и диалкилсульфиды хроматографически разделяются на ряде неподвижных фаз, включая трикрезилфосфат [4], диоктилфталат 96], динонилфталат [92], р,Р -иминодипропионитрил [66], карбовакс 1540 [24], продажные моющие средства [1] и сквалан [95], Некоторые данные об удерживаемых объемах, отнесенных к объему 1-бутантиола, приведены в табл. 15. Десятичные логарифмы величины удерживаемых объемов на таких неполярных жидкостях, как динонилфталат, линейно увеличиваются с числом углеродных атомов, но на полярных жидкостях, например на карбоваксе и тритоне, наблюдается заметное отклонение от прямолинейности для соединений с небольшим числом углеродных атомов. На динонилфталате коэффициент разделения составляет примерно 2,74 на атом углерода для гомологических рядов, состоящих из первичных тиолов с прямой цепью. На тритоне Х-305 коэффициент разделения изменяется от 1,6 для Сг/С до 1,9 для С5/С4. Первичные тиолы связываются неподвижной фазой прочнее, чем вторичные, независимо от того, применяют ли полярный или неполярный растворитель, причем для этих изомеров коэффициент разделения составляет 1,5. Разветвление цепи также уменьшает сродство к неподвижной фазе. Это видно из того, что удерживаемые объемы для 2-метилпропантиола меньше, чем для 1-бутантиола, на всех исследованных жидкостях. Третичные соединения связываются менее прочно, чем другие исследованные тиолы. На это указывает тот факт, что удерживаемые объемы для 2-метил-2-пропантиола меньше, чем для 1-пропантиола, на всех приведенных неподвиж- [c.275]

Исследованы различные НФ для разделения меркаптанов, алкилсульфидов ( — Сб). дисульфидов и др. серусодержащих соединений. Лучшая НФ тритон Х-305 (ал-килариловый эфир с полиоксиэтиленовой цепочкой). [c.134]

Анализ омеси газов, содержащих летучие соединения серы СОг, H2S, H3SH, SO2, Н2О. Проба отбирается в ловушку с силикагелем при —78° С. Разделение на колонке с НФ тритон Х-305 на хромосорбе. [c.197]

Разделение кислородсодержащих соединений l — С4 (спирты, кетоны, сложные эфиры) на 20 различных НФ. Установлено, что нонилфенол занимает исключительное место по разделяющей способности для соединений этого типа. Приведены удерж, объемы и факторы разделения на основе анализа при 73°, НФ тритон Х-100 (СНз)зССНаС- [c.121]

Электронная микрофотография части внехромосомного ядрышка, выделенного из незрелой яйцеклетки (ооцитя) тритона. Хорошо видны элементы матрикса (Л/) типа ламповых щеток, разделенные участками осевой (О) цепи, лишенными матрикса. Осевая цепь представляет собой одетую белком двуспиральную ДНК. а тонкие нити элементов матрикса, лежащие перпендикулярно осевой цепи,— покрытые белком молекулы новообразующейся рибосомной РНК. транскрибирующейся с ДНК-матрицы поддействием РНК-полимеразы. ДНК-ось каждого матрикса состоит из гена, определяющего нуклеотидную последовательность соответствующей рибосомной РНК. транскрипция которой, по-видимому, протекает в направлении удлиняющихся перпендикулярных РНК-нитей. С одного гена одновременно транскрибируется около ста молекул РНК. [c.509]

Классической работой по электрофоретическому разделению белков мембран эритроцитов человека является исследование Фейрбанкса и соавт. (1971), в котором предложена номенклатура полипептидных полос, выявляемых в солюбилизированной с помощью додецилсульфата натрия (ДСН) мембране. Этой номенклатурой пользуется в настоящее время большинство ученых. Наличие сетчатой структуры, выстилающей внутреннюю поверхность мембраны эритроцита, было обнаружено непосредственно с помощью электронной микроскопии после обработки клеток неионным детергентом тритоном Х-100. При определенных экспериментальных условиях (в среде с высокой ионной силой и при низкой температуре) применение этого детергента позволяет полностью солюбилизировать липидный бислой и интегральные белки. При этом остается сеть белков, сохраняющая исходную форму клетки, которая представляет собой мембранный скелет (каркас) эритроцита. Он тестируется в виде двухмерной сети филаментов, длина которых зависит от особенностей приготовления препарата для микроскопии. Необходимо отметить, что белки, близкородственные компонентам цитоскелета эритроцитов, обнаружены в ряде неэритроидных клеток. В связи с универсальностью данной системы следует более подробно рассмотреть структуру и свойства некоторых цитоскелетных белков. [c.31]

Приготовление микрогеля. По мнению Нейхоффа [915], для получения хорошего разделения белков, необходимо соблюдать следующее правило чем меньше диаметр капилляра, тем выше должна быть концентрация аириламида. Растворы гелей имеют такой же или почти такой же состав, как и при обычном диск-электрофорезе. Однако в данном случае рекомендуется добавлять в растворы тритон Х-100 до конечной концентрации 1% [44, 914] и гидантоин до конечной концентрации 5 мг/мл [c.108]

Тритон Х-100 не влияет на разделение белков, но облегчает извлечение гелей из капилляров. Под действием гндаито-ина белковые полосы становятся более узкими. В электродном буфере глицин можно полностью заменить гидантоином [915]. Капилляры заполняются растворами гелей на /2—% нх длины под действием сил поверхностного натяжения. Затем их втыкают в толстый (около 2 мм) слой пластилина, налепленного на дно небольшой чашки Петри. На поверхность раствора геля очень тонкой стеклянной пипеткой наслаивают воду вплоть до верхнего края капилляра. Это нужно делать чрезвычайно осторожно, чтобы избежать перемешивания воды с гелем. Полимеризацию гелей производят в вертикальном положении, причем желательно до употребления выдерживать их не менее 10 ч [c.108]

В некоторых случаях, например при просчете фракций после хроматографического разделения смеси компонентов малой исходной активности, приходится вносить в сцинтиллятор каждую фракцию целиком, а затем извлекать ее обратно для дальнейшего анализа. Для нуклеозидов, аминокислот и сахаров в этом случае рекомендован следующий прием. Фракции с колонки вносят во флаконы счетчика и там сушат, продувая теплый воздух. Затем заливают по 1 мл метанола, перемешивают и добавляют по 5 мл раствора ППО (4 мг/мл) и ПОПОП (0,1 мг/мл) в толуоле (без тритона Х-100). Эффективность счета в таком метанол-толуол ьном сцинтилляторе оказывается высокой 32,4% Для и 83,2% для С. После просчета радиоактивности в каждый флакон вносят по 2 мл воды и энергично встряхивают в течение [c.210]

Авторы одной из работ [Hearing et al., 1976] растворяли белки до концентрации 1 мг/мл в течение нескольких часов в 1%-ном растворе Тритона Х-100. Затем этот раствор смешивали с равным объемом 20%-ной сахарозы в верхнем электродном буфере удвоенной концентрации и в таком виде наносили на формирующий гель в трубке. Тритон Х-100, связавшись с белком, может мигрировать вместе с ним, сохраняя растворимость белка, однако разделение полос оказывается более надежным, если 0,1% Тритона Х-100 вводят в гель. Правда, при фиксировании белков ТХУ Тритон Х-100 дает опалесцирующий фон, который приходится дольше отмывать. [c.83]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология