ДНК фаговая, длина

Чтобы понять, как функционирует векторная система на основе фага X, необходимо рассмотреть молекулярные аспекты литического цикла развития. Инфекционная фаговая частица имеет головку, в которой заключена плотно упакованная ДНК длиной примерно 50 т. п. н., и отросток с отходящими от него тонкими белковыми нитями (фибриллами). Сборка головки и отростка и упаковка ДНК четко скоординированы. ДНК фага - это линейная двухцепочечная молекула длиной 50 т. п. н. с одноцепочечными 5 - хвоста-ми из 12 нуклеотидов. Их называют липкими ( os) концами, поскольку они взаимно комплементарны и могут спариваться друг с другом. После того как фаговая ДНК проходит через отросток и попадает в Е. соИ, os-концы соединяются с образованием кольцевой молекулы. На раннем этапе литического цикла в результате репликации кольцевой молекулы ДНК образуется линейная молекула, состоящая из нескольких сегментов длиной 50 т. п. н. (рис. 4.16, ). Каждый из таких сегментов упаковывается в белковую головку, к последней присоединяется уже собранный отросток и образуется новая фаговая частица (рис. 4.16, . При упаковке молекулы ДНК длиной менее 38 т. п. н. получается неинфекционная фаговая частица, а фрагменты длиной более 52 т. п. н. не умещаются в головку. Сегменты длиной 50 т. п. н. в линейной молекуле ДНК разделены os-сайтами, и именно по этим сайтам разрезается молекула, когда очередной сегмент заполняет головку. Разрезание осуществляет фермент, находящийся у входа в головку. [c.72]

Рис. 4.16. Литический путь развития бактериофага X. А. При репликации кольцевой ДНК бактериофага X образуется линейная молекула, состоящая из повторяющихся сегментов длиной примерно 50 т. п. и. Каждый из этих сегментов представляет собой полноразмерную фаговую ДНК. Б. Фаговая головка вмещает один такой сегмент, затем к головке присоединяется уже собранный отросток.

Вращающиеся цилиндрические вискозиметры позволяют проводить определения в условиях, при которых гидродинамический сдвиг равен нулю. Одним из важнейших свойств высокомолекулярной ДНК является ее способность легко деградировать под действием гидродинамического сдвига. Даже при простом набирании в пипетку разбавленных растворов высокомолекулярной фаговой ДНК происходят разрывы (одновременно обеих цепей двойной спирали), в результате которых молекулы распадаются на фрагменты, длина которых равна половине, четверти и одной восьмой исходной длины. Поэтому при работе с капиллярным вискозиметром, прежде чем экстраполировать к нулевой концентрации, следует сначала провести экстраполяцию к нулевому сдвигу. [c.140]

Однако не всегда дело обстоит так просто. В некоторых случаях макромолекула ДНК фаговой частицы состоит не из двух длинных полинуклеотидных цепей, а из нескольких более коротких цепей (например, ДНК. фага Т5). В других случаях (в частности, ДНК фага Т2) препарат ДНК из вирусных частиц содержит смесь молекул, отличающихся по своей химической структуре за счет циклически переставленных фрагментов, как, например [c.32]

При гидролизе РНК вируса табачной мозаики действием гуанил-РНК-азы удалось выделить три длинных олигонуклеотида уникальной последовательности для локализации их положения в молекуле РНК использован прием частичной депротеинизации РНК фага. Известно, что депротеинизация фаговой РНК под действием додецилсульфата происходит последовательно, начиная с 5 -конца цепи PHK s. Прерывая процесс депротеинизации в разные моменты времени и расщепляя освободившуюся РНК, можно определить относительное расположение различных фрагментов. [c.81]

Гексагональные головки фагов состоят из защитной белковой оболочки, внутри которой заключена ДНК, находящаяся в комплексе с полиаминами. ДНК фага Т2 представляет собой единую молекулу с молекулярным весом 130-10 . Длина ее равна 60 мк. Если ДНК и белок пометить соответственно с помощью и 5 и быстро перенести фаговые частицы, находившиеся ранее в солевом растворе, в дистиллированную воду, то в результате осмотического шока метки разделятся, причем 535 останется в белковых оболочках фага, не содержащих ДНК. [c.367]

Согласно общеизвестным в настоящее время данным ген-оператор, входящий в состав управляющего устройства (область С фаговой хромосомы), имеет еще меньшие размеры, чем 1% генетической длины макромолекулы. Однако, если даже принять, что соотношение размеров мишеней, с которыми связаны функции иммунитета и репродукции, составляет 1 100, то становится понятным, что при равной радиочувствительности этих функций соотношение между эффектами выхода фаговых частиц, преодолевающих иммунитет, и степенью инактивации вирусных корпускул также должно составлять 1 100. [c.192]

Фаговые векторы. Космиды. ВАС- и YA -векторы. Векторы на основе бактериальных плазмид широко используются для клонирования, но у них есть один важный недостаток — небольшая емкость. В таких векторах можно клонировать фрагменты в среднем не более 7—8 т. н. п., а последовательности эукариотических генов гораздо длиннее (в среднем IО—25 т. н. п). Кроме того, для изучения регуляторных последовательностей, находящихся за пределами кодирующей части генов, необходимо клонировать еще более протяженные области генома. Оказалось, что для клонирования таких фрагментов плазмидные векторы не подходят. Дело в том, что плазмиды, содержащие большие вставки хромосомной ДНК (более 8 т. н. п.), нестабильны и при репликации постепенно уменьшаются в размере в результате делеций нуклеотидов чужеродной ДНК. [c.40]

Для выделения и исследования более длинных генов или группы соседних генов с прилежащими к ним последовательностями необходимо клонировать фрагменты ДНК еще большей длины (30—45 т. н. п.). Для клонирования таких фрагментов были сконструированы специальные векторы с большей емкостью — космиды, представляющие собой гибридную молекулу, содержащую специальный os-участок генома фага, за счет чего они могут упаковываться в головку фага X, и специальные последовательности, позволяющие им реплицироваться по плазмидному типу. Размер космиды довольно мал по сравнению с фаговым вектором — всего 5 т. н. п. и, следовательно, в космиду можно вставить чужеродную ДНК значительных размеров (30—45 т. н. п.). Фаговые головки, содержащие такую рекомбинантную ДНК, не могут размножаться как фаги. Ими трансформируют клетки Е. соИ. Гибридная молекула, содержащая эукариотическую ДНК, обрамленную os-сайтами, размножается в Ё. соИ как плазмида, и каждая фаговая частица вызывает образование колонии индивидуального бактериального трансформанта [c.41]

Исследования фагов значительно продвинулись с приходом в эту область Шлезингера. Шлезингер, работавший с вирусами начиная примерно с 1930 г. и вплоть до своей смерти в 1935 г., был первым, кто попытался применить в своих исследованиях методы, которым впоследствии суждено было положить начало молекулярной биологии. Используя ряд непрямых методов, таких, как определение способности бактериальной клетки к адсорбции фага и скорости осаждения фага, Шлезингер показал, что максимальная длина фаговой частицы равна примерно [c.253]

Как будет видно из дальнейшего, особое значение для механизмов репликации линейных молекул ДНК имеет структура их Концевых участков. У линейных ДНК-геномов не бывает невыразительных концов. Соответствующие участки (рис. 134) могут иметь прямые концевые повторы длиной от сотни и более (например, ДНК фага Т7) до тысяч (Т-четные фаги и др.) пар нуклеотидов. При этом если у фага Т7 все геномные молекулы ДНК идентичны, то молекулы ДНК Т-четных фагов существенно различны, даже Когда они образованы в одной клетке, зараженной единственной фаговой частицей геномы Т-четных фагов (и ряда других вирусов) характеризуются так называемыми кольцевыми перестановками. Еще один вариант концевой структуры вирионных ДНК-ДУПлек-сов — липкие (т. е. взаимно комплементарные) однонитевые концы. Длина которых обычно находится между 10 и 20 нуклеотидами (фаги Р2, Р4), но может укорачиваться до одного нуклеотида (герпес-вирусы), если в этом случае вообще позволительно называть такие Концы липкими . [c.261]

Третье различие между системами репликации ДНК фагов Т4 и Т7 касается способа превращения конкатемера в зрелый мономерный геном. В первом случае длина сегмента ДНК, отрезаемого от конкатемера, задается не специфической нуклеотидной после-доватачьностью (как у Т7), а вместимостью фаговой головки кон-катемерная молекула ДНК начинает упаковываться в головку, а когда головка заполнится, активируется эндонуклеаза, которая отщепляет оставшийся снаружи участок молекулы. Поскольку в головку помещается сегмент ДНК, превышающий по своим размерам уникальную последовататьность вирусного генома, повторение актов упаковки и нарезания генерирует молекулы с кольцевыми перестановками и прямыми концевыми повторами (рис. 147). Отметим, что в фаговом геноме закодирован фермент, способствующий превращению разветвленных молек л ДНК в линейные. [c.280]

Последующие события в схематическом виде представляются следующим образом (рис. 151 . Участок фаговой ДНК со сближенными концами контактирует с каким-либо участком клеточной хромосомы, причем это может быть любой (или почти любой) участок клеточной ДНК. Далее под действием вирус-специфических белков происходит рекомбинация. В обе цепи клеточной ДНК на расстоянии пяти нуклеотидов вносятся однонитевые разрывы кроме того, однонитевые разрывы вносятся в вирусную ДНК — по границе между Ь- и К-концами и вирус-специфическими последовательностями. При этом выступающие 5 -концы клеточной ДНК ковалентно соединяются с З -концами вирус-специфической ДНК. Старые Ь- и К-концы фаговой ДНК удаляются, и после репарации брешей фаговый геном оказывается встроенным в клеточную хромосому и окруженны.м вновь появившимся повтором клеточной ДНК длиной 5 п. н. Возможны две разные ориентации профага относительно клеточных генов расположение генов в профаге н в ДНК вирусной частицы одинаково. [c.287]

Фаг М13 — это одноцепочечная циклическая ДНК длиной около 6500 нуклеотидов. После инфицирования бактериальной клетки одноцепочечная ДНК фага превращается в двуцепочечную репликативную форму (RF), которая подобна плазмиде. Фаговая ДНК содержит, кроме того, короткий участок из 500 нуклеотидов, названный как МП (межгенная последовательность), не существенный для ее жизнедеятельности. Именно в этот участок МП репликативной формы ДНК после расщепления ее с помощью лигазы вставляют чужеродную ДНК. Введение рекомбинантной двуцепочечной молекулы в клетку Е. соИ приводит к ее репликации, синтезу (+) цепи, упаковке последней в белковый чехол и вьщеле-нию фага в среду. Инфицированная нитевиднь фагом клетка продолжает делиться, вьщеляя в окружающую среду большое количество фага. Этот фаг содержит в вирионе одноцепочечную циклическую ДНК, в которую встроена одна из цепей чужеродной ДНК. [c.120]

Из трех терминирующих кодонов самым слабым является UGA. Он чаще всего может проскакиваться транслирующей рибосомой, по-видимому, за счет его узнавания триптофановой тРНК. В некоторых случаях этот терминирующий кодон специально используется в природе для того, чтобы в дополнение к основному белковому продукту, синтез которого завершается на этом кодоне, происходило образование небольших количеств другого физиологически важного белка из удлиненного полипептида. Такая ситуация наблюдается при трансляции РНК фага Q цистрон белка оболочки фага заканчивается терминаторным кодоном UGA, который время от времени проскакивается рибосомами, что приводит к синтезу небольших количеств значительно более длинного, чем белок оболочки, полипептида последний является необходимым продуктом трансляции фаговой РНК, так как требуется для сборки полноценной (инфекционной) фаговой частицы. [c.266]

Структура ДНК наблюдается с помош,ью электронного микроскопа. На рис. 8.8 и 8.9 приведены электронные микрофотографии нативной ДНК. Из фага Т2 были выделены нативные молекулы длиной до 49 мк, а из Е. oli — до 400 мк, что соответствует молекулярному весу порядка 10 . Вся ДНК фаговой частицы является одной молекулой. [c.496]

Один из множества Х-векторов для клонирования имеет два 7/иН1-сайта, фланкирующих участок длиной 20 т. п. н. При гидролизе очищенной фаговой ДНК рестриктазой ВатШ образует- [c.72]

Важную группу векторов, широко используемых прн установлении первичной структуры ДНК, составляют нитевидные бактериофаги, такие, как М13, fd и fl. Фаг М13 представляет собой одно-цепочечиую циклическую ДНК длиной около 6500 нуклеотидов. После инфицирования бактериальной клетки одноцепочечная ДНК фага превращается в двухцепочечную репликативную форму (RF), которая во всех отношениях подобна плазмиде. Кроме того, фаговая ДНК содержит короткий участок (500 нуклеотидов), названный межгенной последовательностью (МП), несущественный для ее жизнеспособности (рнс. 250). [c.432]

Инфекционность и автономность полового фактора доказывается высокой эффективностью его передачи. Переход F-фактора от F к F клеткам происходит через F-волоски, обнаруженные, например, у Е. соН К12. Их образование детерминируется F- и R-факторами. Диаметр F-волосков около 9,5 нм и длина 20 мкм. Эти волоски несут f -антиген и на них адсорбируются специфические мужские РНК-содер-жащие фаги. Предполагают, что в этой адсорбции принимают участие выпуклости дистальных концов F-волосков. Указанные выпуклости бывают чашеобразные, дисковидные и, наиболее часто, сферические. Полая структура F-волосков обеспечивает транспорт фаговых частиц в чувствительную бактериальную клетку. [c.86]

Морфология бактериофагов. Строение бактериофагов в основном изучали на примере фагов серии Т Es heri hia oli. Колифаг Т2 состоит из полиэдрической головки длиной 100 нм и отростка, или хвоста , примерно такой же длины. Поэтому говорят о составных вирусах (табл. 4.1). Головка состоит из капсомеров и содержит внутри ДНК. Количество белка и ДНК примерно одинаково. Отросток фага Т2 имеет сложное строение. В нем можно различить не менее трех частей полый стержень, окружающий его сократимый чехол и находящуюся на дистальном конце стержня базальную пластинку с шипами и нитями (от последних зависит специфическая адсорбция на клетке-хозяине).ГНа электронных микрофотографиях, полученных при негативном контрастировании, можно видеть фаговые частицы в двух состояниях у одних частиц головка очень резко выделяется на электроноплотном фоне и чехол отростка растянут, у других головка мало отличается от фона по плотности и чехол находится в сокращенном состоянии. Это схематически изображено на рис. 4,7. Первое состояние А) характерно для активного фага, в головке которого заключена ДНК, второе (Б)-для фага, который инъецировал свою ДНК в бактериальную клетк) [c.142]

Частицы фагов Т2 и Т4 содержат одну-единственную стабильную молекулу ДНК, представляющую всю нуклеиновую кислоту частицы. Предполагается, что все фаговые частицы действительно содержат по одной молекуле нуклеиновой кислоты. Молекулярный вес ДНК фага Т2 составляет приблизительно 11-10 (стр. 74) [ИЗ]. Молекула фаговой ДНК, по-видимому, по всей длине представляет сдвоенную перазветвленную нить. Электронная микрофотография молекулы ДНК фага Т2 показана на фото 1. [c.160]

Прямые физические методы. Самым старым и самым прямым методом исследования биополимеров следует считать, по-видимому, электронномикроскопический метод. Недавно Клейншмидт обнару кил, что если препарат нуклеиновой кислоты, непосредственно выделенный из живого организма методом осмотического шока или взятый после предварительного выделения, комплексировать с каким-нибудь основным белком, например с цитохромом с, то его mohiho нанести на поверхность воды в виде моно-молекулярной пленки. На фиг. 51 приведена электронная микрофотография фаговой ДНК, полученная Томасом и Мак-Хатти при помощи этого метода. Снимок позволяет оценить размеры молекулы ДНК и ясно показывает, что эта молекула замкнута в кольцо. Определенная таким способом длина молекулы, равно как и ее диаметр, соответствуют величинам, которых следует ожидать на основе гипотезы Уотсона — Крика. Показано, что молекулы ДНК из многих источников имеют форму кольца или замкнутой петли. У ДНК фагов Я и Т2 переход от линейной формы к кольцевой осуществляется легко и обратимо. [c.143]

Мутации, не являющиеся точковыми, представляют собой делеции, захватывающие участки хромосомы различной длины. Делеции исследовались на многих системах. Так, например, у бактериофага X была изучена делеция ХсЬг, в результате которой длина молекулы фаговой ДНК оказывается меньше на целых 3 микрона (14,3 вместо 17,3), что соответствует уменьшению молекулярного веса на 6-10 , или уменьшению длины приблизительно на 1000 нуклеотидных пар (см. фиг. 51). [c.493]

Для того чтобы тем же методом анализировать другие вирусные РНК, нужно располагать аналогичными специфическими РНК-репликазами. Однако в настоящее время единственной специфической репликазой, в достаточной мере охарактеризованной для этой цели, является репликаза фага Q 3. Тем не менее для образования специфических сегментов можно использовать и сравнительно неспецифические ДНК-зависимые РНК-полимеразы. В этом случае необходимо, чтобы ДНК-матрица имела единственный участок инициации, а препарат РНК-полимеразы инициировал синтез РНК предпочтительно в этом месте. По-видимому, эти условия должны соблюдаться в случае ДНК фагов 0 Х174 и Fd и РНК-полимеразы Е. соИ (содержащей tj-фак-тор). Окамото с сотр, (Okamoto et al., 1970) нашли, что у ДНК фага Fd имеются три инициаторных участка, из которых только один продуцирует нить РНК, достаточно длинную, чтобы быть копией фаговой ДНК. Два других участка продуцируют нити РНК, равные примерно соответственно [c.189]

Двойная спираль ДНК состоит из 160 000 пар нуклеотидов и достигает поразительной длины — 50 мкм (то есть 0,05 мм). Кроме того, фаг обладает хвостовой частью, с помощью которой он прилипает к стенке бактериальной клетки. На месте прикрепления фага под действием фермента клеточная стенка растворяется и через образовавшееся отверстие ДНК выстреливает внутрь бактерии. Белковая оболочка фага остается вне бактериальной клетки. Теперь внутри бактериальной клетки фаговая ДНК действует как матрица для сни-теза соответствующей ей мРНК, используя 1 5 [c.165]

На основе бактериофага Я. были сконструированы векторы, в составе которых фрагменты чужеродной ДНК длиной до 22 т. н. п. весьма стабильны. При создании таких векторов для клонирования на основе фага А. учитывалось то обстоятельство, что вся центральная часть молекулы ДНК фага ( 19 т. н. п.) не нужна для репликации фага в Е. соИ. Эту область с помощью рестриктазы вырезают из генома фага так, что правый и левый концевые фрагменты (так называемые правое и левое плечо фага), необходимые для репликации, остаются неизменными. Плечи фага отделяют от остальных фрагментов и используют в качестве векторов для клонирования, содержащих на месте вырезанной фаговой ДНК вставку чужеродной ДНК размером около 9— 21 т. н. п. Размножаются в бактери-40 [c.40]

Эффект осмотического шока можно видеть на фиг. 129, где представлена электронная микрофотография частицы Т-чсшого фага, подвергнутая шоку in situ, на предметном столике электронного микроскопа. На фотографии отчетливо видно, что ДНК, выделенная из разрушенного фага, представляет собой одну гигантскую макромолекулу. Как показали измерения, длина этой непрерывной нити фаговой ДНК (от одного свободного конца до другого) составляет около 50 мкм, что в 550 раз превышает длину головки фага, содержащей ее. Таким образом, опыты с осмотическим шоком показали, что головка фага состоит из наружной полупроницаемой белковой оболочки и находящейся внутри нее ДНК. [c.259]

Эти сверхполимеры перед включением в головки инфекционных фаговых частиц должны разделиться на отрезки длиной, равной длине нормального фагового генома. Если такое разделение начинается всегда с одного и того же генетического локуса, например с, то может возникнуть лишь один тип фагового генома, а именно геном с повторяющимся участком ab . В этом случае гетерозиготы с концевой избыточностью могут возникнуть только по тем генам, которые располагаются в этом участке. Но если начало отсчета в процессе разделения может приходиться на любой генетический локус, то возникнет целый набор фаговых геномов. [c.296]

Приблизительную длину цистронов (или генов) гПА и гПВ можно вычислить, исходя из частот рекомбинации мутантных локусов, находящихся на разных концах этих цистронов. Оказалось, что расстояние между двумя наиболее удаленными друг от друга локусами гена А равно примерно 6 единицам карты, а соответствующее расстояние для гена В составляет около 4 единиц. Исходя из предполагаемой общей длины генетической карты фага Т4 и содержания ДНК в фаговой частице (мы уже использовали эти данные при определении минимальной величины единицы генетической - рекомбинации), можно рассчитать, что ген А соответствует (6Л500)-2-10 800, а ген В — (4/1500)-2-10 500 парам нуклеотидов в двойной спирали фаговой ДНК. Эта величина хорошо согласуется с примерным значением функциональной единицы, полученным а priori на основании принципов, изложенных в гл. VHI. [c.312]

За десять лет изучения структуры, физиологии и генетики фага выяснилось, что этот фаг имеет много общего с Т-четными фагами, отличаясь от них лишь способностью находиться как в инфекционном состоянии, так и в состоянии профага. Частица фага X состоит из заполненной ДНК головки и длинного отростка (фиг. 167). Однако головка фага X содержит молекулу ДНК длиной лишь 50 ООО нуклеотидных пар и, следовательно, несет только одну четверть той информации, которая имеется Б хромосоме Т-четных фагов. Химический состав ДНК фага X близок к составу ДНК, клеток-хозяина Е. соИ. В отличие от ДНК Т-четных фагов в ДНК фага X не содержится необычных гликозилированных остатков оксиметилцитозина. Подобно ДНК Т-четных фагов, ДНК фага X имеет концевую избыточность. Однако у фага X концевая избыточность представляет собой одноцепочные участки из 20 нуклеотидов, комплементарные друг другу (фиг. 168). Этот повтор создает липкие концы , которые обеспечивают превращение линейной молекулы ДНК инфекционной фаговой частицы в кольцевую молекулу ДНК внутриклеточного вегетативного фага. Фермент, который перекусывает кольцевую вегетативную ДНК по двум специфическим межнуклеотидным связям, расположенным в разных полинуклеотидных цепях, восстанавливает линейнук> 22 [c.339]

Включение фрагментов генома хозяина в геном фага можно также продемонстрировать с помощью физико-химических методов, так как плотность фага Xdg отличается от плотности нормального фага. Это, по-видимому, объясняется следующими причинами. Замена области h в геноме фага на область gal бактериальной хромосомы может, вероятно, привести к тому, что длина фрагмента ДНК, отделяющегося в виде кольца от бактериальной хромосомы, будет отличаться от длины того фагового генома, который ранее включился в эту хромосому. В результате могут получаться дефектные трансдуцирующие фаги, содержащие либо больше, либо меньше ДНК, чем геном нормального фага Я. Ввиду того что количество белка в частице фага Я, очевидно, постоянно, а плотность его меньше, чем плотность фаговой ДНК, соотношение плотностей дефектного и нормального, инфекционного фага определяется соотношением количества входящей в их состав ДНК (фиг. 176). Благодаря такому различию в плотности удается осуществить физическое разделение смеси дефектных и нормальных частиц, а следовательно, и получение чистых препаратов фага Яс , освобвжденных от инфекционного фага-помощника. [c.351]

С самого начала было ясно, что данные о поведении сцепленных генетических локусов при трансдукции значительно бы облегчили изучение механизма, с помощью которого фаговые частицы захватывают отдельные фрагменты генома донора и впоследствии переносят эти фрагменты в геном клетки-реципиента. Поэтому оставалось только сожалеть, что трансдукция была обнаружена в то время лишь у сальмонелл, к 1950 г. еще мало изученных в генетическом отношении, а не у . соИ, у которой с помощью конъюгационного анализа уже удалось установить сцепление для многих мутантных локусов. Тем с большей радостью было встречено открытие Е. Леннокса, обнаружившего, что умеренный фаг Р1 способен трансдуцировать генетические признаки Е. соИ от клеток-доноров к клеткам-реципиентам. Благодаря этому открытию удалось показать, что никогда не трансдуцируются совместно те генетические маркеры, для которых уже показано, что на хромосоме Е. oli они отстоят далеко друг от друга. Одновременно было показано, что два сцепленных гена ihr и leu (фиг. 123), контролирующие синтез двух аминокислот, треонина и лейцина, иногда трансдуцируются совместно и что частота такой совместной трансдукции составляет около 1%. Это значит, что приблизительно 1% бактерий-реципиентов Thr , получивших от донора аллель ihr, получают от него также и аллель leu (неселективный маркер). Расстояние между генами ihr и leu равно приблизительно 2% общей длины генома Е. соН, [c.355]

Результаты последующих опытов, проведенных в сотрудничестве с Чэймпам, вскоре заставили Бензера пересмотреть свое объяснение амбивалентности. Среди исследованных фаговых мутантов был один, у которого В результате выпадения длинного участка ДНК была удалена граница между соседними гПА- и гПВ-генами. В результате этой мутации обычно отдельные полипептидные цепи гПА и гИВ синтезировались ввидеодной сплошной цепи (фиг, 223, А). Образующаяся таким образом сросшаяся молекула не обладала функцией, обусловленной геном гИА (и поэтому фаг имел фенотип гИА-мутанта), но могла осуществлять функцию гИВ при смешанной инфекции в комплементационных тестах с обычными точковыми гПВ-мутациями (см. гл. ХП1). [c.451]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология