Обработка мембран

Ниже приведены методики получения и обработки мем бран, а также методики определения степени пористости мембран. Так как различные авторы применяли мембраны одного и того же типа для определения самых различных молекулярных весов, нет возможности привести методики получения и обработки мембран для каждого данного диапазона молекулярных весов. Для каждого типа мембран будет указан диапазон молекулярных весов, в котором автор использовал данную мембрану. [c.191]

Способ обработки мембран также влияет на величину осмотического давления. На примере изучения осмотического давления нефракционированного смешанного полиамида Г-669 в растворе этанола было показано [21], что с изменением концентрации спирта, примененного для обработки мембран (75 и 90%), и продолжительности обработки величина пор мембраны имеет различные значения. [c.96]

Авторы [4, 22—26] приводят методики получения и обработки мембран для разных систем полимер—растворитель. В качестве материала для приготовления мембран использованы целлофан, нитраты и ацетаты целлюлозы, мелкопористое стекло, поливиниловый спирт, поливинилбутираль и другие синтетические полимеры, способные образовывать пленки. [c.97]

Изменение концентрации растворенного вещества в мембране и температуры приводит к изменению свободного объема в полимере. Так, предварительная обработка мембран веществами, вызывающими набухание полимера, при повышенной температуре может привести к увеличению коэффициента диффузии более, чем на десятичный порядок [13]. Это связано с тем, что при повышении температуры возрастает растворимость веществ в полимерах (для систем с верхней критической температурой смешения) и увеличивается подвижность полимерных цепей. Кроме того, при повышении температуры возрастает активность молекул проникающего вещества. [c.18]

Оригинальное решение для обработки мембран представляют машины с гидравлическим транспортированием пленочного материала [5, с. 177—179]. Машина (рис. 4.7) представляет собой ряд прямоугольных лотков, установленных один над другим зигзагообразно, так что транспортирующая жидкость (а вместе с ней и мембрана) при переходе с одного лотка на другой меняет направление потока на [c.126]

Каскад машин обеспечивает необходимую степень промывки мембран в этих же машинах может осуществляться обработка мембран любыми жидкостями. [c.127]

После спиртовой обработки мембрану погружают на 24 часа в насыщенный раствор поваренной соли, а затем выдерживают 24 часа в растворе соли, содержащем 100 г/л, и еще 24 часа в растворе соли с концентрацией 30 г/л. После этого мембраны выдерживают в дистиллированной воде 48 часов и далее обрабатывают по 48 часов последовательно [c.153]

Таким образом, ионообменные мембраны с карбоксильными группами, полученные путем соответствующего регулирования структуры полимера, обнаруживают хорошие электрохимические свойства. В то же время в случае мембран с сульфогруппами вследствие высокого влагосодержания трудно создать высокую концентрацию фиксированных ионов. В связи с этим пытались увеличить проницаемость этих мембран по отношению к катионам с помощью формирования на поверхности катода тонкой пленки, препятствующей переносу ОН. С этой целью предложен ряд способов обработка мембран аммиа> ом, [c.343]

Опреснение воды методом электродиализа сопровождается в начальный период вымыванием низкомолекулярных веществ из мембран, которые ухудшают органолептические свойства получаемой воды и способствуют появлению запаха. Поэтому рекомендуется проводить предварительную кислотно-щелочную обработку мембран. [c.97]

На рис. П-37 представлены результаты разделения водных растворов этанола на мембранах, обработанных различными методами. Как видно из рисунка, при обработке мембран в воде в течение [c.171]

Второй метод заключается в нагревании мембраны в растворе органического реагента при этом желательно, чтобы раствор был разбавленным. Время контакта мембраны рекомендуется не более 5 мин. После обработки мембрану нагревали до 50—150 °С в течение 0,1—1 ч. [c.175]

Скорости процессов деацетилирования и деструкции мембран существенно зависят от условий эксплуатации. Поэтому в целях увеличения долговечности мембран необходимо обеспечивать строгое поддержание pH и температуры грунтовки, а также систематически производить санитарную обработку мембран (например, 2%-ным водным раствором формалина с последующей промывкой обессоленной водой или ультрафильтратом с добавкой триэтиламина до pH 9—9,5). [c.209]

Для промывки установок после ультрафильтрации лакокрасочного материала предлагаются также промывные среды, содержащие в воде поверхностно-активные вещества, ферменты, органические растворители, кальцинированную соду и другие добавки [25]. Состав промывных вод определяется природой материала, из которого изготовлена мембрана, и связующего, используемого в лакокрасочном материале. Необходимо строго выдерживать режимы промывки и обработки мембран при перерывах в работе установки. [c.212]

Санитарная обработка мембран с целью уничтожения грибков и бактерий может проводиться 0,1—0,5%-ным водным раствором формалина примерно один раз в два месяца в течение 0,5—2 ч при комнатной темпера- [c.212]

Равновесное состояние мембраны при электролизе и стабильные ее характеристики достигаются только в течение некоторого времени, поэтому большое значение имеет предварительная обработка мембраны перед установкой ее в электролизер. Обычно ее предварительно обрабатывают раствором щелочи [247] с целью перевода в соль щелочного металла и введения гидратированных ионов натрия в матрицу мембраны. Помимо различных приемов, применяемых в процессе изготовления мембран и направленных на улучшение их смачиваемости, предложены термическая обработка мембран при 100—275 °С [248], выдерживание их в различных растворителях или смесях с водой [249] с целью улучшения технологических свойств. [c.231]

Незначительный положительный результат, оцененный, однако, авторами как средний, получен при обработке мембран растворами глюконовой кислоты и дитионита натрия. В этих опытах наблюдалось полное удаление отложений, которое сопровождалось небольшим повышением производительности и селективности мембран. Удаление загрязнений с поверхности мембран было также полным и при обработке раствором [c.138]

Важно отметить, что совпадение симметрии бислоя фосфолипидов в нашей модели и симметрии активных центров фосфолипазы Аг, расположенных по разные стороны эллипса вращения димера [35], может объяснить причину высокой активности этого фермента на тенях эритроцитов и отсутствие ее на целостных эритроцитах [13] v О том, что полярных групп фосфолипидов, по-видимому, нет на поверхности, свидетельствует тот факт, что обработка мембран фосфолипазой С и освобождение более 50% общего фосфора снижает степень реассоциации мембран с рибосомами лишь на 6% [33]. В пользу нашей модели, предсказывающей взаимодействие специфических реагентов с аминогруппами ФЭА лишь при повреждении мембраны, можно трактовать данные о том, что ФЭА целостных эритроцитов не взаимодействует с этими реагентами, в то время как ФЭА теней эритроцитов хорошо с ними реагирует [21]s. [c.164]

Из рис, 33 видно, что обработка мембран эритроцитов указанным модифицирующим агентом вызывает снижение функциональной активности фермента. При использовании объемных соотношений суспензии мембран и конканавалина 1 0,05 не зарегистрированы статистически достоверные различия величин активности мембранной АХЭ в нативном состоянии и в присутствии лектина, С увеличением этих соотношений до 1 0,2 и 1 1 активность фермента статистически достоверно снижается по сравнению с контролем на 16 и 42 % соответственно. Применение конканавалина в концентрации 0,8 моль/л и соотношении суспензии мембран и экзогенного модификатора 1 1 вызывает ингибирование мембранной АХЭ на 75 %. [c.152]

На рис. 42 показаны изменения ферментативной активности мембраносвязанной АХЭ после обработки мембран фосфолипазой В и воздействия УФ-света в дозе 4,5 кДж/м . Видно, что в результате УФ-облучения модифицированных мембран фоточувствительность фермента изменяется незначительно. Активность АХЭ в интактных мембранах после облучения снижается на 44 %, а в обработанных фосфолипазой — на 52 % по отношению к контрольному образцу. [c.160]

Фосфолипаза В катализирует отщепление гидрофильного спирта от фосфоглицеридов и сфингомиелинов. В результате отщепления полярных головок от молекул фосфолипидов могут нарушаться электростатические взаимодействия фермента с молекулами окружающих его фосфолипидов, в частности, кислого липида — фосфатидилсерина, являющегося, по-видимому, аннулярным липидом для ацетилхолинэстеразы. Фосфатидилсерин, а также фосфатидилэтаноламин локализованы преимущественно во внутренней половине липидного бислоя. Можно предположить, что гидролиз фосфолипидов и фосфатидилсерина не вызывает конформационных изменений молекул фермента, затрагивающих его активный центр, поэтому активность АХЭ при обработке мембран фосфолипазой практически не изменяется. Необходимо отметить, что обработка мембран фосфолипазой индуцирует изменения упаковки и подвижности фосфолипидов, вязкости и асимметрии липидной фазы, белок-липидных взаимодействий. Воздействие УФ-излучения на модифицированные мембраны приводит к нарушениям в функционировании мембраносвязанной АХЭ, отличающимся по направленности от таковых при облучении интактных мембран. Эти нарушения являются результатом изменения конформационного состояния продуктов гидролиза фосфолипидов в мембране при воздействии УФ-света. [c.162]

В зависимости от свойств белковых молекул и характера ионогенных групп белка успешным будет применение катионных или анионных детергентов, причем для последних особенно важно, чтобы pH среды был выше, чем значение рКа для данного детергента. Ряд детергентов плохо растворяется при низкой температуре, и их применение ограничено температурами, при которых может наблюдаться денатурация или агрегация белковых молекул. Температура, при которой проводится обработка мембранного материала, будет определять, в мицеллярной ли форме находится детергент (поскольку величина ККМ сильно зависит от температуры) и каковы размеры его мицелл. [c.91]

Как бы умело ни были подобраны условия обработки мембранных белков детергентами, последние всегда в той или иной мере денатурируют белковые структуры. Однако наиболее губительным действием обладают детергенты, в состав которых входят длинноцепочечные неразветвленные жирнокислотные цепи, по-видимому, предоставляющие слишком много возможностей для повреждающего действия разнообразных факторов. Зачастую эти повреждения являются обратимыми, и функциональную активность белка можно полностью или частично восстановить после удаления детергента при замене его на природные липиды или их смеси. Это наблюдение верно даже для такого сильного модификатора мембранных структур, каки.м является додецилсульфат натрия. [c.92]

Так происходит в идеальном случае, когда неспецифическое связывание пренебрежимо мало. Чтобы проверить, так ли это, подвергают фильтрации ряд разведений антител (с титрами от 1 до 50) и сравнивают титры до и подле фильтрации. Если обнаружится, что часть антител задержана мембраной, то эксперимент повторяют с фильтрами, подвергнутыми до помещения в фильтрующую ячейку предварительной обработке мембраны выдерживают (не погружая ) на поверхности 0,2%-ного раствора желатины в буфере в течение 10 мин при комнатной температуре и подсушивают между двумя листами впитывающей бумаги. Такая обработка обычно уменьшает неспецифическое связывание до приемлемого уровня, но она примерно вдвое увеличивает время фильтрации. Если эта обработка не вполне удовлетворительна, мембраны выдерживают на 0,1%-ном растворе глобулина, гомологичного исследуемому, но не содержащего специфических антител. Последняя процедура дороже и еще больше снижает скорость фильтрации, но она практически полностью исключает неспецифическое связывание. После предварительной обработки мембран желатиной или глобулином их можно хранить в сухом виде (между двумя листами фильтровальной бумаги) и использовать по мере надобности. [c.35]

Примечания. 1. Примерами процессов кондиционирования могут служить термический отжиг или обработка раствором, сходным с тем, который должен быть подвергнут разделению. 2. Кондиционирование отличается от обработки мембран (см. 20) тем, что обработку проводят до контактирования мембраны с сырьем, тогда как кондиционирование может осуществляться с использованием реальных разделяемых растворов. [c.482]

Глюкозо-6-фосфатаза — интегральный белок микросомальных мембран, Активный центр фермента обращен внутрь везикул, поэтому для полного выявления его активности и изучения кинетических свойств необходима обработка мембранного препарата поверхностноактивными веществами — детергентами. Детергенты представляют собой специальную группу липидов, относящихся к классу растворимых амфифиль-ных соединений, т. е. соединений, имеющих в своей структуре как гидрофильные, так и гидрофобные участки. В зависимости от пространственной структуры, соотношения гидрофильной и гидрофобной зон, наличия заряженных групп детергенты обладают различным характером действия на биологические мембраны от мягкого, вызывающего лишь дезориентацию структурных компонентов мембран, до значительно выраженной их солюбилизации и растворения мембран. [c.370]

ГЛБ 16,7. ККМ 60 мг/л. Сл. ПАВ иногда использ. для дополнительной обработки мембран с целью удаления периферийных белков [ВВА 455, 796 (1976)]. [c.238]

Шмидер [68] обрабатывал мембрану из целлофана следующим образом мембрана помещалась в смесь псевдокумола с 10% диметилформ-амида. Затем температура постепенно повышалась до 40, 60, 80, ЮО и 120° С. При каждой температуре мембрана выдерживалась не менее 48 час. После такой обработки мембрану можно охлаждать и вновь нагревать без предварительной обработки. Ориентировочные опыты показали, что при такой обработке пористость мембраны изменяется незначительно. Если исходная мембрана была проницаема для молекул с мол. весом 6000, то обработанная мембрана проницаема для молекул с мол. весом ниже 8000. [c.197]

Обработкой мембран в форме сульфанилфторида щелочью их превращают в сульфированную форму [c.165]

Опыты проводились на катионитовых мембранах СБС и МК-40 и анио-нитовой мембране ЭДЭ-ЮП, а такнш на двойных мембранах в 5-10- Л растворе КС1 з. Методика измерения потенциалов Евр описана в [1], обработка мембран в [6]. На рисунке представлены экспериментально полученные и рассчитанные по уравнению (9)4 (п =3) кривые спада потенциалов во времени в координатах Евр (t)/E%p (0) — t, где Е%р (0) — значение потенциала через 0,5 сек и Е вр (О — через i сек после выключения тока. Наблюдается удовлетворительное совпадение вычисленных и измеренных кривых спада потенциалов во времени, что подтверждает пра-ви.тьность сделанных допущений о механизме спада потенциалов Ерр. [c.82]

Электронно-лучевая обработка мембран позволяет получать на нх поверхности полосы пониженной прочности с высокой точ1Иэстью по ширине и глубине полос. Требуемое утонение для нолучеиия указанных полос может быть обеспечено на ,1ембра-нах практически 13 всех применяемых в настоящее время материалов. Предлагаемый способ особенно применим для обработки весьма тонких мембран, так как для получения у них указанных полос достаточно утонение на несколько сотых долей мм. [c.66]

Методика долговременных испытаний предусматривает выдержку мембран в 3 н. НКОз при комнатной температуре в течение четырех месяцев ускоренная методика — выдержку мембран в 3 н. HNOз при комнатной температуре в течение 15 дней и дальнейшую обработку мембран в 3 н. НКОд на кипящей водяной бане в течение 6 ч. По окончании испытаний определяют стандартные характеристики мембран, [c.7]

Периодическая промывка аппарата раствором щелочи в процессе электроионитовой очистки раствора патоки давала возможность удалять из мембраны большую часть сорбированных органических веществ, но все же удельное электросопротивление мембран оставалось заметно выше исходного. В статических условиях были проведены опыты по десорбции органических веществ 0,1 н. растворами щелочи, кислоты и хлорида натрия. Наилучшие результаты были достигнуты при обработке мембран раствором щелочи, менее эффективна обработка раствором кислоты и затем раствором хлорида натрия. Вероятно, это могКно объяснить различной химической природой органических соединений, содержащихся в патоке, а также размером их молекул [11]. Характерно, что максимальную набухаемость мембраны имеют в растворе кислоты, затем в растворе хлорида натрия и самую меньшую в растворе едкого натра. Следовательно, при обработке раствором едкого натра из мембраны десорбировались более низкомолекулярные органические соединения, которые, вероятно, находились в преобладающем количестве в растворе патоки, в то время как при обработке кислотой десорбировались более высокомолекулярные органические соединения. [c.73]

Исследовался также метод удаления осадка обработкой мембран ультразвуком в воде и в растворе поверхностно-активных веществ. Объектом испытания служили мембраны, загрязненные при опреснении воды в г. Росвелле (состав осадка см. в табл. 6.1). Как показали эксперименты, производительность мембран ни в одном из опытов не восстанавливалась, визуально наблюдаемое удаление осадка с поверхности мембран было незначительным. Результат эксперимента признан отрицательным. [c.137]

В практике обессоливания воды обратным осмосом наибольшее распространение для очистки поверхности полупроницаемых мембран и для восстановления их свойств получили химические методы, заключающиеся в обработке мембран и промывке аппаратов растворами различных реагентов. Эффективность этих методов обуаповлена правильностью подбора реагента, предназначг чюго для перевода отложений в растворимую форму. Для решения опроса о применимости какого-либо вещества для промывки аппарат необходимо знать структуру и состав загрязнений, которые отложились на поверхности мембран, а также знать стойкость мембран в растворах этого вещества. [c.138]

Одним из первых исследований, посвященных систематическому поиску реагентов для промывки ацетилцеллюлозных мембран, была упомянутая работа. Для удаления с поверхности мембран отложений, химический состав которых представлен в табл. 6.1, были испытаны растворы ряда веществ. Предполагалось, что кислоты окажутся эффективными для очистки мембран от отложений карбонатов и гидроксидов, глюконаты и цитраты — для удаления соединений железа, трилон Б - главным образом для удаления соединений щелочно-земельных металлов (при pH 6), гидросульфит натрия — для очистки мембран от соединений железа и марганца. При проведении экспериментов мембрана с осадком помещалась на 1 или 16 ч в исследуемый раствор, который интенсивно перемешивался. При обработке мембран в течение одного часа указанными растворами положительных результатов получено не было. Отложения практически не удалялись с поверхности мембран во всех случаях, кроме обработки в растворе дитионита натрия. Последний реагент смывал загрязнения почти полностью, однако на обратноосмотические свойства мембран это никак не отразилось. При шестнадцатича-совой обработке этими же реагентами производительность мембран также не изменилась, за исключением использования для промывки растворов тринатрийцитрата и глюконата натрия, когда производительность мембран несколько увеличилась, а их селективность осталась на прежнем уровне. [c.138]

В заключеш1е исследователями бьша проведена комплексная обработка мембран, состоящая из часовой промывки 5%-м раствором дитионита натрия с последующей выдержкой в течение 30...60 мин в воде с температурой 70°С. Результаты эксперимента представлены в табл. 6.2. Приведенные данные показывают значительное увеличение селективности и производительности, причем большему повышению солезадержания соответствует меньший рост производительности, что связано с уменьшением эффективного радиуса пор, вызванного термообработкой мембран. [c.139]

Приведенные результаты, многочисленных исследований показывают, что подбор реагентов и режимов обработки мембран для восстановления их характеристик должен осуществляться индивидуально для каждой эксплуатируемой станции обессоливания. Вместе с тем фирмой Дюпон осуществлено обобщение большого производственного опыта эксплуатации аппаратов с полыми волокнами, которое позволило составить рекомендации по их промывке при образовании отложений различного состава . Для удаления отложений гидроксидов железа, никеля и меди фирма рекомендует промьшку растворами, содержащими 2% лимонной кислоты (возможна также добавка 2% трилона Б) с корректировкой pH до 4 аммиачной водой или 4% бисульфита натрия. [c.144]

Наглядным примером мембранного контроля фоточувствительности ферментов является изменение поперечного сечения инактивации эритроцитарной ацетилхолин-эстеразы после предрадиационной обработки мембран фосфолипазами А, С и 6 или удаления из них значительных количеств холестерина, определяющего текучесть липидной фазы. Влияние мембранного окружения на фоточувствительность фермента реализуется, по крайней мере, двумя путями через изменение конформационного состояния макромолекулы за счет межмолекулярных взаимодействий и повреждение белка продуктами фотохимических превращений липидов (см. гл. XIV). [c.268]

При обработке мембран сильными диссоциирующими агентами, например б М хлористым гуанидином [497], 8 М мочевиной в присутствии 2-меркаптоэтанола [591], смесью фенол—уксусная кислота — вода (2 1 1 масса/объем/объем), содержащей 2 М мочевину [248, 1270], или 88%-ной муравьиной кислотой [896, ИМ], солюбилизируется 50—100% мембранных белков. [c.316]

Обработка мембран сшивающими агентами (такими, как, диметилсуберимидат [594, 781], формальдегид, глутаровый альдегид [1227] или диметнладипи-мидат [629]) Приводит к формированию межмолекулярных связей между белками, расположенными в мембранах близко друг от друга. Образующиеся при этом высокомолекулярные соединения можно обнаружить с помощью электрофореза в полиакриламидном геле с ДСН. На рис. 97 показано, что в процессе обработки мембран формальдегидом некоторые белки (обозначенные как 2-1, 2-2, 2-3 и 4-2) постепенно исчезают и вместо них появляются новые зоны, расположенные в области высокомолекулярных белков. [c.319]

Тем не менее липиды абсолютно необходимы для проявления ферментативной активности Са-АТФазы, Обработка мембран саркоплазматического ретикулума фосфолипазами и последующее удаление продуктов расщепления фосфолипидов приводят к подавлению АТФазы при внесении экзогенных липидов активность фермента восстанавливается (А. Martonosi el al,, 1968). [c.55]

Фторид, по-видимому, может стимулировать Л -белок, не занятый гуаниловыми нуклеотидами, так как после обработки мембран эритроцитов индюка ЭДТА в присутствии изопротеренола, вытесняющей гуаниловые нуклеотиды, фторидная активация в присутствии Mg + все равно происходит [141]. Фторид не изменяет па->аметров связывания нуклеотидов в регуляторном участке Л -белка 127]. Однако гуаниловые нуклеотиды могут модулировать величину фторидной активации, так как посадка ГМФ в свободном нуклеотид-связывающем центре Л/-белка предотвращает ее [127] ГДФрЗ также мешает фторидной стимуляции [127, 138] и возвращению фторидной чувствительности мембранам клеток сус при реконструкции [126]. Однако другие нуклеотиды (ГДФ, ГТФ,, GppNHp) увеличивают фторидную стимуляцию [127, 142]. Фторид способствует также ассоциации оккупированного ГДФ Л -бел-ка с каталитическим [28, 118]. Таким образом, в механизме активирующего действия фторида по-прежнему остается много неясных моментов. На наш взгляд, особенно интересным является тот факт, что в присутствии ГДФ фторид может переводить Л/-бе-"ок в активированное состояние, т. е. отсутствие у-фосфата у взаимодействующего с Л/-белком нуклеотида еще не является абсолютно ограничивающим активацию фактором. [c.112]

Протеинкиназы принято классифицировать по бел- ковым субстратам, фосфорилирование которых они катализируют. Свойства протеинкиназ, фосфорилирующих кислые (например, казеин) и щелочные (например, гистон Н ) белки, существенно разные. Удобна также классификация протеинкиназ по аминокислотным последовательностям, которые они узнают на белке-субстрате. При этом также удается объединить в одну группу ферменты со сходными физико-химическими и каталитическими свойствами. Подразделение протеин- киназ на растворимые и связанные с мембранами представляется целесообразным и удобным, однако после обработки мембран растворами высокой ионной силы или детергентами можно солюбилизировать протеинки-иазу, по всем критериям идентичную растворимой . Не исключено, что некоторые протеинкиназы образуют в клетке непрочную, обратимую связь с мембраной и существует динамическое равновесие между свободной и связанной формой одного и того же фермента. [c.193]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология