Концентрация в буферных растворах

Практически емкость буферного раствора определяется числом молей эквивалентов сильной кислоты или сильного основания, которое изменяет pH раствора на единицу (рис. 2.2). Чем больше кислоты содержит буферный раствор, тем больше основания можно добавить, прежде чем pH раствора изменится на единицу. Аналогично, чем больше концентрация буферного раствора по основанию, тем больше емкость буфера по отношению к кислоте. Буферная емкость максимальна при условии, когда концентрации компонентов равны, т. е. при рН = р/Сд, и зависит от общей концентрации буферного раствора она тем больше, чем больше эта кон- [c.29]

Решение. Общая концентрация буферного раствора равна [c.59]

Токи полярографии. В зависимости от того, какая из стадий электрохимической реакции является наиболее медленной (разд. 4.1.3.2) —диффузия или химическая реакция, происходит ли адсорбция или каталитический процесс, различают диффузионный, кинетический, адсорбционный и каталитический токи. При этом возможен переход от одного вида тока к другому. Для распознавания каждого вида тока используют зависимости от концентраций деполяризаторов и от высоты столба ртути и исследуют влияние pH, концентрации, буферных растворов, температуры. [c.125]

Обозначим сумму концентраций буферного раствора как с [c.55]

Таким образом, по мере увеличения концентрации буферного раствора возрастает его способность сопротивляться изменению pH при добавлении кислот или щелочей. Эта способность количественно может быть охарактеризована буферной емкостью раствора, т. е. числом эквивалентов кислоты или щелочи, которое следует добавить к 1 л буферного раствора, чтобы понизить (при добавлении кислоты) или повысить (при добавлении щелочи) его pH на единицу. [c.49]

В подвижную фазу добавляют иногда органические растворители (метанол, этанол, ацетонитрил, диоксан), действие которых аналогично добавлению растворителей в обращенно-фазной хроматографии при увеличении их количества степень удерживания образца снижается, и этот эффект более силен для менее полярных растворителей. Добавлением органических растворителей можно добиться также изменения селективности системы. Таким образом, снижают время удерживания в ионообменной хроматографии следующие факторы 1) повышение температуры 2) повышение концентрации буферного раствора 3) снижение степени ионизации вещества за счет изменения pH. [c.37]

Работа 2. Конические колбы на 150 мл. Пипетки на 100 мл. Бюретки на 50 мл. Растворы НС1—0,1 н., трилона Б—1 и. (титр раствора определяется по раствору соли кальция или магиия -известной концентрации). Буферный раствор (к 100 мл 20%-ного раствора NHi l добавляют 100 мл 20%-ного раствора NHiOH, объем доводят дистиллированной водой до 1 л). Растворы индикаторов метиловый оранжевый, эриохром черный Т. [c.178]

Условия опыта температура 52° С ионная сила 1,0М(КС1) значения констант скоростей являются экстраполированными к нулевой концентрации буферного раствора [c.37]

Степень удерживания образца снижается с увеличением ионной силы подвижной фазы и увеличивается с увеличением ионообменной емкости сорбента. Ионная сила подвижной фазы возрастает при возрастании концентрации буфера и сохранении неизменным pH или при добавлении соли. Важна также концентрация буферных растворов, так как в растворе наблюдается конкуренция между ионами образца и буфера. Уменьшение концентрации буферного раствора увеличивает сродство смолы к образцу, что приводит к увеличению времени удерживания. Концентрация буферного раствора колеблется от 0,001 до 6 моль/л, причем верхняя граница определяется растворимостью соли, используемой в качестве буфера, а нижняя — самой буферной силой, так как в слабом буферном растворе нельзя контролировать уровень pH. Сильных буферных растворов также следует избегать, так как возможно выпадение осадка и забивание колонок. Сила растворителя зависит от типа противоиона, причем степень удерживания образца увеличивается в ряду, обратном ряду активности ионов, приведенному выше. [c.36]

При работе в градиентном режиме желательно, чтобы к концу разделения ионная сила буферного раствора повышалась. Начинают работать с концентрации буферного раствора 0,1 М, так как оптимизация разделения при работе с низкими концентрациями (0,001 М) отнимает много времени. Если при этих условиях вещества не удается удовлетворительно разделить, то дальнейшее улучшение разделения происходит за счет снижения концентрации буферного раствора, изменения pH или температуры шаговым методом, приводящих к повышению значений к и увеличению времени удерживания. [c.39]

Одним из затруднений, наиболее часто встречающихся в ион-парной хроматографии, является нестабильность колонок, особенно в обращенно-фазном режиме. В колонках с обычной фазой наблюдается постепенный унос противоиона из неподвижной фазы, однако этого можно избежать, получая ионные пары до введения образца в хроматограф. Большим недостатком ион-парной хроматографии является образование хвостов. Причиной этого является либо диссоциация ионных пар, которая уменьшается при повышении концентрации противоиона, либо неправильная концентрация буферного раствора. Иногда удается уменьшить затягивание зон и увеличить эффективность разделения, перейдя от обычной ион-парной хроматографии к хроматографии с использованием поверхностно-активных веществ. [c.80]

При разделениях методом ионообменной хроматографии силу растворителя меняют, увеличивая или уменьшая концентрацию буферного раствора или меняя pH, в некоторых случаях используют модификацию органическими веществами. [c.13]

Иная ситуация имеет место при проведении эксклюзионной хроматографии в водных средах. Из-за специфических особенностей многих разделяемых систем (белки, ферменты, полиэлектролиты и др.) и разнообразия применяемых сорбентов существует очень много вариаций состава подвижной фазы для подавления различных нежелательных эффектов [34, 35]. Общими приемами модификации является добавка различных солей и применение буферных растворов с определенным значением pH. В частности, поддержание рН=<4 дает возможность подавить слабую ионообменную активность силикагелей, обусловленную присутствием на их поверхности кислых силанольных групп. Требуемая ионная сила подвижной фазы достигается при концентрации буферного раствора 0,05-0,6 М оптимальную концентрацию подбирают экспериментально. Для предотвращения ионообменной сорбции катионных соединений наиболее часто используют такой активный модификатор, как тетраметиламмонийфосфат при рН=3. Однако при разделении некоторых белков могут проявляться гидрофобные взаимодействия, в свою очередь осложняющие эксклюзионный механизм разделения. Те же эффекты иногда проявляются и при работе с дезактивированными гидрофильными сорбентами. Для их устранения к растворителю добавляют метанол. Иногда в водную подвижную фазу вводят полярные органические растворители, полигликоли, кислоты, основания и поверхностно-активные вещества. [c.48]

Следует отметить, что анионы буферных растворов, применяемых для установления pH внешнего раствора, не должны ни вытеснять анионы, сорбированные ионообменниками, ни влиять иа их коэффициенты распределения. Этим эффектом можно пренебречь при очень низкой концентрации буферного раствора и малой степени сродства анионов этого раствора к ионообменнику. [c.51]

Разработка метода определения опиатов на основе латексной агглютинации. На основе полученных реагентов - антител к опиатам и конъюгата морфина меченого латексом, был разработан метод для выявления опиатов в биологических жидкостях организма с использованием латексной агглютинации. Для этого непосредственно перед работой разводили латексный конъюгат до 1% концентрации буферным раствором. Специфичные антитела против опиатов разводили в плашке, используя серию двойных последовательных разведений. Для проведения опыта в микрокамеры с коническими лунками вносили по 10 мкл сыворотки каждого разведения и быстро добавляли равную аликвоту раствора латекса, модифицированного морфином или конъюгатом морфин-овальбумин. В качестве контроля использовш1и лунку, в которую не добавляли антитела. Интенсивность реакции агглютинации оценивали через 1 час по 4-крестовой схеме [2]. Из полученных результатов выбра1ш условия для проведения реакции ингибирования. Для этого использовали концентрацию антигена на латексе 100 мкг/мл и 50 мкг/мл, а разведения сыворотки соответствовали 1 16, 1 32 и 1 64, Морфин вносили в лунки после серии пятикратных разведений в интервале концентраций от 500 мкг/мл до 200 нг/мл, В каждую лунку вносили 7 мкл антиопиатной сыворотки, 7 мю1 раствора морфина соответствующей концентрации и 7 мкл раствора латекса. Контрольные [c.202]

Замена бензола более полярными растворителями для ТТА вызывает увеличение экстракции и сдвигает граничные значения pH в более кислую область. Например, из Ш ацетатного буфера с pH 5 (концентрация буферного раствора оказывает значительное влияние на экстракцию) лантан и другие рзэ количественно экстрагируются в 0,1 М раствор ТТА в гексоне (метилизобутилкетон), тогда как Сг(У1), Ва, Mg и щелочные элементы остаются в водной фазе. При pH 1,5 рзэ не извлекаются, чем можно воспользоваться для отделения О, ТЬ, Ре и Си [1433]. [c.137]

Для практических целей наиболее важной характеристикой служит коэффициент распределения, т. е. отношение аналитической (суммарной) концентрации вещества в органической фазе к аналитической (суммарной) концентрации экстрагируемого компонента в водной фазе. Если известна константа экстракции, можно рассчитать коэффициент распределения для различных условий, например для различных значений pH и т. п. Однако константы экстракции установлены лишь для немногих случаев, например для извлечения комплексов металлов с дифенилтиокарбазоном, и небольшого количества некоторых систем. Иногда из-за экспериментальных трудностей глубокого изучения систем ограничиваются установлением коэффициента распределения. Значение коэффициента распределения относится к определенному, часто очень узкому интервалу условий — прежде всего к pH и солевому фону химический состав и концентрация буферных растворов, а также различных маскирующих веществ также нередко сильно влияют на численное значение [c.46]

Изменение подвижной фазы pH процент органического модификатора концентрация буферного раствора концешрация добавок (ион-парпого реагента) профиль градиента Ко юнка неуравновешенна [c.493]

Ароматические и основные аминокислоты на пластинке Фик-сиоц 50 X 8 разделяются при одномерной хроматографии в цитратном буферном растворе pH 5,23 с концентрацией Ыа" 0,35 М (буферный раствор В, табл. 10), который используется в двухколоночной системе аминокислотного анализатора. Типичная хроматография такого разделения представлена на фиг. 49. Колебания pH и концентрации буферного раствора не существенны для фракционирования. Хроматографию проводят при комнатной температуре без предварительного уравновешивания. В камеру наливают слой буферного раствора высотой примерно 1 см. При хроматографии фронт буферного раствора должен подняться на высоту 15 см. Если пластинка не уравновешена, на это уходит около 2 ч. На уравновешенной пластинке (см. буферный раствор для уравновешивания, табл. 10) это происходит за несколько ми-нут. На примере разделения ароматических и основных аминокислот можно оценить Лиз высокую разрешающую спо-Гис обность ионообменной хроматографии в тонком слое по сравнению с соответствующей колоночной техникой. Известно, что на малой колонке в этом же буферном растворе (т. е. 0,35 М Ыа+, pH 5,23) ароматические аминокислоты не отделяются друг от друга. [c.250]

Форма полярографических воли некоторых иитросоединений, например 1-(4-бромфенил)-2-иитрофенола, зависит от концентрации буферного раствора при низких концентрациях волна становится более крутой, чем при высоких концентрациях Это объясняется каталитическим влиянием продукта восстановления на протоиирование нитросоединеиня, что облегчает восстановление нитрогруппы. Некоторые соединения сходного строения, например эфедрин, оказывают аналогичный каталитический эффект, в то время как для других, например для циклогексил-амина, этот эффект не наблюдается [17]. [c.291]

Влияние содержания метанола, pH п [325] концентрации буферного раствора на величины удерживания. Механизм удерживания на октадецилсиликагеле Разделение энантиомеров в нормально- [391] фазовой системе, динамически модифицированной оптически активной камфорсульфоновой кислотой Определение в плазме и моче. Иссле- [ПО] дование стабильности в различных системах [c.296]

Определение скорости растворения введено впервые в XVIII издание Фармакопеи США (с. 934) и в XIII издание Национального формуляра (с. 802), в соответствии с которыми обязательным является определение скорости растворения 12 препаратов, осуществляемое двумя методами в двух различных приборах. На рис. 1 изображен прибор для определения скорости растворения. В сосуд наливают растворяющую среду в количестве 750—900 мл, в качестве которой в зависимости от природы препарата используют дистиллированную воду, раствор соляной кислоты различной концентрации, буферные растворы и т. д. Через отверстия в крышке сосуда вводят термометр, трубку для взятия проб и цилиндрическую корзинку из нержавеющей стали, насаженную на ось мотора. Исследуемую лекарственную форму помещают в цилиндрическую корзинку. Длина корзинки 3,6 см, диаметр 2,5 см. Размер отверстий в корзинке 40 меш (около 0,351 мм). Скорость вращения корзинки устанавливают в зависимости от свойств препаратов — от 25 до 200 об/мин. В процессе определения поддерживают постоянную температуру растворяющей среды (37 0,5°С). Через установленные интервалы времени с помощью введенной в сосуд трубки отбирают для анализа пробы — по 2—3 мл на определение содержания лекарственного вещества. Взятый объем растворителя тотчас же восполняют новым. Исследуемая лекарственная форма соответствует требованиям на скорость растворения в том случае, если за известные интервалы времени из нее переходит в раствор установленное количество препарата. И время, и количество препарата, перешедшего в раствор, в этом случае варьируют в зависимости от свойств, а также целей исследования. [c.23]

Скорость изменения окраски в конечной точке титрования. Кинетическая инертность или лабильность акваионов обусловливает выбор способа титрования — прямое или обратное. Образование лабильных комплексов ионов с металлоиндикатором обеспечивает быстрое изменение окраски раствора в конечной точке титрования. Соединение кобальта с ПАН-2 кинетически инертно, поэтому ПАН-2 не используют в качестве индикатора при определении кобальта прямым методом. На скорость изменения окраски раствора в конечной точке титрования влияют природа и концентрация буферного раствора. Например, была изучена скорость вытеснения свободного индикатора (Ind) при взаимодействии комплекса меди с металлоиндикатором и титрантом Y [755] [c.158]

Кинетика гидролиза (2.139) исследована в работе [244]. В ходе реакции быстро образуется соединение (2.138), которое затем медленно разлагается. Константа скорости, приведенная к нулевой концентрации буферных растворов, линейно увеличивается с ростом pH. Константа скорости реакции, катализированной гидроксил-ионом, составляет 2 10 для стадии образования (2.138) и 2 10 л/моль с — для гидролиза (2.138). И здесь корреляция Бренстеда дает р = 1,05, что свидетельствует о переносе протона в лимитирующей стадии в направлении, неблагоприятном с точки зрения термодинамики. Наличие ими-даЗольной группы в (2.139) ускоряет стадию образования (2.138) в 5 X X 10 раз. Эффективность ядра имидазола и имидазолил-аниона как нуклеофилов внутримолекулярного действия в циклизации (2.13 равна соответственно 1,6 10 и 7 10 моль/л [244]. [c.111]

Скорость реакции определялась путем УФ-измерения количества выделившегося я-нитрофенола и по реэультирующему вращению плоскости полярцза ции образующимся аминоэфиром. Это реакция первого порядка по концентрации основания, когда Н—5Н представляет собой НОСН СН ЗН от концентрации буферного раствора скорость реакции не зависит. Следовательно, когда концентрация аниона В —5 мала,Н —5П выступает как нуклеофил и на реакцию не влияет кислотно-основный катализ. Когда в качестве Н 5Н использовался оптически активный краун-эфир, содержащий 5Н-группу, отношение к/к достигало 10 (при Н С Н СНз). [c.305]

Максимум возбуждения находится при 450 нм, максимум флуоресценции — при 503 нм (рис. 21). Оптимальное значение pH 10,7. Для создания необходимой среды применяют аммиачный буферный раствор. Интенсивность флуоресценции постоянна при концентрации буферного раствора 0,3—0,7 М. Определение проводят в смеси диметилформамида с водой (9 1). Постоянная интенсивность флуоресценции наблюдается через 15—40 мин. после перемешивания растворов. Линейная зависимость между интенсивностью флуоресценции и концентрацией магния имеет место при 0—5 мкг Мд/10 мл. Реагент применяют в виде раствора в диметилформамиде, при хранении в темной склянке этот раствор сгоек в течение 3 дней.. [c.162]

На полупериод изменения окраски существенно влияют не только pH, природа и концентрация буферного раствора, но и природа самого металлоиндикатора. Например, при титровании меди в присутствии ТАН-2 или ТАР Tl/, С 2 с. При определении никеля (pH 5) в присутствии 2-(2-пиридилазо)-4-метилфенола = 380 -н- 7000 с, а в присутствии 2-(2-тиазолилазо)-4-метилфенола (pH 6) = = 10 -ь 26 с. Для уменьшения т,/, рекомендуется вводить реагенты, образующие смешанолигандные лабильные комплексы (в табл. 50 приведены Ti/, для системы медь(Н)—ПАН-2 при pH 6 на фоне [c.158]

В ряде работ отмечено влияние природы и концентрации буферного раствора на скорость предшествующей электрохимическому процессу нротонизации и из опытных данных, полученных [c.32]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология