Групповые вещества крови выделение

Внеклеточные углеводсодержащие биополимеры играют, по-видимому, существенную роль и в защитных реакциях растений. Подобные функции выполняют, вероятно, слизи, содержащиеся в оболочке поверхностных клеток корня, и камеди, выделяющиеся при механическом повреждении ствола растений (о слизях и камедях см. гл. 20). Способность некоторых растительных полисахаридов ингибировать агглютинацию эритроцитов под действием агглютининов крови соответствующей группы указывает на аналогию их с групповыми веществами крови в организме животных. Имеются также сообщения о выделении из растений гликопротеина, близкого по составу к гликопротеинам сыворотки , и липополисахарида, близкого к липополисахаридам грамотрицательных бактерий . Такие соединения могут играть важную роль в иммунитете растений. [c.606]

В некоторых растениях содержатся белки, способные агглютинировать эритроциты. Эти белки были названы фитогемагглютининами. В качестве первого такого белка в 1919 г. Самнером был выделен кон-канавалин А. Самнер предположил, что данные белки связываются с углеводными остатками гликопротеинов или гликолипидов групповых веществ крови, содержащимися в оболочке эритроцитов. Это предположение в дальнейшем подтвердилось. Была установлена настолько высокая специфичность фитогемагглютининов, что при помощи их в серологических исследованиях определяют группы крови. Позже (в 1954) фитогемагглютинины вследствие их высокой специфичности стали называть лектинами (от лат. слова legere — различать, выбирать). [c.97]

Соотношение галактозы и гексозамина в групповых веществах крови, выделенных из жидкости кисты яичника [c.173]

Аминокислотный состав групповых веществ крови, выделенных из жидкости кисты яичника человека 61) [c.174]

Методы выделения групповых веществ крови различаются в зависимости от источника. Так, например, для их выделения из жидкости кисты, ее лиофилизуют и экстрагируют 95%-ным раствором фенола при комнатной температуре большая часть группового вещества крови остается в нерастворимом осадке в достаточно чистом состоянии . При выделении этих гликопротеинов из слизистой желудка приходится предварительно обрабатывать исходный материал пепсином или подвергать его автолизу в течение долгого времени для освобождения от сопутствующих белков. Полученный после осаждения спиртом порошок экстрагируют 90— 95%-ным раствором фенола, в который в данном случае переходит групповое вещество из фенольного раствора гликопротеин осаждают спир-том . [c.581]

Недавно был изучен аминокислотный состав 21 очищенного препарата групповых веществ, выделенных из жидкости кисты яичника [61]. Общее содержание аминокислот изменяется в разных препаратах от 7,4 до 27%, но, если количество каждой аминокислоты выразить в молях на 100 молей общего содержания аминокислот, то получатся величины, примерно одинаковые для всех препаратов, независимо от их групповой специфичности (табл. 4). Общее количество треонина, серина, пролина и аланина составляет примерно две трети общего содержания аминокислот. В групповых веществах обнаружены следы серусодержащих и ароматических аминокислот. По аминокислотному составу групповые вещества крови сходны с глико- [c.173]

Это соединение выделено из продуктов деградации многих природных соединений, в том числе олигосахаридов молока [18] и групповых веществ крови [19, 20]. Полученный синтетическим путем дисахарид идентичен соединению, выделенному из природных источников [10]. [c.360]

Автолиз или ферментативное переваривание с помощью пепсина является необходимой начальной стадией обработки при выделении групповых веществ крови из тканей или слизистой оболочки [29, 48]. Если для выделения групповых веществ используют жидкость кисты яичника или меконий, то переваривание белков необязательно, однако в некоторых случаях, при плохой растворимости образующегося гелеподобного материала, ферментативное переваривание увеличивает растворимость и тем самым повышает выход групповых веществ. [c.170]

В табл. 2 приведен состав групповых веществ крови А, В, И и Ье (по четыре препарата для каждого вещества) и двух препаратов с АБ-актив-ностью, выделенных из жидкости кисты яичника. [c.171]

Групповые вещества, выделенные из слюны, не были получены с такой же степенью очистки, как препараты из жидкости кисты яичника, поскольку от одного индивидуума трудно получить большие количества слюны. Однако идентичность качественного и сходство количественного составов по углеводным [29, 70] и аминокислотным [77] остаткам показывают, что групповые вещества крови из слюны и жидкости кисты яичника имеют примерно одинаковый состав. [c.174]

Данные, полученные с помощью непрямых методов — торможения серологической и ферментативной активности простыми соединениями известного строения и последовательного ферментативного расщепления,— дают очень ценную информацию о природе детерминантных групп в веществах крови. Однако более однозначные данные можно получить путем выделения и идентификации активных фрагментов непосредственно из групповых веществ. Фрагменты, выделенные из продуктов частичного кислотного гидролиза групповых веществ крови человека. Отщепление от групповых веществ крови фукозы и сиаловой кислоты в условиях кислотного гидролиза, при которых происходит лишь незначительное отщепление других компонентов, указывает на то, что эти сахара являются концевыми или имеют латеральное расположение по отношению к основным углеводным цепям. При гидролизе групповых веществ крови человека 1 н. уксусной кислотой при 100° в течение 16 час независимо от их специфичности освобождается около 95% общей фукозы в виде свободного сахара [53]. Обработка групповых веществ Ье кислотой в очень мягких условиях (0,1 н. серная кислота, 80°, 1 час) приводит к освобождению всей сиаловой кислоты [68]. В продуктах частичного кислотного гидролиза групповых веществ олигосахариды, содержащие фукозу или сиаловую кислоту, не найдены если такие олигосахариды и образуются, то, очевидно, в очень незначительных количествах. [c.198]

Фрагменты, выделенные из продуктов частичного щелочного гидролиза групповых веществ крови человека. Выделение и идентификация фрагментов [c.202]

Находящиеся на поверхности эритроцитов и клеток различных тканей А- и В-антигены не экстрагируются водой или солевыми растворами. Они могут диссоциировать при экстракции мембран эритроцитов органическими растворителями [28, 29]. Ранее было показано, что групповые антигены крови существуют в двух формах растворимой в спирте, связанной с мембранами эритроцитов и клетками тканей, и растворимой в воде, находящейся в биологических жидкостях и секретах [30, 31]. При повторной экстракции и последующем фракционировании вещества, выделенного из клеток с помощью органических растворителей, вещества А и В эритроцитов моншо получить в водорастворимой форме. Однако предположение о существовании двух форм А- и В-антигенов, очевидно, справедливо, так как последними работами было убедительно показано, что групповые вещества эритроцитов представляют собой глико липиды, содержащие жирные кислоты, сфингозин и углеводные компоненты [32—36]. С другой стороны, уже давно установлено, что выделяющиеся групповые вещества состоят из углеводных и аминокислотных остатков [37, 38]. В настоящем обзоре рассматри- [c.168]

Состав активных олигосахаридов, выделенных из группового вещества А крови человека [108] [c.199]

Ингибирование осаждения или агглютинации послужило критерием для установления олигосахаридных структур, обусловливающих специфичность А-, В-, 0(H)-, Le - и ЬеЬ-антигенов груин крови. Как только из групповых веществ крови выделяют и идентифицируют новые олигосахариды или как только становятся доступными синтетические вещества, их испытывают на ингибирующую способность строение антигенных детерминант выводят затем из структуры наиболее сильного ингибитора. Изучение ингибирования показало, что среди олигосахаридов, выделенных из групповых веществ крови, до сих пор самым эффективным ингибитором системы А-анти-А является трисахарид a-N-ацетил-в-галактоз-аминил-(1 -> 3)-Р-в-галактозил-(1 3)-]М-ацетил-в-глюкозамин [46 [, а системы В-анти-В — дисахарид 0-а-в-галактоииранозил-(1 3)-в-галак-тоза [47]. См. исчерпывающие обзоры, посвященные роли иммунохимии в выяснении структуры групповых веществ крови [26, 48]. [c.436]

Перечислив все теоретически возможные типы связей полисахаридных и полипептидных цепей, мы в заключение хотим подчеркнуть, что из них окончательно доказаны (выделением соответствующих фрагментов) пока лищь типы 2,3 и 7 (258). Вместе с тем надо указать, что ряд гликопротеинов, по-видимому, содержит одновременно различные типы связей (мукопротеины подчелюстных желез, групповые вещества крови и др.). [c.245]

Демонстрация ключевой роли сиаловой кислоты как компонента многих гликонротеинов в их отношении к частице вируса гриппа и к вирусной инфекции (обзор см. [186]) имела большое влияние на современные исследования гликонротеинов. Можно отметить лишь немногие направления в современном развитии исследований. Многие уже известные и очищенные гликонротеины, включая групповые вещества крови и белки сыворотки, были исследованы вновь и вскоре стала очевидной широкая распространенность гликонротеинов, содержащих сиаловые кислоты. Присутствие сиаловой кислоты во многих гликопротеинах, представляющих биологический интерес, делает необходимым развитие мягких методов их выделения и очистки, поскольку кетозидная связь, соединяющая концевой остаток сиаловой кислоты с ее партнером, чувствительна даже к 0,05 п. минеральной кислоте. Ферментативное отщепление сиаловой кислоты от гликонротеинов позволило оценить ее вклад в физические, химические и биологические свойства индивидуальных гликопротеинов. Этот подход был очень плодотворным. Так, оказалось, что сиаловая кислота ответственна за низкую изоэлектрическую точку и высокую электрофоретическую подвин ность сиалогликопротеинов, за электрофоретическую подвижность эритроцитов и раковых клеток, за вязкость гликонротеинов слюны, за биологическую активность гонадотропинов и других гормонов и за правильное функционирование фактора Кэстла. По счастливому стечению обстоятельств этот рост исследований гликонротеинов происходил в то время, когда был доступен арсенал чувствительных, мощных и специфических методов исследования состава и структуры сложных белков и определения их физических свойств и химической реакционной способности. Ниже будут рассмотрены успехи, достигнутые к настоящему времени. [c.23]

Хашимото и Пигман [55] обратили внимание на то, что в белковой части подчелюстных гликонротеинов быка, овцы и собаки, в подъязычном и цервикальном гликопротеинах быка и в групповых веществах крови А, Н и Ье из жидкостей кисты яичника количество остатков глицина, серина и треонина (существует обратное отношение между глицином и суммой окси-аминокислот) составляет примерно половину общего содержания аминокислот. Такое преобладание определенных аминокислот в гликопротеинах слизистых выделений весьма интересно и может быть использовано впоследствии для подразделения гликопротеинов на большие группы. [c.34]

Метилфенилгидразон т>-галактозы не растворяется в воде и был использован для идентификации галактозы в овомукоиде [186] и групповых веществах крови [187, 188]. L-Изомер также был выделен из природного источника при помощи этого производного [189]. Манноза и фукоза также дают нерастворимые метилфенилгидразоны и поэтому должны быть предварительно удалены [174]. Приготовление метилфенилгидразона галактозы описано Хёстом [174], а также Фраш и Исбеллом [190]. [c.186]

Б аналогичных опытах с ПЖБ (0,5 н. едкий натр. О", 4 дня) Андерсон и сотр. [21] гидрировали модифицированный гликопротеин над катализатором Адамса и выделили аланин и а-аминомасляную кислоту с выходом 20 и 35% (от теоретического) соответственно, считая на разрушенный серин и треонин. Они обнаружили также снижение содерн ания серина и треонина после обработки щелочью групповых веществ крови А и Н, выделенных из слизистой свиных желудков, и в кератосульфате хряща. [c.291]

Вещества А, В, Н и Le настолько сходны по химическому составу и строению, что для любого из них можно использовать одни и те же методы выделения. Групповые вещества гораздо более устойчивы к действию высокой температуры и органических растворителей, чем белки или гликопрото1т-ны с более высоким соотношением белковой части и углеводной, но они легко разрушаются кислотами и щелочами. Поэтому при выделении групповых веществ следует избегать применения сильных кислот и щелочей. Серологическая активность групповых веществ крови почти не изменяется при прогревании при 100° в нейтральной среде в течение довольно длительного времени, но при таких условиях происходят некоторые изменения физических свойств макромолекул, и, если желательно получить групповое вещество в нативной форме, необходимо избегать прогревания при высокой температуре. [c.169]

Групповые вещества крови А, В или Н различных животных имеют тот же качественный состав, что и групповые вещества крови человека. Количество редуцирующих сахаров, гексозаминов и азота также одинаково. Содержание фукозы в групповых веществах крови животных часто ниже, чем в аналогичных групповых веществах крови человека [29, 70]. По данным Лесковича и Кабата [79], соотношение глюкозамина и галактозамина для группового вещества А свиньи (12 препаратов) колебалось от 1,5 до 1,7, а для вещества Н (8 препаратов) от 1,9 до 2,6. Сиаловая кислота не найдена в составе групповых веществ животных. Возмон<но, она отщепляется в процессе выделения групповых веществ из слизистой желудка при обработке пепсином при pH 2 и температуре 37° в течение нескольких дней [54]. Количественный состав аминокислот у групповых веществ, выделенных из муцина свиньи, примерно тот же, что и у групповых веществ человека [61, 771. [c.175]

Гиббонс [84] предположил, что групповые вещества, выделенные из кисты яичника, могут рассматриваться как гомологичные полимеры, так как они значительно отличаются друг от друга по молекулярному весу, но имеют сходный химический состав. Подставив полученные ранее величины коэффициента седиментации и молекулярных весов этих веществ в соог ветствующие уравнения, Гиббонс показал, что форма молекул групповых веществ должна представлять неупорядоченный клубок. Позднее Крит и Найт [85] подробно изучили отношение концентрационно зависимого коэффициента Ks к характеристической вязкости [т1[ для высокоочищенных, легко растворимых групповых веществ. Величина К5 [ц оказалась постоянной и равной 1,5. Сравнив эту величину с величино11 С5/[т]] = 1,6 0,26, полученной для большого ряда синтетических полимеров, с молекулами в виде неупорядоченного клубка [86] и приняв во внимание, что для многих известных белков с компактной упаковкой и приближенно сферической формой величина А"8/[г ] близка 1,6, авторы пришли к выводу о приближенно сферической форме молекул групповых веществ крови. В дальнейшем из рассмотрения величин характеристической вязкости для сильно развернутых молекул Крит и Найт [851 заключили, что молекулы групповых [c.175]

Относительная вязкость различных препаратов групповых веществ (0,5% растворы в 0,85%-ном Na l) из кисты яичника изменялась в довольно широких пределах (от 1,14 до 5,24) [38, 54, 57—60]. Готтшалк и Томас [87] обнаружили, что после ферментативного отщепления N-ацетилнейрамино-вой кислоты при pH 6,0 значительно уменьшается вязкость раствора гликопротеина из подчелюстной железы овцы. По мнению этих авторов, после удаления N-ацетилнейраминовой кислоты молекула становится более компактной, что приводит к уменьшению вязкости. По мнению Гиббонса [76], различия гликопротеинов из слизистой шейки матки коров, выделенных в период беременности и течки, обусловлены главным образом различным содержанием в них сиаловых кислот, что в свою очередь приводит к изменению формы и размера их молекулы и, следовательно, вязкости муцина. Ферментативное удаление сиаловой кислоты из групповых веществ крови, содержащих 18% этого сахара, сопровождается уменьшением их относительной вязкости. Такое снижение относительной вязкости можно было ожидать, исходя из предполагаемого уменьшения размера их молекул. Высокоочищенные групповые вещества крови не поглощают в ультрафиолетовой области спектра (от 220 до 310 ммк) [38, 57—59]. [c.176]

Кроме способности всех групповых веществ крови реагировать с антисывороткой к пневмококку типа XIV, очень часто даже высокоочищенные препараты обладают более чем одной групповой специфичностью. Например, часто препараты, выделенные у индивидуумов с группами А и В, обладают также Н-, Ье и Ье -активноетями, причем дальнейшая очистка часто не дает препаратов со строгой специфичностью. Наиболее чистыми в серологическом отношении являются препараты с Ье -специфичностью. Вещество только с ЬеЬ-активностью не выделено эта активность проявляется в препаратах групповых веществ А, В и (или) Н. Возникает вопрос, является ли множественная специфичность следствием недостаточной очистки групповых веществ, или один тип молекул группового вещества может обладать несколькими специфичностями. [c.176]

ИЗ продуктов щелочного гидролиза групповых веществ крови представляет аначительно большие трудности, чем выделение фрагментов из продуктов кислотного гидролиза, из-за сложных превращений, которые претерпевают сахара под влиянием щелочи [210]. [c.203]

Согласно схеме, все стадии превращения вещества-предшественника в групповые вещества крови под контролем гонов заключаются в присоединении к олигосахаридной цепи определенного нередуцирующего глико-зильного остатка, играющего решающую роль в серологической специфичности. Новые данные о строении детерминантных групп групповых веществ крови еще раз подтвердили правильность схемы биосинтеза и то, что для возникновения новой специфичности достаточно присоединения только одного гликозильного остатка. Особое значение имело выделение из групповых веществ А, В и Н (раздел 5, б) двух разных серологически активных трисахаридов, на основании чего был сделан вывод о существовании в веществе-предшественнике двух типов олигосахаридных цепей. Предполагаемое строение ценей для веществ Н и Ье без фукозных остатков (табл. 14) соответствует структуре цепей в веществе-предшественнике. [c.211]

Высокая степень иммунологической специфичности молекул групповых веществ обусловлена генетическим контролем их биосинтеза. Все имеющиеся данные свидетельствуют о том, что специфичность групповых веществ определяется последовательностью сахаров на нередуцирующих концах углеводных цепей. Таким образом, групповые вещества крови — великолепный объект не только для изучения взаимосвязи между структурой углевода и иммунологической специфичностью, но и для выяснения путей, по которым идет образование этих структур под влиянием генов. Иммунологические свойства групповых веществ и их зависимость от структуры изучаются с помощью специальных методов, таких, как торможение реакции гемагглютинации и преципитации простыми сахарами и торможение активности ферментов, участвующих в деградации групповых веществ. Эти методы позволили получить данные относительно природы сахаров, играющих главную роль в специфичности, за несколько лет до их прямого выделения, а также помогли найти подходы к задаче получения фрагментов с различной серологической специфичностью. С помощью непрямых методов было убедительно показано, что a-N-ацетил-в-галактозаминоильный и сс-в-галактозильный остатки определяют соответственно А- и В-специфичности, а а-ь-фукозиль-ные остатки — Н- и Ье -специфичности. Эти данные были подтверждены при установлении строения активных фрагментов, выделенных из продуктов частичного кислотного гидролиза групповых веществ. Выяснение строения многих активных и неактивных фрагментов позволило предположить строение участков углеводных цепей, ответственных за серологическую специфичность А-, В-, Н- и Ье -веществ. [c.212]

Вещества В и О очень похожи на вещество А. Все три вещества, выделенные из слюны и из содержимого кист яичника [69], содержат 5,3—5,7% общего азота, 2,3—2,9% азота аминокислот и 1,7—1,8% азота гексозамина. Они дают реакцию Сакагуши на аргинин, диазореакцию и биуретовую реакцию. Ни одно из этих веществ не содержит серы [63]. Природа других азотсодержащих веществ, входящих в состав соединений, определяющих групповые свойства крови, еще не установлена. Неизвестно также, каким образом углевод соединяется с белком или полипептидом. Все указанные вещества в нативном состоянии являются очень вязкими и при pH 8,5 образуют гели. Под действием едкого или углекислого натрия они теряют свою вязкость [70], вероятно, вследствие денатурации или расщепления белка. При нагревании все эти вещества инактивируются [67]. [c.237]

Взаимосвязь между ингибиторами гемагглютинина вируса гриппа и группоспецифическими веществами крови была показана на высокоочищенном гликопротеине, выделенном из жидкости кисты яичника человека это1 гликопротеин обладает Ье -групповой специфичностью крови и ингибирует в высоком разведении гемагглютинины вируса гриппа [106]. Его молекулярный вес, рассчитанный из коэффициента седиментации и характеристической вязкости, равен 3,5-10 . Углеводный состав некоторых высокоочищенных препаратов ингибиторов гемагглютинина вируса представлен в табл. 2. По-видимому, для растворимых ингибиторов гемагглютинина вируса гриппа, клеточных гликопротеиновых рецепторов вируса гриппа, л группоспецифических веществ крови характерно то, что их полипептидные [c.247]

Принадлежность человека к той или иной группе крови определяется по наиболее распространенной системе ABO. По системе ABO группа крови определяется наличием или отсутствием антигенов полисахаридной природы, так называемых агглютиногенов А и В, присутствующих на наружной поверхности созревающих мембран эритроцитов, и соответствующих им антител — агглютининов а и Ь — в плазме крови. При взаимодействии комплементарных агглютиногенов и агглютининов происходит слипание эритроцитов агглютинация), которое сопровождается их последующим разрушением с выделением гемоглобина гемолиз). Следует особо отметить, что одновременно в крови человека не могут содержаться какой-либо специфический антиген и комплементарное ему антитело, поскольку это привело бы к агглютинации эритроцитов. Групповые антитела не вырабатываются в ответ на введение антигенов, а присутствуют в крови постоянно. Однако в некоторых случаях у людей в течение жизни наблюдается образование специфических антител к антигенам А и В это может происходить вследствие таких причин, как 1) переливание несовместимой крови 2) введение веществ, сходных по химической структуре с групповыми антигенами 3) применение некоторых сывороток и вакцин 4) инфекции 5) при беременности в случае резус-конфликта, когда резус-фактор ребенка положительный, а матери — отрицательный. [c.489]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология