Буферные растворы хранение

При хранении буферных растворов следует предохранять их от доступа углекислого газа и других газов из воздуха. Щелочные растворы следует хранить в полиэтиленовой посуде. Срок хранения фосфатных буферных растворов два месяца, остальных три месяца. [c.133]

Крахмал и лактоза замедляют скорость поглощения ферментными препаратами водяных паров. Наполнитель, используемый для стандартизации препаратов ферментов, не должен необратимо ингибировать ферменты. Крахмал оказывает стабилизирующее действие при хранении амилолитических ферментов. Показано, что после стандартизации препаратов пектолитических ферментов диатомитом, бентонитом или желатином ферментативную активность (пектиназы) следует определять после растворения препарата не в воде, а в буферном растворе с pH 3,5—4,0, что способствует десорбции фермента (аллостерического центра) с поверхности контактных участков наполнителя, т. е. возможна обратимость аллостерической специфичности. В отдельных случаях возможна необратимость конформации аллостерических участков (действие аммонийных солей на амилолитические ферменты). Наполнители могут вызывать также стабилизацию аллостерических участков (стандартизация крахмалом амилолитических ферментов). [c.170]

Главным в этих рекомендациях является набор первичных стандартных (эталонных) буферных растворов, pH которых точно определен на основе некоторого первичного метода . К веществам, составляющим эти буферные растворы, и к их буферным свойствам предъявляются чрезвычайно высокие метрологические требования высокая буферная емкость стойкость к разбавлению слабая зависимость pH от температур низкий остаточный диффузионный потенциал низкая ионная сила. Кроме того, реактивы и вода, используемые для приготовления первичных буферных растворов, должны иметь высший метрологический сертификат чистоты и стабильности при хранении. Этим требованиям удовлетворяют семь буферных растворов (табл. 6.1.). [c.711]

Потенциал асимметрии меняется со временем и поэтому влияет на водородную функцию стеклянного электрода, однако большим и внезапным изменениям он не подвержен. В принципе, он может рассматриваться как некоторая константа измерительного прибора. Именно поэтому стеклянный электрод перед измерением pH исследуемого раствора предварительно калибруют по стандартным буферным растворам, pH которых известен. В силу особенностей стеклянного электрода, а точнее мембраны, он требует определенного хранения и ухода. Для получения наиболее точных результатов новые или оставшиеся сухими электроды перед употреблением следует вымачивать в течение 1...2ч или даже оставлять в растворе на всю ночь. При этом электроды, предназначенные для измерения в растворах, где pH меньше 9, могут быть вымочены в воде или фосфатном буферном растворе (рНб,81). Электроды, которые употребляются исключительно в шелочных растворах, необходимо вымачивать в буферных растворах с большим значением pH. При работе необходимо следить, чтобы рН-чув-ствительный конец электрода не подвергался сильным механическим воздействиям. Стеклянные электроды нельзя погружать в хромовокислые растворы или в растворы других дегидратирующих агентов. [c.256]

Иммуноанализ проводят следующим образом. Полистирольные пробирки (80X11 мм) покрываются антителами при обработке 1 мл раствора антител. Растворы антител разбавляют ОД М N a-карбонатного буфера (pH 9,8) или фосфатным (солевым) буфером. Пробирки с этими растворами оставляют на 3 ч при 37 °С для хранения раствор оставляют в пробирках на холоду. Перед определением необходимое число пробирок промывают 0,9%-ным хлоридом натрия, содержащим 0,05% твина 20. В каждую пробирку помещают 0,5 мл одного из следующих растворов 1) стандартный раствор иммуноглобулина G, 2) неизвестный образец, 3) буферный раствор. После этого добавляют 0,1 мл разбавленного конъюгата щелочной фосфатазы и иммуноглобулина G (приготовленного с помощью сщивапия глутаровым альдегидом). Для разбавления используют фосфатный (солевой) буферный раствор, содержащий 1% сывороточного альбумина человека и 0,02% азида натрия. Пробирки инкубируют при комнатной температуре в течение ночи (16 ч) на роторной мешалке так, чтобы поверхность, покрытая антителами, покрывалась 0,6 мл раствора, находящегося в каждой пробирке. Затем пробирки промывают три раза раствором Na l-твин. Количество фермента, присоединенного к иммуноглобулину G, связанному стенками пробирок, покрытых антителами, определяют, добавляя 1 мл 0,05 М Na-карбонатного буфера (pH 9,8), содержащего 1 мг/мл п-нитрофенилфосфата и 1 ммоль/л хлорида. магния. Через 30 мин реакцию останавливают, добавляя 0,1 мл 1 М ХаОН. Измеряют оптическую плотность при 400 нм и строят стандартный график зави-си.мости ферментативной активности (изменение оптической плотности в единицу времени) индивидуальных образцов от содержания в них иммуноглобулина G. [c.382]

Е. Буферные растворы следует хранить в холодильнике. Нецелесообразно запасаться готовыми растворами в объеме, превышающем недельную потребность, так как срок их хранения не более 8—10 дней. После каждого сеанса электрофореза необходимо сменить полюса либо тщательно перемешать в бутыли буферные растворы из анодного и катодного отсека и вновь залить в аппарат. Даже выполняя это требование, не следует использовать одну и ту же-порцию буферного раствора более 3—4 раз. [c.51]

В лабораторной практике часто необходимо иметь раствор, заметно не изменяющий pH при его хранении, добавлении небольших количеств кислоты, ш,елочи, гидролизующейся соли или воды, а также при пользовании посудой, плохо отмытой от загрязнений щелочного или кислотного характера. Растворы, обладающие способностью при внесении в них веществ, изменяющих среду, сохранять практически постоянным pH (в определенном интервале значений), получили название буферных растворов, или смесей. [c.197]

Приготовление 1%-ного раствора крахмала (субстрат). 1 г растворимого картофельного крахмала с учетом влажности помещают в мерную Колбу вместимостью 100 мл, добавляют 25 мл воды и перемешивают до исчезновения комочков. Затем добавляют в колбу еще 25 мл воды, помещают колбу с содержимым в кипящую водяную баню и выдерживают в ней при непрерывном перемешивании до полного растворения крахмала. После этого содержимое колбы охлаждают, добавляют 10 мл ацетатного буферного раствора с pH 4,7 (для препаратов грибного происхождения) или фосфатного буферного раствора с pH 6,0 (для препаратов бактериального происхождения), объем жидкости доводят до метки дистиллированной водой и содержимое колбы перемешивают. Полученный субстрат после реакции с йодом должен иметь окраску, оптическая плотность которой ие менее 0,70. Его можно использовать в течение 10 сут при условии хранения в холодильнике. В этом случае каждый день перед использованием субстрат нагревают в кипящей водяной бане в течение 5—10 мин. [c.284]

При продолжительном хранении для получения надежных результатов пробы воды должны быть стабилизированы с помощью ацетатного буферного раствора с рН-4 из расчета 3—5 мл раствора на 100 мл воды. [c.154]

На рис. 15.3-8 приведена схема типичного /Li-СПА-устройства, использующего метод КЭ. Для хранения буферного раствора используются резервуары в виде специальных пластиковых бутылочек или наконечники для микропипеток. Эти резервуары приклеиваются к покрывающей плате кремниевого микрочипа и через отверстия в последней присоединяются к микроканалам, сформированным внутри микрочипа. Платиновые электроды помещают в эти резервуары и соединяют через высоковольтное реле с источником высокого напряжения. Для упрощения на рисунке показаны не все электроды. Детектор регистрирует флуоресценцию, возбуждаемую аргоновым, He-Ne- или He- d-лазером, излучение которых направляется в детекторную зону по оптоволокну. В качестве источника возбуждения флуоресценции могут также использоваться светодиоды с голубым свечением, что свидетельствует о возможности [c.647]

Ошибка в pH буферного раствора. Поскольку стеклянный электрод следует часто калибровать, любые неточности при приготовлении буферного раствора или изменение его состава при хранении будут включаться в ошибку измерения pH. [c.450]

Хранение и уход за электродами. Многие электроды, сохраняющиеся сухими, почти достигают своего равновесного потенциала через несколько минут после погружения в буферный раствор. Тем не менее, для получения наиболее точных результатов новые или Оставшиеся сухими электроды следует перед употреблением вымачивать в течение 1—2 ч или даже оставлять в растворе на всю ночь. Электроды, предназначенные для измерений в растворах, где pH ниже 9, могут быть вымочены в воде или фосфатном буферном растворе, pH которого равняется примерно 7 электроды, которые употребляются исключительно в щелочных растворах, должны быть вымочены в боратном или других щелочных растворах. Если применять неадекватно обработанные электроды, прибор следует [c.294]

Оптимальное количество 0,1 %-ного раствора эриохром черного Т при конечном объеме 100 составляет 4 мл [236, 781] с таким количеством реагента определяют до 0,14 мг М0. При малых количествах магния количество реагента можно уменьшать до 2 мл 1203, 662]. При хранении чувствительность реагента к магнию падает, поэтому нужно применять свежеприготовленный раствор эриохром черного Т [781, 1291]. Реагент растворяют в метаноле с добавлением небольшого количества аммиачного буферного раствора. [c.138]

Вместо этого рекомендуется заменять буферные растворы свежими через 4 недели от момента приготовления. За исключением тартратного раствора, остальные обычно показывают в течение этого периода хорошую стабильность. За 28 месяцев хранения в холодильнике первоначально стерильные фосфатные, фталатные и боратные растворы изменяют pH менее чем на 0,007 ед., хотя в них можно видеть некоторое количество плесени или осадка [37]. [c.121]

Так, стандартизация препарата пектиназы диатомитом, бентонитом или желатином приводит после непродолжительного хранения к уменьшению ферментативной активности на 70%, а при растворении стандартизованного препарата не в воде, а в буферном растворе с pH 3,5—4,0 исходная ферментативная [c.167]

Значительный интерес представляет возможность обеспечить с помощью глюкозооксидазной системы длительное хранение и транспортировку различных сухих окисляющихся материалов. Большое внимание привлекло недавно запатентованное изобретение — деоксигенирующие пакеты (удаляющие кислород). Их изготовляют из пленки, через которую проходит кислород или воздух, но не проникает вода, например из полиэтиленовой. В пакеты вносят глюкозу, соответствующий буферный раствор для поддержания реакции среды и ферменты — глюкозооксидазу и каталазу. Затем их помещают в герметически закрытые контейнеры, банки или ящики, где находятся продукты, которые нужно защитить от окисления жиры, пищевые концентраты, содержащие жир, и др. Пакеты полностью поглощают кислород в контейнере и хранимые материалы далее находятся в бескислородной среде. Прекращается также доступ к продуктам новых порций кислорода из атмосферы. [c.276]

Аппаратура и посуда. 1. Один рН-метр со стеклянным и каломельным (или хлорсеребряным) электродами. 2. Один термометр с ценой деления 0,1—0,05° С. 3. Два-три стакана стеклянных или полиэтиленовых емкостью 100—150 мл. 4. Три полиэтиленовых бутылки емкостью 1 л для хранения буферных растворов. [c.31]

Аппаратура и посуда. 1. Пламенный фотометр. 2. Десять полиэтиленовых бутылок емкостью 0,5—1 л для хранении стандартных и буферных растворов. 3. Две колбы мерные на 1 л. 4. Пипетки две-три емкостью 50 мл, одна — 25 мл, одна—10 мл, одна — 5 мл, одна — 2 мл и одна—1 мл. 5. 30—40 стаканов по 100 мл. [c.139]

Никогда НС оставляйте колонку на хранение, ссли она заполнена буферным раствором, чтобы в процессе хранения он не выпал в осадок и не испортил колонку. Буферный раствор может также вызвать рост бактерий и привести тем самым в негодность фриты и сорбент. Это наиболее вероятно при высоком со 1сржа-1ши в подвижной фа 1е буферных растворов. Кроме того, наличие биоорганики может вызвать появление неидентифицируемых пиков на хроматограмме. [c.498]

Жидкий слой 20 мг L-AKO/мл Акриламидный гель 100 мг L-AKO на 1 мл раствора геля Жидкий слой 100 мг L-AKO/мл То же, но хранение в фосфатном буферном растворе [c.337]

В некоторых случаях при анализе необходимо иметь в растворе определенную, приблизительно постоянную активность ионов водорода, которая не изменяется при хранении и разбавлении раствора и сравнительно мало меняется, если к нему прибавить немного сильной кислоты или щелочи. Растворы, pH которых мало изменяется от прибавления небольших количеств сильной кислоты или щелочи и почти не зависит от разбавления, называются буферными растворами. [c.158]

Раствор индикатора. Хромогеновый черный в количестве 0,5 г растворяют в 20 мл аммиачного буферного раствора и разбавляют этиловым спиртом до 100 мл. Продолжительность хранения не более 10 суток. [c.323]

Электродный буферный раствор, pH 8,3 6,0 г триса и 28,8 г глицина растворяют в воде и доводят до 1 л. Раствор стабилен при хранении в холодильнике. При использоварши в работе основной раствор разбавляют в 10 раз., [c.94]

Гидрон I го ювят смешиванием двух объемов 0,5 %-ного спиртового буферного раствора кислотного однохром синего 3 и трех объемов 0,25%-ного водного раствора нафтолового желтого . Для приготовления первой составной части индикатора 0,5 г кислотного однохром синего 3 растворяют в 10 мл буферного раствора с pH 10, доводят объем до 100 мл этиловым спиртом, нагревают почти до кипения, охлаждают и фильтруют через вату. Водный раствор нафтолового желтого указанной концентрации готовят, как обычно. Растворы составных частей индикатора п самого индикатора заметно не изменяются при хранении. [c.42]

Максимум возбуждения находится при 450 нм, максимум флуоресценции — при 503 нм (рис. 21). Оптимальное значение pH 10,7. Для создания необходимой среды применяют аммиачный буферный раствор. Интенсивность флуоресценции постоянна при концентрации буферного раствора 0,3—0,7 М. Определение проводят в смеси диметилформамида с водой (9 1). Постоянная интенсивность флуоресценции наблюдается через 15—40 мин. после перемешивания растворов. Линейная зависимость между интенсивностью флуоресценции и концентрацией магния имеет место при 0—5 мкг Мд/10 мл. Реагент применяют в виде раствора в диметилформамиде, при хранении в темной склянке этот раствор сгоек в течение 3 дней.. [c.162]

М. Использование подобных элюентов с восстановительными свойствами позволяет собственно нингидрированный реактив не предохранять от попадания воздуха, что упрощает конструкцию прибора, избавляя от необходимости иметь в нингидриновой системе промежуточные емкости с маслом и азотную магистраль. Кроме того, для предотвращения кристаллизации нингидрина в реакторе был изменен состав буфера нингидринового реактива (ацетатный буфер заменен на пронионатный). Таким образом, нингидриновый реактив Розена имеет следующий состав 201,8 г пропионата натрия, 93,0 мл пропионовой кислоты, 500 мл метилцеллосольва, 20,0 г нингидрина и воды до 1 л. Этот реактив не дает окраски при взаимодействии с буферными растворами и не изменяет своих свойств при хранении в течение 6 недель на холоду. Буферная емкость нингидринового реактива достаточна для получения pH, необходимого для максимального развития окраски (pH 4,5—5,5). Элюат с буфером pH 2,9 доводится до pH 4,75 и с 0,8 М цитратом натрия до pH 5,45. Это обеспечивает строгую воспроизводимость окраски и по сравнению с оригинальной методикой Пье и Морриса снижает подъем базовой линии. [c.165]

N-Этилимид малеиновой кислоты в 0,1 М фосфатном буферном растворе (pH = 0,8) медленно самопроизвольно разлагается даже при хранении в холодильнике. Продуктом разложения является N-этиламид малеиновой кислоты, который не обнаруживает поглощения при 300 нм. Если бы N-этиламид малеиновой кислоты реагировал с тиольными группами, следовало бы пользоваться свежеприготовленными растворами N-этилимида малеиновой кислоты. [c.566]

При приготовлении, хранении и применении буферных растворов необходимо предупреждать попадание в раствор посторонних веществ, в частности углекислого и других газов из воздуха. Щелочные буферные растворы должны храниться в полиэтиленовой посуде или в стекля niioii посуде, покрытой изнутри слоем парафина. [c.168]

Хранение растворов. Буферные растворы должны храниться в бутылях из стойкого стекла или полиэтилена. В тартратных растворах может вырасти плесень и ее рост сопровождается увеличением pH от 0,01 до 0,1 ед. [35]. Следовательно, этот раствор следует менять или добавлять вещества, предотвращающие образование плесени. Эффективным средство.м предохраняющим отза-плесневения на два месяца и более, является тимол [36] . Кристалла его ( 8 мм в диаметре) достаточно, чтобы сохранить 200 мл раствора. Растворимость тимола 0,006 М в водных растворах при комнатной температуре и, следовательно, изменение pH тартратных буферных растворов не будет превышать 0,01 ед. [c.120]

Колоночная хроматография ферментов, чувствительных к кислороду воздуха, требует строго анаэробных условий. Прибор, схема которого приведена на рис. 36.1, позволяет проводить хроматографию гидрогеназ с выходом 90% [3]. Все емкости и соединительные шланги тщательно продувают инертным, газом (не содержащим кислорода), который вводят в систему через бутыль I. В атмосфере инертного газа идут набивка и промывание колонки, а также сбор и хранение полученных фракций. Эти операции нельзя проводить на обычном хроматографическом оборудовании, используя в качестве защиты от кислорода какой-либо восстановитель, введенный в буферный раствор. Такая методика дает очень низкие выходы исследуемого материала. [c.9]

Кристаллизация. Объединенные фракции насыщали сульфатом аммония (до 50% предельной концентрации) и центрифугировали (50ООО f, 30 мин). К надосадочной жидкости добавляли твердый сульфат аммония до легкого помутнения. Образование первых кристаллов наблюдали через 12 сут хранения раствора при 4°С. Кристаллизация завершалась после добавления 4%-ного раствора сульфата аммония. Спустя сутки кристаллы отделяли центрифугированием. Препарат растворяли в буферном растворе (0,1 М раствор фосфата натрия-f 1 мМ ЭДТА с pH 7,6) и повторяли кристаллизацию по указанной методике. Выход 4,4-кратно очищенного фермента составлял 50%. Гомогенность полученного фермента была подтверждена разными методами. [c.27]

Сефадексы получают при взаимодействии растворимых декстранов с эпихлор-гидрином, в результате чего полисахаридные цепи [—GH2— 5HjO(OH)3—О—] сшиваются мостиками —СНаСН (0Н)СН2— О—. В набухшем состоянии имеют гелевую структуру, при высушивании образуется ксерогель. Обладают сильно выраженными гидрофильными свойствами. Наличие гидроксильных групп обусловливает небольшую сорбционную способность (0,02—0,04 мг-экв/г). На сефадексах избирательно адсорбируются некоторые липофильные вещества, особенно ароматические и гетероциклические. Гранулированные декстрановые гели устойчивы к действию органических растворителей, растворов щелочей и разбавленных растворов кислот (НС1 до 0,1 н.). Рабочая область pH лежит в пределах от 2 до 10. Сильные минеральные кислоты в концентрации выше 0,1 н. могут вызывать гидролиз поперечно-сшивающих мостиков. Декстрины неустойчивы также к действию окислителей, вызывающих появление в геле карбоксильных групп. Сефадексы подвержены бактериальному действию при длительной работе или хранении во влажном состоянии, поэтому необходимо введение антисептиков 0,02% азида натрия или 0,001% мертиолата или насыщение буферного раствора хлороформом. Термостойкость сефадексов в сухом состоянии составляет 120 °С. Возможна стерилизация их в автоклаве 30 мин при 100—120 °С, но только в нейтральной среде. [c.55]

Для измерения pH в пресных водах употребляют индикаторы Кларка и Лебса — сульфофталеины. Буферные растворы, окрашенные этими индикаторами, при хранении в темноте остаются без изменения в течение нескольких месяцев (табл. 4). [c.35]

Для выполнения аналитических операций, в частности реакций осаждения, иногда необходимо поддерживать в исследуемом растворе определенную, приблизительно постоянную концентрацию водородных ионов, которая не должна изменяться при хранении, разбавлении раствора, добавлении к нему сильной кислоты или щелочи. Свойство некоторых растворов сохранять практически постоянной концентрацию ионов Н при разведении и добавлении небольших количеств сильной кислоты или щелочи объясняется буферным действием. Растворы, pH которых почти не изменяется от прибавления небольших объемов сильных кислот или щелочей, а также от разбавления, называют буферными растворами или буферными смесями. Они представляют собой смеси электролитов, содержащие одноименные ионы. Например, ацетатный буферный раствор — это смесь НСН3СОО и МаСНзСОО, аммиачный буферный раствор — смесь NH.OH и NH4 I. [c.56]

Буферный раствор. В стакан вместимостью 1 л вносят 1 г ЭДТА, 58 г хлорида натрия, 57 мл ледяной уксусной кислоты и разбавляют приблизительно до 700 мл водой. Затем раствор нейтрализуют 50%-ным раствором гидроксида натрия до рН=5,8 0,1, прибавляют 10 мл 0,01 М раствора нитрата лантана и 3 мл 0,01 М раствора фторида натрия. Смесь переносят в мерную колбу вместимостью I л и доводят до метки водой. При хранении в закрытой полиэтиленовой емкости раствор устойчив 2 месяца. [c.334]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология