Двойная спираль плавление

Ренатурация ДНК — процесс, обратный денатурации ДНК. Плавление гомогенных молекул ДНК — явление обратимое. При медленном охлаждении раствора ДНК, подвергнутого температурной обработке, разделенные цепи ДНК объединяются снова в двойную спираль. Быстрое охлаждение раствора ДНК характеризуется весьма [c.73]

Рис. 15.13. Выявление транспозонов путем электронно-микроскопического исследования гетеродуплексов. Для того чтобы сделать транспозон видимым, нагревают ДНК из бактерии дикого типа (В) и бактерия, несущей транспозон (А), и в результате цепи двойных спиралей расходятся ( плавление ). При последующем медленном охлаждении смеси происходит спаривание комплементарных оснований отдельных цепей ДНК А и В, что ведет к образованию гетеродуплексов ДНК. Если на концах транспозона имеются противоположно ориентированные комплементарные IS-элементы, то эти области тоже спариваются и образуют стебелек, на котором средняя часть транспозона выступает вбок в виде петли из одиночной цепи.

Ренатурацию денатурированных молекул ДНК можно проследить,, кроме того, по изменению поглощения ультрафиолетовых лучей. Так, инкубация при 65 °С образца ДНК, денатурированного при нагревании до температуры выше точки плавления ДНК, ведет к тому, что по мере образования двойной спирали и восстановления структуры стопки поглощение ультрафиолетовых лучей постепенно падает до самого низкого значения. Скорость, с которой происходит восстановление двойной спирали, в большей степени зависит от типа исследуемой ДНК. Например, если денатурированную ДНК пневмококков инкубируют в течение 1 при 65 °С, то поглощение падает от первоначального уровня, равного 1,4, до уровня, составляющего 1,2 соответствующего поглощения УФ-лучей нативной ДНК. Следовательно, можно заключить, что в течение этого времени вновь образуется примерно половина двойных спиралей. Денатурированная ДНК тимуса теленка реагирует иначе инкубация при 65 °С в течение 1 ч практически не приводит к ренатурации наоборот, ренатурация денатурированной ДНК бактериофага почти заканчивается в течение нескольких минут (фиг. 86). [c.181]

Особый белок (раскручивающий цепи) осуществляет плавление ДНК. Кроме того, особый класс белков, связывающихся с ДНК, удерживает нити ДНК разделенными. Это так называемые белки, дестабилизирующие двойную спираль. Благодаря действию всех этих белков на ДНК образуется участок локальной денатурации и две вилки , в которых в дальнейшем и происходит репликация (рис. 6.13). [c.129]

Приведенные экспериментальные данные относятся к обычно исследуемой в растворе линейной, незамкнутой ДНК. У вирусов, а также в клетках бактерий на некоторых стадиях их развития обнаруживается кольцевая замкнутая форма ДНК. В такой ДНК, представляющей собой обычную двойную спираль, каждая из комплементарных нитей является непрерывной замкнутой на себя. Поэтому полное число оборотов одной нити относительно другой не может меняться ни при каких изменениях условий, сохраняющих целостность сахаро-фосфатного остова обеих нитей. Проведенные исследования показали, что при комнатной температуре двойная спираль кольцевой ДНК закручена как целое в суперспираль (с плотностью один виток суперспирали на 120—300 пар оснований) противоположного знака, т.е. в левую. При нагревании происходит тепловое расширение кристалла ДНК и уменьшение степени закрученности двойной спирали. Это приводит к уменьшению суперспирализации. При дальнейшем нагревании происходит раскручивание двойной спирали и образование суперспирали того же знака (правой). Иными являются и характеристики плавления кольцевой замкнутой ДНК. Температура плавления такой ДНК приблизительно на 20° выше, чем для линейной молекулы (см. рис. 4.6). Это происходит потому, что расплавленные нити в кольцевой молекуле остаются закрученными относительно друг друга и энтропия расплавленного состояния меньше, чем для линейной молекулы. Кроме того, ширина интервала плавления замкнутой кольцевой ДНК в 2—3 раза больше, чем ширина интервала плавления линейной молекулы. [c.75]

Спирализация приводит к возникновению так называемой вторичной структуры ДНК при изгибании спирали появляется третичная структура и т. д Возникновение изогнутой спирали, доказанное методом двойного лучепреломления при течении, обусловлено, по-видимому, наличием в спирали неупорядоченных гибких участков, где действие водородных связей почему-либо ослаблено. Однако двойная спираль там, где она сохранилась, является достаточно жестким образованием и, следовательно, обладает небольшим числом степеней свободы. Поэтому она стремится разделиться на одиночные цепи (длина сегмента примерно в 50 раз больше, чем у гибких полимерных цепей), способные принять более вероятное состояние свернутого кл>бка такой переход спираль — клубок сопровождается возрастанием энтропии системы, являющимся движуще-й силой этого процесса, и действительно имеет место при плавлении кристаллов ДНК (около 80°С) . Аналогичный процесс разрушения водородных мостиков и биспиральной структуры, но без обязательного свертывания цепей в клубок наблюдается во время подкисления или подщелачивания растворов ДНК. При этом на каждой макромолекуле возникают одноименные заряды (в результате присоединения протонов к аминогруппам или усиления диссоциации остатков фосфорной кислоты), вызывающие взаимное отталкивание цепей. [c.336]

На устойчивость двойной спирали в растворе влияют многочисленные факторы. Образование упорядоченных структур является экзотермическим процессом, и поэтому спирали стремятся расплавиться при повышении температуры растворов ДНК. Из числа сил, стабилизующих нативную форму, водородные связи и диполь-дипольные взаимодействия между пуриновыми и пиримидиновыми остатками, упакованными в двойную спираль [344], должны приводить к выделению тепла. В то же время следует ожидать, что гидрофобное взаимодействие будет эндотермическим. Значение гидрофобного взаимодействия иллюстрируется тенденцией водных растворов ДНК к денатурации при добавлении органических растворителей с большими неполярными остатками [345]. Как и следовало ожидать, высокая плотность заряда, обусловленная ионизованными фосфатными остатками, расположенными вдоль цепи ДНК, обусловливает неустойчивость спиральной конформации. В результате этого добавление умеренных количеств электролитов должно стабилизовать нативную форму ДНК, что и было обнаружено при добавлении таких солей, как галогениды щелочных или щелочноземельных металлов [346, 347]. Если определить температуру плавления (Г ) как температуру, при которой изменения в спектре, характеризующие денатурацию, происходят на 50%, то Т- , по-видимому, будет иметь примерно линейную зависимость от логарифма концентрации катионов щелочных металлов. В типичном случае повышается от 36 до 82° при увеличении концентрации ионов натрия с 0,0003 до 0,1 н. Увеличение концентрации соли приводит также к сужению интервала температур, в котором происходит переход спираль — клубок. В отношении стабилизации спиральной конформации особенно эффективны некоторые двухвалентные иопы, образующие специфические комплексы с фосфатными группами основной цепи ДНК (например, Mg +). Нуклеиновая кислота как бы образует стехиометрические комплексы с этими катионами, причем Тт таких комплексов высока даже при очень слабой ионной силе. При всех условиях переход спираль — клубок происходит в удивительно узком температурном интервале, причем 90% изменений, как правило, происходит в интервале менее 10°. [c.127]

Опыт шел так. Раствор ДНК нагревали до определенной температуры, попадающей в интервал плавления. При этом раскрывались отдельные участки молекулы (нити в этих местах расходились, и азотистые основания оказывались торчащими наружу). Затем в раствор добавляли вещество, реагирующее с раскрытыми основаниями, но не способное связываться с основаниями, запрятанными внутри двойной спирали. Когда реакция заканчивалась, образец охлаждали до комнатной температуры — прореагировавшие участки уже не могли вновь закрыться н образовать двойную спираль. [c.43]

В баланс молекулярных сил, поддерживающих двойную спираль, входят водородные связи между азотистыми основаниями в каждой паре, электростатич. силы взаимодействия ионизируемых групп и вандерваальсовы (дисперсионные) силы между параллельно расположенными пуриновыми и пиримидиновыми циклами. Влияя на те или иные силы, ослабляя или усиливая их, можно сдвигать точку плавления цепей ДНК. В частном случае можно заставить ДНК плавиться при комнатной темп-ре. [c.193]

С) высокой вязкостью. Если такой раствор нагреть до температуры выше 80-90°С или довести его pH до экстремальных значений, то вязкость раствора резко упадет, что указывает на изменение физического состояния ДНК. Мы уже видели, что высокая температура и экстремальные значения pH приводят к денатурации, или раскручиванию глобулярных белков (разд. 6.12). Точно так же высокие температуры и экстремальные значения pH вызывают денатурацию, или расплетание, двухцепочечных спиралей ДНК, разрушая водородные связи между спаренными основаниями и гидрофобные взаимодействия, с помощью которых удерживались вместе уложенные в стопку основания. В результате двойная спираль расплетается с образованием хаотических, беспорядочных одноцепочечных клубков до тех пор, пока обе цепи, наконец, не разделятся полностью. При денатурации (ее называют также плавлением) ковалентные связи в остове молекулы не разрываются (рис. 27-14). [c.865]

Значения теплот плавления ДНК и комплексов поли Л-(-+ поли У в нейтральной среде, оцененные калориметрическим путем, близки к оценкам, полученным в работах [1 .15.19] из экспериментальных данных по зависимости температуры денатурации ДНК от pH раствора (см. 31). Отметим, что большие ( 10 ккал моль) значения теплот денатурации ДНК. по-видимому, являются дополнительным указанием на то обстоятельство, что стабильность двойных спиралей ДНК определяется не только водородными связями, но и дополнительными силами притяжения гидрофобных групп. [c.371]

При нагревании нативной бактериальной ДНК наблюдается область перехода, сходная (но более узкая) с областью перехода для более гетерогенной ДНК тимуса теленка. Охлаждение до комнатной температуры нагретого раствора бактериальной ДНК так же, как и в случае ДНК тимуса теленка, позволяет понизить поглощение почти до той же величины (на Ш% больше), которую имел раствор нативной ДНК до нагревания (фиг. 60). При этом кривая, получаемая при повторном нагревании, зависит от скорости предшествовавшего охлаждения. При повторном нагревании медленно охлаждавшегося раствора кривая поглощения имеет плато и затем в области перехода круто идет вверх, что, как и в случае нативной ДНК, связано с плавлением двойных спиралей. Это свидетельствует о том, что при медленном охлаждении комплементарные цепи имеют возможность соединиться, в результате чего образуется так называемая ренатурированная ДНК. Эта ДНК отличается от нативной меньшей точностью соединения цепей (на это указывает наблюдаемая для нее величина поглощения в ультрафиолете, которая на 10% больше, чем у нативной ДНК), имеет несколько меньший молекулярный вес и обладает приблизительно вдвое меньшей трансформирующей способностью. [c.324]

Денатурация ДНК — полный или частичный разрыв водородных связей между парами азотистых оснований, ведущий к раскручиванию полинуклеотидных цепей ДНК и их последующему разделению. Процесс денатурации обычно осуществляют путем нагревания растворов ДНК или же обработкой химическими реагентами. Жесткая двойная спираль ДНК после полной денатурации дает две значительно более гибкие молекулы, быстро свертывающиеся в беспорядочные клубки. Температуру, при которой отмечается середина структурного перехода спираль — клубок, называют т емпературой плавления. Ее рассматривают как температуру фазового перехода. Этот переход сопровождается изменениями всех основных молекулярных параметров ДНК. [c.49]

Простейшая модель двойной сппралн образуется двумя комплементарными цепями гомополинуклеотидов, например. ноли-А — поли-У. Эта двойная спираль плавится при 65 °С в 0,15 М растворе Na l при pH 7,0. Интенсивность полосы поглощения 260 нм увеличивается прн плавлении па 34%, а удельное вращение фуд убывает на 275°. [c.233]

Как отмечалось выше, одиночные цепи меняют свои свойства с температурой. Однако температура плавления двойной спирали столь высока, что происходит переход (приблизительно) двойная спираль — два неупорядоченных клубка (рис. 22.15И)- Двойные [c.267]

Наблюдаемая температура плавления для всех полинуклеотидных двойных спиралей сильно зависит от таких внешних параметров, как ионная сила, pH и природа растворителя. Этому есть простое термодинамическое объяснение. Любая малая или большая молекула М, которая по-разному связывается с одно- и двухцепочечными молекулами, будет изменять их температуру плавления. Мы можем представить равновесное превращение между двойной спиралью и одиночными цепями как [c.268]

Метод плавления двойной спирали ДНК с последующим ее восстановлением из комплементарных одноцепочечных полинуклеотидных нитей нашел одно из своих наиболее интересных применений в систематике высших организмов. Основная идея, лежащая в основе такого использования, сводится к следующему чем больше одинаковых генов у двух организмов и, следовательно, чем больше у них одинаковых последовательностей оснований в ДНК-полинуклеотиде, тем ближе их родство. Следовательно, чтобы установить степень родства между организмом А и организмом В, необходимо только выделить ДНК из их клеток, нагреть ее, провести отжиг этой смеси ДНК и установить количество образовавшихся гибридных двойных спиралей, которые несут одну полинуклеотидную цепь, полученную от А, а другую — от В. Для осуществления таких экспериментов Боултон и Мак-Карти разработали простой метод определения и количественной оценки гибридных двойных спиралей ДНК. Для этой цели ДНК, экстрагированную из организма А, нагревают до 100 С и быстро охлаждают для разделения нативных молекул ДНК на отдельные полинуклеотидные цепи. Такие разделившиеся цепи добавляют к горячему раствору расплавленного агара, который затем быстро охлаждают. При затвердевании агара отдельные цепи ДНК оказываются неподвижно закрепленными в агаровом геле. Тем временем клетки организма В выращиваются в присутствии радиоактивного предшественника ДНК, такого, как ФО " или С-тимин. Радиоактивную ДНК экстрагируют затем из клеток В, разрывают механически на относительно короткие полинуклеотидные фрагменты, содержащие около 1000 нуклеотидов в длину, нагревают и быстро охлаждают для разделения двойных спиралей на отдельные цепи и затем добавляют к агару, в котором уже закреплены отдельные цепи ДНК из организма А. После этого агар нагревают до 60 °С и выдерживают при этой температуре в течение ночи. В этих условиях начинают образовываться двойные спирали, содержащие одну полинуклеотидную цепь из организма А, а другую— из организма В. Затем через агар пропускают солевой раствор, чтобы отмыть все типы В-поли-нуклеотидных цепей, не образовавших двойных спиралей с закрепленными в агаре А-полинуклеотидными цепями и, следовательно, не включившихся в агар. Определив включение радиоактивных В-цепей, устанавливают, какая доля меченой ДНК организма В может образовать двойные спирали и, следовательно, имеет одинаковые нуклеотидные последовательности с немеченой ДНК организма А. [c.183]

Важнейшей особенностью внутримолекулярных взаимодействий, стабилизирующих макромолекулярную структуру ДНК, является их кооперативность. Для двойных спиралей, построенных из комплементарных гомополинуклеотидов, это означает, что при их денатурации, происходящей, например, при повышении температуры и приводящей к образованию изолированных полинуклеотидных цепей, все звенья спиральной структуры разрушаются одновременно. Такой процесс называют плавлением двойной спирали. Его описывают кривой плавления, которая, в свою очередь, характеризуется мпературой плавления Тт и шириной температурного интервала, в котором происходит разрушение двойной спирали (рис. 16). [c.29]

Двухцепочечные полинуклеотидные комплексы обычно настолько стабильны при комнатной температуре, что определить относительную прочность различных пар оснований довольно трудно. Чтобы выявить эти различия, необходимо дестабилизировать двойную спираль. Чаще всего при количественных исследованиях для этого повышают температуру. Поглощение раствора гомополимерного комплекса при изменении температуры резко возрастает при определенной для каждого комплекса температуре. Получаемая кривая плавления полностью обратима. Отметим, что при температурах, лежащих ниже области резкого перехода, поглощение образца остается постоянным, а при температурах выше этой области в некоторых случаях лишь слабо меняется. Из этого наблюдения как такового можно сделать вывод, что структура двойной спирали и одиночных цепей при этих температурах не меняется. [c.267]

Как и в случае полиаминокислот (см. 4.5), переход спираль— клубок может рассматриваться как плавление спирали. Простейшая модель для изучения этих процессов — синтетический гомополинуклеотид, содержащий комплементарные пары только одного сорта, например Поли-А — Поли-У. Такая двойная спираль плавится при 65 °С в 0,15 М растворе ЫаС1 при pH 7,0. Интенсивность полос поглощения при 2600 А увеличивается на 34%, а удельное вращение [а]в убывает на 275°. [c.507]

Раствор, содержащий равные количества ДНК, выделенной из культур В. subtilis. которые выращивались в средах NH4 I— НгО- и NHi l —Da, нагревали до температуры выше точки плавления ДНК и затем медленно охлаждали до 65 С для того, чтобы произошла ренатурация двойных спиралей. Раствор затем обрабатывали фосфодиэстеразой (ферментом, который расщепляет одноцепочечные, но не двухцепочечные полинуклеотидные цепи ДНК) и подвергали центрифугированию в градиенте плотности хлористого цезия. Обозначения на ординате и абсциссе соответствуют обозначениям иа фиг. 93. Поскольку на графике площадь каждой полосы пропорциональна количеству ДНК. [c.198]

Температура плавления двойной спирали, т. е. температура перехода спираль — клубок линейно зависит от содержания ГЦ-пар. Отсюда, однако, не следует, что энер-гетика двойно11 спирали всецело определяется водородными связями. При плавлении водородные связи между основаниями заменяются связями с молекулами воды. Поэтому разность энергий водородных связей в спирали и в клубках мала. Должны быть и другие факторы, стабилизующие двойную спираль. [c.232]

Однонитевые макромолекулы всех типов РНК свёрнуты в клубки, отдельные участки которых могут быть спирализованы в двойную спираль за счёт спаривания азотистых оснований в этих участках. Чем больше ионная сила раствора, в котором находится РНК, тем больше доля спирализованных участков. В образовании таких спирализованных структур, чередующихся с аморфными участками, принимают участие от 40 до 70 % всех нуклеотидов РНК. Наибольший процент спирализации обнаружен у тРНК. При нагревании растворов РНК наблюдается переход "спираль - клубок" (так называемое молекулярное плавление). Особенностью маяекул РНК является наличие в её цепях "необычных нуклеотидов" псевдоуридина (см. с. 93) [c.118]

Предположение о том, что полинуклеотидная цепь молекулы сворачивается на себя, образуя двойную спираль с максимальной длиной участков, состоящих из спаренных последовательностей, подтверждают следующие фактические данные 1) эквивалентность между количеством аденина и урацила, с одной стороны, и между количеством цитозина и гуанина — с другой 2) степень типерхромизма, форма кривой плавления и нео/киданно высокая величина температуры плавления, подтверждающие существован11е очень стабильной спиральной структуры с максимальным теоретически возможным числом пар оснований А — У и Г — Ц [c.58]

Однако было выдвинуто и иное предположение [11—13]. Возможно, что в быстроделящихся клетках ДНК состоит из четырех цепей и ее репликация происходит консервативным путем. Тогда субъединицы гибридной ДНК — это не одинарные цепи, а двойные спирали, причем отдельные цепи двойных спиралей остаются при плавлении соединенными вместе. Чтобы выяснить этот вопрос, была предпринята попытка [14] изучить в ш елочной среде процесс плавления гибридной ДНК, одна из субъединиц которой [c.196]

Фосфатные группы обусловливают большой отрицательный заряд молекул нуклеиновых кислот в области нейтральных значений pH. Электростатическое взаимодействие этих групп друг с другом и с низкомолекулярными ионами в растворе вносит вклад в разность свободных энергий между спиральным и клубкообразным состояниями молекул. Поэтому температура плавления спиральных конформаций оказывается зависящей от количества низкомолекулярных ионов в растворе. С ростом ионной силы электростатическая свободная энергия отталкивания заряженных групп убывает, и температура плавления двойных спиралей возрастает. Опыт показывает, что изменение температуры конформационного перехода примерно пропорционально логарифму концентрации низкомолекулярной соли в растворе. Отметим, что при отсутствии в растворе соли температура плавления ДНК оказывается ниже комнатной, так что ДНК в водном бессолевом растворе при комнатной температуре находится в конформации клубка. В то же время в 0,1—0,15 М растворе NaGl ДНК сохраняет нативную спиральную структуру вплоть до температур 70—90° С. Температура плавления ДНК в растворе заданной ионной силы зависит от состава ДНК, повышаясь с увеличением содержания пар Г—Ц. [c.29]

По ДИП удалось установить, что слабое у-излуче-ние не приводит к денатурированию ДНК. Конфор-мационные переходы в области предплавления ДНК, установленные по ДИП, были подтверждены и методом кругового дихроизма [245]. Спектрофото-метрия оказалась менее чувствительной для обнару-, жения начальных стадий перехода двойная спираль — клубок. В области плавления ДНК (>80°С) Палечек и Брабец [246] наблюдали полную корреляцию между данными импульсной полярографии и спектро-фотометрии. [c.214]

Различные физические свойства РНК указывают на существование в нейтральном солевом растворе при низких температурах частично спирализованной структуры. Так как препараты являются одиоцепочечными и не содержат эквимолярных количеств комплементарных оснований, то был сделан вывод, что каждая полинук-леотидиая цепь состоит из ряда несовершенных двухспиральных участков (соединенных одним концом), по своему характеру сходных с двойной спиралью ДНК, причем эти участки соединяются гибкими фрагментами, лишенными какой бы то ни было определенной конформации [238]. Среди многих возможных пар оснований наиболее стабильными оказались пары, в которых аденин связан водородными связями с урацилом, а гуанин — с цитозином, и эти пары, по-видимому, единственные, которые могут обеспечить образование правильной спиральной структуры. Внутри таких структур все другие пары оснований либо разделены слишком большими расстояниями, либо структурно не соответствуют друг другу. В соответствии с этой точкой зрения была обнаружена линейная зависимость между температурой плавления данных РНК и содержанием в них гуанин-цитозиновых пар [3561. [c.626]

При нагревании ДНК до температуры порядка 80° С происходит резкое плавление правильных двойных спиралей и ДНК денатурируется. Ее макромолекулы распадаются на раздельные цепи со свойствами беспорядочных клубков. При этом гипохромный эффект исчезает почти полностью (па 80%), а оптическая активность становится близкой к активности мономеров (рис. 63). Отсюда видно, что обе оптические величины описьтают свойства упорядоченной структуры ДНК, а не отдельных мономерных звеньев. [c.215]

Простая термодинамическая теория позволяет также рассмотреть результаты одного интересного эксперимента, проделанного Хеппелем. Были определены точки плавления двойных полипу-клеотидных спиралей, образованных длинньаш нитями полпуриди-ловой кислоты и короткими олигонуклеотидами полиадениловой. В таких двойных спиралях короткие обрывки одного полимера покрывают длинные нити другого. Фактически при образовании составной спирали все звенья цепи не могут дать водородные связи. Вандерваальсовы радиусы значительно больше, чем длина химических связей, поэтому у концов каждого олигонуклеотида должны наблюдаться пропуски в 1 звено. В местах пропусков энергия связи [c.237]

Хотя и нельзя сейчас делить ДНК и РНК на химически индивидуальные вещества, тем не менее мы может измерять степень молекулярной неоднородности каждого препарата, что для многих целей немаловажно. Лучшие методы были разработаны в двух лабораториях Доти и Месельсона. Во-первых, можно измерять температуру кооперативного пе-рехода спираль-клубок. Эта температура линейно растет с процентом Г-ЬЦ в макромолекуле (рис. 78), что вполне естественно, так как у пары оснований Г—Ц имеется 3 водородные связи, а у пары А—Т — всего 2. Интересно, что точки плавления спиралей ДНК, полученной из самых различных организмов, начиная от фага Т4 и кончая зобной железой теленка, хорошо ложатся на прямую. Экстраполяция к нулю (чистый полимер АТ) дает 69°. Измерение точки плавления синтетического полимера АТ, полученного по Корнбергу, дает 65°. Разница в 4° не удивительна полимер Корнберга строго регулярен в отношении порядка чередования звеньев, а природные ДНК все нерегулярны. Сами кривые плавления двойных спиралей представлены на рис. 79. Они получены путем измерения гинохромного эффекта при 260 ш (х. За точку плавления принимается положение средней точки кри- [c.258]

Так, при низких концентрациях противоионов переходосуществляетсяпрннизкой температуре и имеет большую ширину, тогда как при более высоких содержаниях противоионов температура плавления возрастает, и переход становится более резким. Плавление гомогенйнх молекул нуклеиновых кислот является обратимым процессом, поскольку при медленном охлаждении раствора цепи нуклеиновых кислот,объединяясь, образуют снова двойную спираль. [c.60]

Вскоре после того, как Стрезингер предположил наличие в геноме Т-четных фагов циклических перестановок, Томас показал, что и в нукле-тидной последовательности ДНК Т-четных фагов, как и следует из модели, имеются циклические перестановки. Он обнаружил, что после разделения комплементарных цепей линейных молекул ДНК Т-четных фагов в результате плавления они вновь соединяются с образованием кольцевых двойных спиралей (фиг. 145). [c.298]

Молекулы ДНК в клетке суперспирализованы (рис. 6.12), т. е. двойная спираль образует витки более высокого порядка — так называемые супервитки. Необходимая предпосылка репликации — раскручивание суперспирализованной ДНК, разделение и удержание комплементарных цепей в расправленном состоянии, т. е. локальная денатурация или плавление ДНК. [c.128]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология