Пробы биологические, приготовление для

При анализе следует руководствоваться следующими принципами. Отобранные пробы воды должны быть представительными. Концентрация компонентов, содержащихся в пробе, не должна изменяться при отборе пробы. Необходимо принять меры предосторожности, чтобы предотвратить изменение состава пробы во время ее хранения перед анализом под действием химических или биологических факторов. Методы очистки пробы и приготовления [c.368]

Как правило, химики стремятся сохранить образцы изучаемых или синтезированных веществ. Особенно это относится к веществам, синтезированным впервые, или к препаратам, полученным новым способом. Обычно от основного продукта для хранения отбирают небольшое количество (от 500 до 50 мг), а в случае работы с малыми количествами — еще меньше. Наличие таких образцов дает возможность в спорных случаях определить температуру плавления смешанной пробы, проверить некоторые физические свойства (ИК- и УФ-спектры), биологическую активность и т. д. Кроме того, наличие образцов в ряде случаев позволяет идентифицировать побочные продукты, образующиеся при том или ином синтезе, доказать идентичность вновь приготовленных веществ, полученных тем же автором другим путем или различными авторами. Практика показывает, что отбор малых количеств препаратов или отдельных полупродуктов оправдан даже тогда, когда речь идет о веществах очень ценных и малодоступных. Наличие образцов экономит много времени и труда, связанного с повторным синтезом эталонов. [c.716]

В связи с анализом ультрачистых веществ п биологических объектов большое внимание уделяется и анализу растворов, полученных после соответствующей химической обработки анализируемых проб. Спектральный анализ растворов исключает ошибки, связанные с влиянием структуры, тепловой истории образца и с неравномерным распределением в нем элементов. Устраняется также фракционирование элементов, уменьшается влияние матрицы и третьих элементов на результаты анализа. Например, основа не влияет на точность спектрального определения Мп, Сг, N1 в стандартных образцах стали, бронзы и шлака (растворы шлака анализировали без кремневой кислоты) [440]. Сравнительно просто решается вопрос о приготовлении стандартов. Из существующих методов спектрального анализа растворов наибольшей абсолютной чувствительностью обладает метод сухого остатка с применением импрегнированных угольных электродов [48, 182]. [c.75]

В обоих рассмотренных методах требуется, однако, постоянство коэффициента К при калибровке и анализе, для чего необходимо, чтобы состав анализируемой пробы и растворителя, используемого для приготовления калибровочных растворов по всем компонентам, кроме анализируемых, был одинаковым. Это вызвано тем, что различные посторонние примеси могут оказывать существенное влияние на К- При анализе сложных объектов типа биологических жидкостей или сточных вод обеспечить выполнение этого требования трудно. В этом случае необходимо определять /( непосредственно в анализируемом растворе, что проще осуществить в системах с переменным объемом газовой фазы, позволяющих полностью заменить паровую фазу на чистый газ. В простейшем варианте такая система состоит из сосуда с горловиной, закрытой резиновой прокладкой, и отводом в нижней части, связанным гибкой трубкой с воронкой, перед которой имеется кран (рис. 11.43). Вся система заполняется анализируемой жидкостью, после чего в нее вводят известный объем воздуха или инертного газа, вытесняющий часть жидкости в воронку. Выравнивая уровни жидкости в воронке и сосуде, устанавливают в последнем атмосферное давление. По мере отбора паровой фазы поднимают воронку и соответственно уровень [c.208]

Организация лаборатории. В зависимости от назначения микробиологические лаборатории могут быть бактериологическими, паразитологическими, микологическими, вирусологическими, иммунологическими и специальными (для диагностики особо опасных инфекций). Как правило, микробиологическая лаборатория включает следующие помещения 1) препараторскую для подготовки лабораторной посуды, приготовления питательных сред и проведения других вспомогательных работ 2) моечную 3) автоклавную, в которой стерилизуют питательные среды и лабораторную посуду 4) комнату для взятия материала от больных и носителей 5) комнаты для микроскопических и микробиологических исследований, включающие один или два бокса 6) помещения для обеззараживания отработанных материалов. Лабораторные животные, используемые для биологических проб, содержатся в отдельном изолированном помещении (виварии). [c.441]

Количество посевного материала, добавляемого в разбавляющую воду или в каждую индивидуальную склянку для определения БПК, должно быть достаточным для обеспечения биологической активности без добавления слишком большого количества органических веществ. При использовании старых бытовых сточных вод или загрязненной воды из водоема приближенно рассчитывают, чтобы добавлялось такое количество сточной воды для посева, при котором не более 5—10% всего значения БПК было результатом потребности в кислороде одного посевного материала. Предположим, что БПК воды, используемой для посева, составляет 150 мг/л. На основании данных табл. 3.2 для проведения анализа на БПК этой сточной воды объем пробы на одну склянку составляет 10 мл однако для посева требуется только 5—10% этого количества. Следовательно, при анализе производственных сточных вод в каждую склянку нужно добавлять 0,5—1,0 мл. Если бактериальну)0 культуру помещают в разбавляющую воду, а не непосредственно в каждую склянку для определения БПК, то для расчета могут оказаться полезными данные о процентном соотношении смеси из табл. 3.2. При БПК 150 мг/л рекомендуется 3,5,%-пая смесь. Поэтому применяемая при посеве разбавляющая вода должна представлять собой 0,17—0,35%-нук. посевную сточную воду, приготовленную путем добавления 1,7—3,5 мл к каждому литру разбавляющей воды. [c.80]

Хотя замена нативно-связанного иона металла на тяжелый атом с большей рассеивающей способностью остается привлекательным методом получения производных, содержащих тяжелые металлы, по сравнению с методом проб и ошибок, требующим больших затрат времени [51], тем не менее для белков, активных в присутствии иона металла, желательно по-возможности избегать применения этого метода. Поскольку точное описание стереохимии металл-лигандного координационного центра, существенного для биологической функции белка, является основной целью структурного анализа, всегда предпочтительнее использовать тяжелые металлы, связанные с другими частями белка, или во время приготовления соответствующих производных, или при окончательном расчете соответствующей части карты Фурье. [c.24]

К 1966 г. единственной группой биологически активных веществ, не анализируемой с помощью капиллярной хроматографии, оставалась группа стероидных гормонов [8]. Первые попытки осуществить разделение этих веществ на капиллярных колонках из нержавеющей стали оказались неудачными [50, 51]. Только после развития техники приготовления высокоэффективных стеклянных капиллярных колонок с термостойкими жидкими фазами [52—56] и разработки методов прямого ввода проб [57—61] был обеспечен [c.207]

Лица, занятые приготовлением, применением н отбором проб ускорителей, должны обеспечиваться спецодеждой и другими средствами индивидуальной за-.щиты противогазом фильтрующим марки А, пастой для рук типа биологические перчатки . [c.228]

Рабочие, занятые приготовлением, применением и отбором проб продукта Э-4041, должны быть обеспечены спецодеждой и индивидуальными средствами защиты фильтрующими противогазами марки А , пастой для рук типа биологические перчатки . [c.226]

Обычно единственное требование к внутреннему стандарту заключается в химической его устойчивости и близости его удерживаемого объема к удерживаемому объему анализируемого соединения. Однако ошибок, связанных с потерями веш,ества при экстракции биологической ткани и очистке пробы, можно избежать, добавляя известное количество стандарта к ткани в процессе ее обработки [129]. При таком использовании стандарта его физико-химические свойства должны быть почти идентичны свойствам анализируемого вещества. Единственное исключение заключается в том, что стандарт достаточно сильно отличается от исследуемого вещества величиной удерживаемого объема для обеспечения хорошего разделения пиков. В идеальном случае количественные результаты можно получить, произведя расчеты по количеству добавленного к ткани стандарта и отношению площадей под пиками, несмотря на потери вещества во время приготовления пробы. На практике следует всегда экспериментально определять эмпирический поправочный коэффициент. [c.114]

Приготовление биологических проб для определения следов металлов [c.25]

Лица, занятые приготовлением и отбором проб лакокрасочного материала, должны обеспечиваться средствами индивидуальной защиты, спецодеждой, фильтрующим противогазом марки "А", пастой для рук типа биологические перчатки. [c.88]

Содержание различных элементов в бактериальных клетках и биологическая роль микроэлементов обсуждаются в работах [107, 1091 приготовление и хранение проб для анализа различных элементов описано в работах [107, 111]. Содержание металлов в пробах, представляющих интерес для бактериологов, определяют с помощью колориметрических методов, метода атомной абсорбции, фотометрии, спектрофотометрии, пламенно-эмиссионной фотометрии, ядерно-активационного анализа, ионселективных электродов, а также другими способами. Эти и другие методы определения металлов описаны в работах [106—109]. [c.367]

В соответствии с правилами GMP каждая стадия технологического процесса должна строго контролироваться. Так, цикл стерилизации контролируется соответствующими биологическими и химическими индикаторами. Для определения стерильности продукта каждой загрузки берут пробы в начале и конце стерилизации, а также пробы из потенциально наиболее холодной части загрузки в камере. Вода контролируется на присутствие пирогенных веществ (каждая серия). Исходные материалы для приготовления раствора не должны содержать значительного количества микроорганизмов или пирогенных веществ. На пирогенность контролируется первая и послед- [c.131]

Анализ табличных и графических данных (табл. 5.34, рис. 5.45, 5.46) по параметрам спектров ИК-поглощения исследованных образцов воды показывает, что наибольшей упорядоченностью структуры, делокализацией электронов на ОН-связях воды по горизонтали, а также высокой степенью переноса заряда в объемном каркасе водородных связей обладают пробы воды, приготовленные по технологии Й. Грандера и пробы воды, подвергнутые обработке миллиметровыми волнами, биологически-актив-ными веществами, замораживанию и очистке на сорбентах. [c.347]

Применение пламенно-эмиссионной спектрометрии. Пламенно-эмиссионная спектрометрия широко используется для определения концентраций натрия, калия, кальция и магния в клинических пробах. Удобство, правильность, чувствительность и скорость этого метода делают его пригодным для серийных анализов. Для проведения анализа, если в пробе присутствует значительное количество белка, ее сначала надо обработать азотной или хлорной кислотой (например, сыворотку крови). Затем добавляют освобождающий агент (лантан) и подавитель ионизации (литий), а раствор разбавляют до нужного объема высокочистой деионизованной водой. Многие биологические жидкости содержат значительное количество фосфатов, поэтому необходимо использовать освобождающие агенты. И, наконец, приготовленные растворы пробы анализируют с помощью пламепио-эмиссионного спектрометра, например пламенного фотометра, имеющего отдельные каналы (детекторы) или сменные светофильтры для каждого определяемого элемента. [c.693]

Недостатком этой методики является сложность приготовления проб. Необходима многоступенчатая очистка, так как УФ-детекция абсолютно не специфична для идентификации определённых групп пептидов. Подобные трудности удалось преодолеть, используя специфические флуоресцентные производные пептидов. Например, гуанидиновый фрагмент тафцина образует флуоресцентное производное с бензоином, т. е. все пептиды, не содержащие гуанидин, не мешают анализу тафцина в биологических пробах. [c.533]

Если экспериментатора интересуют ростовые функции выделенного соединения в отношении растения-донора, то он обычно использует ткани этого растения в качестве биотеста. Преимущество тестов, приготовленных из тканей растений-доноров, состоит, во-первых, в их специфичности в отношении выделенных ростовых веществ, во-вторых, в простоте их изготовления (замачивание семян, нарезка отрезков стеблей, приготовление высечек листьев) по сравнению с нарезкой колеоптильных цилиндров и в-третьих, в получении более широкой информации о ростовом процессе (рост делением и растяжением). К числу недостатков тестов из тканей растений-доноров следует отнести большую вариабельность растительного материала, что, естественно, вынуждает для достижения 5%-ного уровня значимости брать в несколько раз больше биологических повторностей, чем в случае применения отрезков колеоптилей. Другой недостаток — медленный рост указанных тестов. Если проба на рост отрезков колеоптилей имеет продолжительность 20 час., то тест [c.45]

Известным подтверждением наличия в среде Вас. botulinus может служить присутствие в приготовленных мазках палочек со спорой, имеющих форму теннисной ракетки. Тем не менее без проведения биологической пробы микроскопический анализ не может считаться убедительным. [c.582]

Пробы первой группы (твердые, порошкообразные, в виде растворов, биологические пробы) анализируются непосредственно, хотя и требуется некоторая подготовка нроб для анализа. Основное требование к приготовлению проб для анализа — получение воспроизводимых проб для возбун дения рентгеновского спектра. Сюда относятся такие факторы, как величина пробы, размер частиц пробы и обработка поверхности пробы. Для достижения максимальной чувствительности в определении следов элементов необходимо оптимизировать параметры прибора, введение поправки на фон, статистические методы счета импульсов при измерении интенсивности линий и т. д. Поскольку определение следов связано с измерением малых сигналов, которые должны быть отделены от фона спектра, необходимо выбирать оптимальную область спектра. Так, Кемпбелл и Тетчер [24] рекомендуют применение линий -серии для определения элементов с атомным номером менее 40, -серии для онределения элементов с атомным номером более 60 и линии К- или -серии для элементов с атомным номером между 40 и 60. Несмотря на то что -спектр менее интенсивен, чем 7 -спектр, -линии располагаются на непрерывном спектре меньшей интенсивности, что иногда улучшает отношение сигнала к фону. [c.231]

Идентичный препарат можно получить при гидролизе фталимидного производного метилакрилата, если его нагревание с соляной кислотой проводить не 8 час. (см. выше), а всего 2—3 часа. Приготовленный таким способом фтaлил- -aлaнин не дает снижения точки плавления смешанной пробы с полученным синтетически соединением и обладает биологической активностью, не уступающей -аланину — основанию. [c.409]

Одним из показателей, определяемых цри установлении ПДКд веществ в воде водоемов, является их пороговая концентрация, не влияющая на санитарный режим водоемов. При определении этого показателя учитывалось влияние ПЖ на процессы биохимического потребления кислорода (БОК), нитрификации и развития простейших организмов /6/. Для приготовления растворов кислоты использовали ПМДА, соответствующий Т7 38.10227-80. Пороговой концентрацией вещества, существенно не влияющей на баланс растворенного кислоро -да, тем самым и на общий санитарный режим водоемов, является та, которая изменяет БПК не более чем на 10-15/ по сравнению с контрольной пробой. Определение ЕПК проводили методом разбавления /7/, стандартный фон загрязнений в разбавляющей воде создавали введением глюкозы, вещества хорошо биологически окисляемого /8/. [c.92]

Из глубины продуктов, поступивших на исследование, вырезают несколько кусочков. Содержимое консервных банок извлекают из участков, расположенных ближе к центру. Вырезанные кусочки тщательно растирают в ступке с двойным объемом изотонического раствора хлорида натрия (соленые продукты растирают в дистиллированной воде). Приготовленную взвесь оставляют при комнатной температуре на 2 ч для экстрагирования токсина. Экстракт центрифугируют, образующийся прозрачный слой надосадочной жидкости используют для постановки биологической пробы. Аналогичным образом подготавливают секционный материал. Промывные воды желудка больного при подозрении на ботулизм сливают в стерильную посуду, а содержащиеся в них частицы пищи помещают в стерильную ступку тщательно растирают, прибав- [c.258]

Первые попытки достижения воспроизводимости анализов биологических жидкостей при прямом вводе пробы связаны именно с непосредственной белковой сорбцией на сорбенте. Так, еще в 1982 г. X. Йошида с сотр. предложили вариант обработки колонок, заполненных обращенно-фазовым сорбентом is (20-30 мкм, dp = 12 нм), путем пропускания раствора БСА или плазмы кролика в метаноле при pH = 3. После повторной промывки метанолом для удаления денатурированного неадсорбированного белка колонку использовали для анализа плазмы крови [102, 103]. Однако такая обработка колонок приводила к существенному снижению эффективности разделения, особенно при применении метода к мелкозернистым (5 мкм) сорбентам. Наряду с этим время жизни таких колонок было сравнительно коротким, что неудивительно, поскольку динамическое модифицирование белком проводили в неравновесных условиях, а денатурированный и химически незакрепленный белок удерживался только адсорбционными силами. Поэтому в более поздних разработках эти авторы использовали колонки, приготовленные таким образом лишь для предварительного концентрирования в системах с переключением колонок при анализе плазмы крови с прямым вводом [104, 105]. Дальнейшая работа этой группы [49] связана, в основном, с иммобилизацией авидина и овомукоидов на активированных ХМК и применением последних в сложных автоматизированных системах для анализа биологических жидкостей. [c.555]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология