Плотность, воды сахарозы

X — разность плотностей раствора сахарозы и воды. [c.285]

Для нахождения значения х в этой формуле нужно сначала точно определить плотность сахарозы при 25° и из этого значения вычесть плотность воды при 25°. [c.285]

Наиболее часто для формирования градиентов плотности используется сахароза, по своим свойствам соответствующая указанным выще требованиям. Кроме того, она дешева и ее раствор обладает определенной вязкостью, способствующей стабилизации зон в то же время эта вязкость не настолько высока, чтобы препятствовать движению заряженных молекул и частиц. Для этой же цели можно применять и другие вещества, например глицерин, этиленгликоль, тяжелую воду и в ограниченном диапазоне концентраций этанол. [c.27]

Относительная плотность тройной смеси сахарозы, воды и спирта, найденная экспериментально, приведена в табл. 87. [c.113]

Концентрационные изменения структуры растворов сахарозы рассматривались в [77, 78]. Авторы этих работ пришли к выводу, что в различных областях диапазона концентраций взаимодействие сахарозы с водой специфично. В разбавленных растворах, когда число молекул воды, связанных с молекулой сахарозы, превышает число гидрофильных активных центров, структура воды остается практически невозмущенной. Гидратная оболочка (или ячейка [78]) препятствует сближению молекул сахарозы, что равносильно отталкиванию. По мере увеличения концентрации толщина водного окружения падает. Однако, как считают авторы [78], раствор все еще находится в состоянии максимальной стабилизации вплоть до некоторой предельной концентрации (0,05 м.д. [77], 0,06 м.д. [78]). Этот состав отвечает структуре клатратного типа (клатрат 1 [100]) и обладает максимальной плотностью. [c.103]

При 30°С давление пара водного раствора сахарозы равно 31.207 Торр. Давление пара чистой воды при 30°С равно 31.824 Торр. Плотность раствора равна (.1.99.564 г-см Чему равно осмотическое давление. этого раствора [c.90]

Вязкость и плотность дисперсной фазы незначительно влияют па продольное перемешивание, но межфазное натяжение, определяющее размер капель, оказывает существенное влияние. Для того чтобы исследовать влияние свойств сплошной фазы, были проведены эксперименты с 20%-ными водными растворами сахарозы и гексапом в качестве дисперсной фазы. Коэффициенты турбулентного перемешивания в такой системе были приблизительно на 25% выше, чем для чистой воды. При этом замечено, что концентрация индикатора в радиальном направлении и, следовательно, профиль скоростей в сплошной фазе были неодинаковы, т. е. состояние полностью развитой турбулентности не достигалось. Поэтому вклад тэйлоров-ской диффузии оказался более существенным для более вязких растворов. [c.141]

Теплоотдача в роторном аппарате конструкции ГИАПа. Теплообмен в испарителе ГИАПа [43 ] исследован на моделях аппарата диаметром 90 125 и 180 мм при испарении воды, четыреххлористого углерода, этилового спирта и водных растворов сахарозы различных концентраций. Определены локальные коэффициенты теплоотдачи при испарении жидкостной пленки в широком диапазоне изменения скорости вращения ротора, плотности орошения, теплового потока, числа витков перфорации на поверхности барабана. Экспериментальные данные обобщены уравнением, позволяющим рассчитать коэффициент теплоотдачи в испарителе [c.348]

Сахароза, например, легко определяется по показателю преломления раствора. Тяжелую воду ВаО можно определить, если предварительно прибавить к ней какую-либо легко обнаруживаемую метку . Например, добавив в очень малом количестве фенол, можно использовать поглощение последнего в ультрафиолетовом свете. В крайнем случае плотность можно просто рас- [c.67]

Стабилизация разделяемых компонентов при работе в периодическом режиме достигается при помощи градиента некоего вещества (сахарозы, фиколла и др.), которое соприкасается с электролитом, находящимся в электродных сосудах (рис. 3.8). Градиент плотности формируют над слоем концентрированного раствора вещества, используемого для создания градиента. Этот слой выполняет роль своего рода прокладки. Охлаждение осуществляется и снаружи (водяная рубашка), и изнутри (охлаждающий цилиндр) циркулирующей водой, температура которой составляет 4°С. Таким образом, поперечное сечение колонки имеет форму кольца, охлаждаемого с обеих сторон. По окончании электрофореза фракции отбирают, выпуская содержимое колонки через отверстие в ее нижней части или высасывая его при помощи насоса через капиллярную трубку в центре охлаждающего цилиндра [87]. [c.117]

Зрелый натуральный мед почти в полтора раза тяжелее воды (его плотность 1,4 г/мл). Он засахаривается на холоде или при долгом хранении равномерно, образуя мелкие кристаллики глюкозы. Если в приобретенной вами банке меда появились крупные кристаллы — нет сомнения, что это сахароза. Значит, вы стали жертвой обмана и купили вместо натурального меда сахарный сироп с легким запахом целебного продукта пчеловодства. [c.69]

Пример 6. Рассчитать осмотическое давление одномолярного раствора сахарозы в воде, зная что при 30° давление пара раствора равно 31,207 мм рт. ст. Давление пара воды при 30° равно 31,824 мм рт. ст. Плотность чистой в ды при этой температуре (0,99564 г-слГ ) можно использовать для определения 1 разбавленного раствора. [c.204]

На рис. 14.17 показан пример применения уравнения (14.64) к миоглобину. Видно, что величина полученная из нейтронного рассеяния, немного меньше соответствующей величины, полученной из рентгеновского рассеяния. Причина в том, что сахароза и глицерин, используемые для изменения рентгеновского контраста, не могут проникать внутрь белка. Но это возможно для молекул воды при нейтронном рассеянии, о чем свидетельствует небольшой водородно-дейтериевый обмен, наблюдаемый при варьировании отношения НзО/ОзО. Параметр а положителен для обоих методов. Это вызвано тем, что около поверхности белковой молекулы располагаются преимущественно гидрофильные группы. У этих групп и электронная плотность (а следовательно, рентгеновская рассеивающая плотность), и нейтронная рассеивающая плотность выше, чем у внутренних (гидрофобных) остатков. [c.442]

Построение градуировочного графика. Готовят серию стандартных растворов сахарозы. В 6 мерных колб мерным цилиндром отбирают по 25 см раствора сернокислого дихромата калия и добавляют пипеткой 0 2,00 4,00 6,00 8,00 и 10,00 см раствора сахарозы. Затем вводят 10,00 8,00 6,00 4,00 2,00 и О см дистиллированной воды до общего объема раствора 35 см Колбы помещают на водяную баню с температурой кипения (10 мин), охлаждают в кристаллизаторе до 20 °С, доводят до мс гки дистиллированной водой и тщательно перемешивают. Измеряю оптическую плотность окрашенных в зеленый цвет растворов, раствор сравнения не содержит сахарозу. Светофильтр выбирают так, чтобы его окраска дополняла окраску раствора (см. табл. 17), и светопоглощение при этом было максимальным. Оптимальная длина волны света % = 670 нм (красный светофильтр). [c.184]

Таким образом, для приготовления раствора сахарозы с массовой долей 3,0 % необходимо смешать 3 массовые части исходного раствора и 12 массовых частей воды. Находят объемы растворов, зная плотность исходного раствора сахарозы (например, р = 1,06 г/см ) и воды (р = 1,00 г/см ) [c.229]

В 100 г НгО содержится 4,57 г сахарозы С12Н22О11. Найти а) осмотическое давление при 293 К б) температуру кристаллизации раствора й) температуру кипения раствора г) давление насыщенного пара над раствором при 293 К. Давление насыщенного пара над водой при 293 К равно 2,337 кПа (17,53 мм рт. ст.). Плотность раствора считать равной плотности воды. [c.124]

При центрифугировании денатурированной ДНК или однонитевых РНК бывает необходимо предотвратить их реассоциацию и агрегацию за счет образования случайных водородных связей между основаниями. Для ДНК это осуществляют подщелачива-нием раствора NaOH (до 0,1 М). В случае РНК щелочь непригодна (гидролиз ), но можно создать градиент плотности растворением сахарозы не в воде, а в концентрированных растворах формамида или диметилсульфоксида (ДМСО), иногда даже в 100%-ном формамиде или ДМСО, Полученные градиенты называют денатурирующими градиентами сахарозы . Следует помнить, что ДМСО ядовит и легко проникает через кожу, поэтому работать необходимо в перчатках. Кроме того, ДМСО разрушает нитроцеллюлозные и поликарбонатные пробирки. Из него необходимо удалять следы тяжелых металлов перемешиванием в течение 1,5 ч с 3%-ной суспензией бифункциональной ионообменной смолы. Перед нанесением на градиент препараты нуклеиновых кислот целесообразно прогревать в течение 2— 3 мин при 80 для разрушения уже образовавшихся агрегатов. [c.212]

Несколько больший интерес представляют растворы сахарозы. Специальное исследование растворов сахарозы как жидкостей, пригодных для калибровки капиллярных вискозиметров, провели Бингам и Джексон. Арчбютт и Дилей [110] указывают, что для калибровки капиллярных вискозиметров следует пользоваться в зависимости от диаметра капилляра 40 и 60%-ными растворами сахарозы. Эти авторы рекомендуют растворять 40 и 60 г сахарозы в таком количестве горячей воды, чтобы получить 100 г раствора. Затем раствор фильтруют и определяют его плотность при 25°. [c.285]

Выполнение работы. 1. Приготовить 40—457о-иый раствор карбамида или сахарозы в воде. Определить плотность раствора 1+2 при 20" С денсиметром или никнометрическим методом. 2. Измерить поверхностное натяжение полученного раствора а +2 при 20° С одним из описанных методов. 3. Рассчитать парахор карбамида или сахарозы по формуле [c.31]

Смесь для полимеризации следует готовить в количестве, необходимом для опыта. Если используют, например, 12 трубочек, нужно приготовить 30 мл смеси. Осторожным вращением колбочки раствор перемешивают и вносят пипеткой в трубочки, укрепленные в подставке, следя за тем, чтобы пузырьки воздуха не попали внутрь полимеризуемого геля. Уровень вносимой жидкости должен находиться на расстоянии 1—1,5 см от верхнего края трубочки. Сверху осторожно наслаивают воду (0,2—0,3 мл) для образования ровной поверхности геля. Полимеризация обычно заканчивается через 20—40 мин, что определяют по образованию хорошо видимой границы между гелем и водой. По окончании полимеризации наслоенную воду удаляют фильтровальной бумагой. Трубочки снимают с подставки и ввинчивают в отверстия дна верхнего буферного резервуара (рис. 10, /). Верхний резервуар присоединяют к нижнему, предварительно заполненному электродным буферным раствором. Следят за тем, чтобы на концах трубочек не было пузырьков воздуха. На поверхность геля микропипеткой наносят растворы белков. Количество наносимого белка зависит от его гомогенности для индивидуального белка — 25—50 мкг, для гетерогенных смесей это количество может быть увеличено до 50—250 мкг. Плотность наносимых образцов белка повышают добавлением 40%-ного раствора сахарозы до конечной концентрации 0,5 М (20%,). Это необходимо для предотвращения смешивания белка с электродным буфером. Высокая ионная сила исследуемых образцов мешает четкому разделению белков, поэтому такие растворы следует предварительно обессолить. [c.96]

Сахароза (тростниковый или свекловичный сахар) — са распространенный дисахарид. Молекула сахарозы состоит остатков молекулы глюкозы и молекулы фруктозы, соединен вместе. (При образовании из них молекулы сахарозы от молекз глюкозы отщепляется ион водорода Н, а от молекулы фрукт( отщепляется группа ОН, которые, объединившись, дают молек воды Н2О). (Сахароза содержится в сахарной свекле, сахар] тростнике, стеблях сахарного сорго и недозрелой кукурузы. Г нагревании с кислотой или под действием ферментов дрож сахароза присоединяет воду и распадается на фруктозу и глюке образуя инвертный сахар. Плотность сахарозы — около кг/л. [c.32]

Рассчитать осмотическое давление 1 М водного раствора сахарозы, зная, что при 30°С давление пара раствора равно 31,207 ммрт.ст. Давление пара воды при 30°С составляет 31,824 мм рт. ст. Плотность чистой воды при этой температуре (0,99564 г/см ) можно использовать для определения Vi разбавленного раствора. Чтобы решить эту задачу, в уравнение (4.22) нужно ввести закон Рауля . [c.137]

Для наблюдения скорости диффузиофореза были поставлены опыты [4], схема которых показана на рис. Х.7. Втцубке С С высотой около 10 см создавался вертикальный градиент концентрации сахарозы (или глюкозы), для чего нижний конец трубки сообщался с большим резервуаром В, содержавшим высокую концентрацию сахарозы, а верхний конец — с чистым растворителем в резервуаре А. Растворителем служила смесь воды и метилового спирта такой концентрации, при которой ее плотность была равна 0,97 г/см . В среднюю часть трубки помещались шарики японского воска с плотностью <3,945 г/см и радиусами от 0,1 до 1,5 мм. Вначале, когда весь перепад концентрации сахара был сосредоточен в узкой средней зоне трубки, все шарики независимо от радиуса были сосредоточены на почти одинаковой высоте в этой же зоне. По мере того как шла диффузия и зона переходных концентраций размывалась, устанавливалось определенное распределение шариков по высоте в зависимости ют их радиусов. [c.306]

Сахар молочный (ЗассЬагит ксИз, ГФХ, статья № 589) представляет собой кристаллический белого цвета порошок без аапаха, слабо сладкого вкуса, хорошо растворимый в воде. Лактоза наряду с сахарозой (обычным сахаром) является дисахаридом, встречающимся в природе в свободном состоянии. Обычно лактоза содержится в молоке (4—5%), из сыворотки которого она и может быть получена. Отличительной особенностью лактозы по сравнению с сахарозой является незначительная гигроскопичность, что делает особенно удобной применение лактозы при разбавлении порошков лекарственных веществ, выписанных в малых количествах. В этом отношении довольно удачной оказалась плотность лактозы 1,52 г/см , которая мало отличается от плотности ряда лекарственных веществ, например многих алкалоидов и гликозидов. [c.116]

Сахар молочный (Sa harum la tis) — кристаллический порошок белого цвета, слабосладкого вкуса, хорошо растворимый в воде (ГФХ, статья № 589). Обладает в отличие от сахарозы невысокой гигроскопичностью, а также полностью (1,52 г/см ), близкой по величине к плотности большинства алкалоидов. [c.258]

Важной разновидностью седимеита-ционного метода, получившей широкое применение при исследовании природных полимеров, является центрифугирование в градиенте плотности [3, с. 418]. В центрифужной пробирке создают градиент плотности (например, смёшивая при помоши автоматически действующих насосов водный раствор сахарозы с водой в постепенно уменьшающихся соотношениях), а затем наслаивают поверх него исследуемый раствор полимера в легком растворителе (рис. 169). [c.544]

После завершения операции заполнения диффрузи-онная ячейка закрепляется в термостате и выставляется по уровню. В период термостатирования диффузионной ячейки четкую границу раздела между растворами поддерживают путем медленного истечения обоих растворов через щель со скоростью приблизительно 0,25 см" в минуту. Расходы растворов должны быть одинаковыми, чтобы избежать наклона границы раздела, особенно в случае растворов, плотность которых слабо отличается. По окончании процедуры по созданию четкой границы раздела между растворами делается фотоснимок интерференционной картины. На основе этой фотографии позднее вычисляет-ся разность между коэффициентами преломления исследуемьк растворов. Время, необходимое для получения информации о процессе диффузии, зависит от коэффициента молекулярной диффузии. Так, например, в [97] отмечается, что для системы сахароза—вода при Г = 298 К полную информацию можно получить на основе 12 фотоснимков, выполненных в течение одного часа. В системе метанол—бензол при Т = 298 К данные о )дв можно получить уже за 20 мин. [c.846]

Для создания необходимых градиентов плотности в целях устранения конвекционных потоков или разделения частиц по их плавучей плотности можно использовать и некоторые другие вещества. Тяжелая вода для этой цели непригодна, так как, обмениваясь с молекулами воды гидратной оболочки частиц, она увеличивает их плотность. Имеются данные о применении градиентов плотности коллоидного раствора окиси тория, поливинил-пирролидона, солей цезия и рубидия, тартрата калия (для вирусов), бычьего сывороточного альбумина (для эритроцитов) [2]. В специальных случаях можно использовать сульфолан, триметилфосфат и мочевину [5] например, при исследовании рибосомной РНК, когда требуется, чтобы растворы были оптически прозрачны при 260 нм, или же когда фракцию приходится добавлять непосредственно в сцинтилляционную смесь, или в тех случаях, когда вещества, создающие градиент плотности, не должны искажать определения с орцинолом или дифениламином [5], Однако наиболее часто для увеличения плотности раствора по-прежнему используют растворы сахарозы и солей цезия. [c.176]

Это уравнение приводит полученные данные к температуре и вязкости воды при 20° С. Однако при использовании градиента концентрации сахарозы плотность р и вязкость т] меняются в радиальном направлении. Если можно считать, что осмотические явления отсутствуют и что форма и размер частиц от концентрации сахарозы не зависят, то значение го, и можно получить, рещая уравнение (IX.4). При этом использование изокинети-ческого градиента упрощает расчеты. Нолль [1] подробно описывает методику получения таких градиентов и приводит ряд соответствующих таблиц для различных типов препаративных роторов. [c.178]

Для изучения набухания и сократительных свойств митохондрий использовали спектрофотометрический метод Клиленда ( leland, 1952). Метод основан на изменении светорассеивающих свойств суспензии при поглощении или выделении воды митохондриями. При поглощении воды органоидами оптическая плотность суспензии падает. Сокращение частиц, приводящее к выталкиванию воды, выражается в повышении оптической плотности раствора. Работу проводили на спектрофотометре СФ-4 при 520 ммк в 1-сантиметровых кюветах при ширине щели 0,025 мм. Осадок митохондрий из 4 г отрезков мезокотилей ресуспендировали в растворе 0,5 М сахарозы без ЭДТА из расчета [c.201]

Использование в качестве орошающей жидкости раствора сахарозы приводит к некоторому увеличению предельных нагрузок, которое объясняется тем, что раствору сахарозы, имеющему большие вязкость (цж= 10,35 10"3 н-сек1м ) и плотность (рж = = 1210 кг1м ) чем вода, сообщается большая кинетическая энергия. [c.147]

Построение калибровочного графика. Для коли-честванного апределения содержания несброженных сахаров в мелас-сной бражке строят график зависимости между концентрацией сахарозы и полученной оптической плотностью. Основной раствор сахарозы готовят концентрацией 150 мкг/.мл. Для этого на аналитических весах отвешивают 0,0300 г х. ч. сахарозы, количественно переводят ее в мерную колбу на 200 мл, тщательно растворяют в дистиллированной воде, доводят объем до метки при 20° С, перемешивают и фильтру- ют через бумажный фильтр, предварительно вылив первые порции (15—20 мл) фильтрата. Полученный раствор является основным раствором. [c.152]

По истечении 5 мин пробирки вынимают и быстро охлаждают до 20° С. Полученные растворы розового цвета колоримеприруют на фотоэлектроколориметре, пользуясь кюветами с рабочей длиной 10. мм при светофильтре, имеющем максимум светопропускания при i, =432 нм. Кювету перед заполнением ополаокиъают 2—3 раза испытуемым растворам, затем заполняют ее до метки на рабочей грани. Внешние стенки кюветы вытирают досуха фильтровальной бумагой. В две другие кюветы такого же размера наливают контрольный раствор и определяют оптическую плотность на фотоэлектроколориметре по методике, описанной в инструкции, прилагаемой- К приб0 ру. В качестве контрольного, раствора служит смесь применяемых реактивов, дополненная до 10 мл дистиллированной водой и нагретая в тех же условиях, что и исследуемые растворы сахарозы. [c.153]

Кашбровочный график. Отвешивают на аналитических весах 2,5022 г глюкозы или 2,3771 г сахарозы и растворяют в мерной колбе на 1 дм дистиллированной воды. В 1 см такого раствора содержится 1 мг углерода. В конические колбы на 100 см приливают последовательно 0 2,5 5,0 10,0 15,0 20,0 см раствора. Раствор выпаривают на водяной бане до последней капли. Затем приливают из бюретки по 20 см хромовой смеси. Колбы помещают в сушильный шкаф так же, как колбы с пробами почвы. После сжигания добавляют по 20 см воды и через сутки колориметрируют. По найденным значениям оптических плотностей и содержанию углерода строится калибровочный фафик. [c.221]

Плазматические мембраны выделяли из печени крыс. Гомогенизацию проводили в гомогенизаторе с тефлоновым пестиком, все гомогенаты фильтровали через четыре слоя ткани, центрифугировали при 61 ООО g в teчeниe 2 ч в растворе сахарозы с градиентом плотности 1,22, 1,18, 1,16. конечных промывания очищенных мембран производили водой. Наиболее чистыми оказались плазматические мембраны клеток печени, выделенные по методу Невиля наибольший выход мембран был получен при выделении по Рею. [c.327]

Осадок мембран суспендируют в воде и переносят в центрифужную пробирку ротора с откидными стаканами (бакет-ротор) препаративной ультрацентрифуги. К 1,2 мл суспензии добавляют по каплям при перемешивании 2,1 мл сахарозы с плотностью 1,34. Получают плотность смеси—1,20. На эту смесь осторожно наслаивают 1 мл раствора сахарозы с плотностью 1,18 и затем 1 мл раствора сахарозы с плотностью 1,16. Центрифугируют 75 мин при 100000 д. [c.328]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология